پژوهش های حفاظت گیاهان ایران

پژوهش های حفاظت گیاهان ایران

تاثیر قارچ Trichoderma harizianum T22 بر مقاومت القایی گیاه گوجه‌فرنگی نسبت بهHelicoverpa armigera Hübner

نوع مقاله : مقالات پژوهشی

نویسندگان
نجمه بدخشان 1
سیدمظفر منصوری 2
آزاده حبیبی 2
بهرام ناصری 3
شهریار شاکری 4
1 گروه تنوع زیستی، پژوهشگاه علوم و تکنولوژی پیشرفته و علوم محیطی، دانشگاه تحصیلات تکمیلی صنعتی و فناوری پیشرفته، کرمان، ایران.
2 گروه تنوع زیستی، پژوهشگاه علوم و تکنولوژی پیشرفته و علوم محیطی، دانشگاه تحصیلات تکمیلی صنعتی و فناوری پیشرفته، کرمان، ایران
3 گروه گیاه‌پزشکی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
4 گروه بیوتکنولوژی، پژوهشگاه علوم و تکنولوژی پیشرفته و علوم محیطی، دانشگاه تحصیلات تکمیلی صنعتی و فناوری پیشرفته، کرمان، ایران
10.22067/jpp.2022.76074.1086
چکیده
در این پژوهش بذور گوجه­فرنگی رقم فلات با اسپورهای قارچ سویه Trichoderma harizianum T22 به میزان 30 میلی­لیتر از سوسپانسیون پنج گرم اسپور تجاری قارچ در لیتر در کنار بوته تلقیح شدند و در شرایط گلخانه­ای (5±25 درجه سلسیوس، رطوبت نسبی 10± 55 درصد و دوره روشنایی 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی) کشت شدند. لاروهای سن اول تا سوم کرم میوه گوجه­فرنگی،Helicoverpa armigera ، روی برگ و لاروهای سن چهام تا ششم روی میوه گیاهان تیمار شده و شاهد قرار داده شدند. سپس نرخ رشد نسبی لارو، طول مدت نشو­و­نمای لاروی، درصد مرگ و میر لاروها، باروری و زادآوری حشرات ماده بالغ ثبت شد. همچنین برخی از پارامترهای رشدی و بیوشیمیایی گیاه اندازه­گیری شد. نتایج نشان داد که طول دوره­ی لاروی و درصد مرگ و میر لاروها روی گیاهان تیمار­شده به طور معنی­‌داری بیشتر از گیاهان شاهد بود. از سوی دیگر، نرخ رشد نسبی لاروی، باروری و زادآوری حشرات ماده پرورش­یافته روی گیاهان تیمار­شده به طور معنی­‌داری کمتر از شاهد بود. تعداد برگ، حجم ریشه، وزن میوه در بوته (عملکرد) و همچنین مقادیر برخی عناصر کم مصرف و پرمصرف گیاه در گیاهان تیمار شده با قارچ به طور معنی­‌داری بیشتر از گیاهان شاهد بود. همچنین در گیاهان تیمار شده با قارچ تریکودرما فعالیت آنزیم­های پلی فنل اکسیداز و کاتالاز و مقادیر پرولین و پراکسید هیدروژن گیاه به طور معنی­‌داری نسبت به گیاهان شاهد افزایش یافت. از نتایج این تحقیق اینگونه استنباط می­شود که استفاده از فرآورده زیستی T. harizianum T22 به جذب بیشتر مواد مغذی به گیاه کمک کرده و باعث تحریک و تقویت سیستم دفاعی گیاه در برابر حمله کرم میوه گوجه­فرنگی شد. نتایج این پژوهش نشان می­‌دهد که استفاده از میکروب­‌های مفید خاک برای تقویت دفاع گیاه در جهت حفاظت از محصول، یک رهیافت امیدوار­کننده برای کنترل آفات به منظور کاهش کاربرد آفت­‌کش­‌ها می­باشد.
کلیدواژه‌ها
القای مقاومت
پارامترهای زیستی
ترکیبات دفاعی گیاه
فرآورده‌های زیستی
کرم میوه گوجه‌فرنگی
موضوعات
  1. Abdul-Wahid, O.A., & Elbanna, S.M. (2012). Evaluation of the insecticidal activity of Fusarium solani and Trichoderma harzianum against cockroaches; Periplaneta americana. African Journal of Microbiology Research 6: 1024-1032. ‏http://doi.org/10.5897/Agmeri11.300.
  2. Alinc, T., Cusumano, A., Peri, E., Torta, L., & Colazza, S. (2021). Trichoderma harzianum strain T22 modulates direct defense of tomato plants in response to Nezara viridula feeding activity. Journal of Chemical Ecology 47: 455-462. http://doi.org/10.1007/s10886-021-01260-3.
  3. Amini, S., Ghobadi, S., & Yamchi, A. (2015). Proline accumulation and osmotic stress: an overview of P5CS gene in plants. Journal of plant Molecular Breeding 3: 44-5. http://doi.org/22058/JPMB.2015.17022.
  4. Azimi, S., Saedeh, S., & Alizadeh, A. (2020). Effect of bean plant treatment with Trichoderma harzianum TR6 on the biology of bean aphid Aphis fabae. Journal of Applied Research in Plant Protection 10: 1-16. (In Persian with English Abstract)
  5. Bates, L.S., Waldren, R.P., & Teare, I.D. (1973). Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and Soil 39: 205-207. ‏
  6. Battaglia, D., Bossi, S., Cascone, P., Digilio, M.C., Prieto, J.D., Fanti, P., Guerrieri, E., Iodice, L., Lingua, G., & Lorito, M. (2013). Tomato below ground-above ground interactions: Trichoderma longibrachiatum affects the performance of Macrosiphum euphorbiae and its natural antagonists. Molecular Plant Microbe Interaction 26: 1249–1256.
  7. Bi, J.L., & felton, G.W. (1995). Foliar oxidative stress and insect herbivory: Primary compounds, secondary metabolites, and reactive oxygen species as components of induced resistance. Journal of Chemical Ecology 21: 1511–1530.
