ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی مقاومت برخی ارقام گوجهفرنگی نسبت به نماتد ریشهگرهی Meloidogyne javanica در شرایط گلخانه
نماتدهای ریشهگرهی، از مهمترین نماتدهای انگل گیاهی در سطح جهان میباشند که اغلب محصولات زراعی را مورد حمله قرار میدهند. استفاده از ارقام متحمل یا مقاوم به نماتد، یکی از روشهای موثر در کاهش خسارت ناشی از نماتدهای ریشهگرهی است. در این مطالعه با هدف ارزیابی سطح مقاومت تعدادی از ارقام گوجهفرنگی شامل ALYSTE F-1، ARYZA F-1، Early Urbana، Rutgers و Mobil ( هلند و مجارستان)، نسبت به حملهی نماتد ریشهگرهی Meloidogyne javanica، در قالب پنج تکرار و در دو حالت مایهزنی و عدم مایهزنی در شرایط گلخانهای، برخی شاخصهای رشدی گیاه (وزن تر و خشک ریشه، وزن تر و خشک بخش هوایی، طول ریشه، ارتفاع گیاه و وزن تر و خشک کل) و تولیدمثلی نماتد (تعداد گال و توده تخم نماتد در گرم ریشه و کل ریشه، تعداد تخم موجود در توده تخم، تعداد لاروهای سن دوم موجود در خاک، جمعیت نهایی نماتد و فاکتور تولیدمثلی) بررسی شده است. نتایج نشان داد که رقم ALYSTE F-1، با کمترین تعداد گال ریشه، تودهتخم، تخم و لارو سن دوم موجود در خاک و به تبع آن کمترین میزان جمعیت نماتد، به عنوان رقمی نسبتا مقاوم شناخته شد. از نظر صفات رویشی گیاه نیز مشخص گردید رقم ALYSTE F-1، در بالاترین سطح، از لحاظ ویژگیهای رویشی بوده و از تفاوت آماری معنیداری نسبت به دیگر ارقام برخوردار بوده است. نتایج همچنین نشان داد که ارقام موبیل هلند، موبیل مجارستان، ارلیاربانا، ARYZA F-1 و روتگرس نسبت به نماتد ریشهگرهی، براساس فاکتور تولیدمثل (RF) و شاخص گال در زمرهی ارقام خیلی حساس طبقهبندی شدند. براساس ویژگیهای زایشی نماتد مشخص گردید که ارقام موبیل هلند، موبیل مجارستان و ارلیاربانا، بیشترین جمعیت نماتد و بالاترین فاکتور تولیدمثل را به خود اختصاص دادند اما از لحاظ ویژگیهای رویشی، رقم روتگرس در بین ارقام، از تاثیرپذیری بیشتری برخوردار بود. نتایج تجزیه خوشهای براساس مجموع صفات رویشی گیاه و تولیدمثلی نماتد نیز نشان داد که رقم ALYSTE F-1 به صورت مجزا از دیگر ارقام قرار گرفت. در نهایت براساس مجموع نتایج حاصل از این پژوهش، رقم ALYSTE F-1، به عنوان مقاومترین رقم شناخته شد.
https://jpp.um.ac.ir/article_39797_aab3155f156432ab21923298417a67fc.pdf
2021-10-23
279
291
10.22067/jpp.2021.32748.0
ارقام گوجهفرنگی
صفات تولیدمثلی نماتد
صفات رویشی گیاه
مقاومت
Meloidogyne javanica
آمنه
اسدی سرداری
amenehasadi1@gmail.com
1
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
عصمت
مهدیخانی مقدم
mahdikhani_e@yahoo.com
2
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
محمد
زکی عقل
zakiaghl@um.ac.ir
3
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
Abdollahi M. 2015. Response of ten greenhouse cucumber cultivars to root-knot nematode, Meloidogyne javanica. Seed and Plant Improvement Journal 30-1(1): 55-75. (In Persian)
1
Alvani S., Mahdikhani Moghadam E., Giblin-Davis R.M., and Pedram M. 2016. Description of Ektaphelenchus berbericussp. (Rhabditida: Ektaphelenchinea) from eastern Iran. Nematology 18: 1063-1077.
2
Bailey D.M. 1941. The seedling method for root- knot nematode resistance. Proceeding of American Society of Horticultural Science 38: 573-575.
3
Bakker E., Dees R., Bakker J., and Govers A. 2006. Mechanisms involved in plant resistance to nematodes. In: Tuzun S., and Bent E (ed.). Multigenic and Induced Systemic Resistance in Plants. Springer science+Busines Media Inc.
4
Canto-Saenz M. 1983. The nature of resistance to Meloidogyne incognita (Kofoid & White) Chitwood. P. 160-165. In: C.C Carter (Ed.). Proceedings of the Third Research & Planning Conference on Root-Knot Nematodes, Meloidogyne International Meloidogyne Project. Lima, Peru.
5
Castagnone-Sereno P., Wajnberg E., Bongiovanni M., Leroy F., and Dalmasso A. 1994. Genetic variation in Meloidogyne incognita virulence agianst the tomato Mi resistance gene: evidence from isofemale line selection studies. Theoretical and Applied Genetics 88: 749-753.
6
Caveness F.E., and Jepsen H.J. 1955. Modification of the centrifugal flotation technique for the isolation and concentration of nematodes and their eggs from soil and plant tissue. Proceedings of the Helminthological Society of Washington 22: 87-89.
7
Devran Z., and Elekcioglu I.H. 2004. The screening of F2 plants for