  8. Cardoza, Y.J., Klepzig, K.D., & Raffa, K.F. (2006). Bacteria in oral secretions of an endophytic insect inhibit antagonistic fungi. Ecological Entomology 31: 636-645.
  9. ‏Chance, B., & Maehly, A.C. (1955) Assay of Catalase and Peroxidase. Methods in Enzymology 2: 764-775.
  10. Coppola, M., Cascone, P., Di Lelio, I., Woo, SL., Lorito, M., Rao, R., Pennacchio, F., Guerrieri, E., & Digilio, M.C. (2019). Trichoderma atroviride P1 colonization of tomato plants enhances both direct and indirect defense barriers against insects. Front Physiology 10: 1–12.
  11. Dicke, M., & Hilker, M. (2003). Induced plant defences: from molecular biology to evolutionary ecology. Basic Appllied Ecology 4: 3–14.
  12. Fitt, G.P., Zalucki, M.P., & Twine, P. (1989). Temporal and spatial patterns in pheromone-trap catches of Helicoverpa (Lepidoptera: Noctuidae) in cotton-growing areas of Australia. Bulletin of Entomological Research 79: 145-161.
  13. Gull, A., Lone, A.A., & Wani, N. (2019). Biotic and Abiotic Stresses in Plants. http://org/10.5772/intechopen.85832.
  14. Harman, G.E., Howell, C.R., Viterbo, A., Chet, I., & Lorito, M. (2004). Trichoderma species—opportunistic, avirulent plant symbionts. Nature reviews Microbiology 2: 43-56.
  15. Kessler, A., & Baldwin, I.T. (2001). Defensive function of herbivore-induced plant volatile emissions in nature. Science 291: 2141–2144.
  16. Mazzi, D., & Dorn, S. 2012. Movement of insect pests in agricultural landscapes. Annals of Applied Biology 160: 97-113.‏ http://org/10.1111/j.1744-7348.2012.00533.x.
  17. Ousley, M.A., Lynch, J.M., & Whipps, J.M. (1994). Potential of Trichoderma as consistent plant growth stimulators. Biology and Fertility of Soils 17: 85-90.
  18. Qing-hua, Y., Li, Y., Qing, W., & Xiao-Qin, M. (2012). Determination of major and trace elements in six herbal drugs for relieving heat and toxicity by ICP-AES with microwave digestion. Journal of Saudi Chemical Society 16: 287-290. ‏
  19. Santamarina-Fojo, S., Peterson, K., Knapper, C., Qiu, Y., Freeman, L., Cheng, J.F., & Brewer, H.B. (2000). Complete genomic sequence of the human ABCA1 gene: analysis of the human and mouse ATP-binding cassette A promoter. Proceedings of the National Academy of Sciences 97: 7987-7992. ‏
  20. Smith, R.J., Lee, E.C., Kimberling, W.J., Daiger, S.P., Pelias, M.Z., Keats, B.J., & Hejtmancik, J.F. (1992). Localization of two genes for Usher syndrome type I to chromosome 11. Genomics 14: 995-1002. ‏
  21. Tefera, T., & Vidal, S. (2009). Effect of inoculation method and plant growth medium on endophytic colonization of sorghum by the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana. BioControl 54: 663-669. http://doi.org/1007/s10526-009-9216-y. ‏
  22. Velikova, V., Yordanov, I., & Edreva, A. (2000). Oxidative stress and some antioxidant systems in acid rain treated bean plants: Protective role of exogenous polyamines. Plant Science 151: 59-66.
  23. Vinale, F., Sivasithamparam, K., Ghisalberti, E.L., Marra, R., Wooa, S.L., & Lorito, M. (2008). Trichoderma- plant- pathogen interactions. Soil Biology and Biochemistry 40: 1-10. http://doi.org/10.1007/s12088-012-0308-5.
  24. War, A.R., Paulraj, M.G., Ahmad, T., Buhroo, A.A., Hussain, B., Ignacimuthu, S., & Sharma, H.C. (2012). Mechanisms of plant defense against insect herbivores. Plant Signal Behavior 7: 1306-1320. http://doi.org/10.4161/psb.21663.
  25. Wesche-Ebeling, P., & Montgomery, M.W. (1990). Strawberry polyphenoloxidase: Extraction and partial characterization. Journal of Food Science 55: 1320–1324.
  26. Windham, MT., Elad, Y., & Baker, R. (1986). Mechanism for increased plant growth induced by Trichoderma Phytopathology 76: 518–521.
  27. Zalucki, M.P., Daglish, G., Firempong, S., & Twine, P. (1986). The biology and ecology of Heliothis armigera (Hubner) and Heliothis punctigera Wallengren (Lepidoptera, Noctuidae) in Australia-What do we know. Australian Journal of Zoology 34: 779-814. ‏
  28. Zhang, Y., Zhou, H., Tang, Y., Luo, Y., & Zhang, Z. (2022). Hydrogen peroxide regulated salicylic acid– and jasmonic acid–dependent systemic defenses in tomato seedlings. Food Science and Technology 42: e54920. http://org/10.1590/fst.54920.
ارسال نظر در مورد این مقاله
نام را وارد کنید.
نشانی پست الکترونیکی را به درستی وارد کنید.
وابستگی سازمانی را به درستی وارد کنید.
توضیحات را وارد کنید (حداقل 50 حرف)
CAPTCHA Image
شناسه امنیتی را به درستی وارد کنید.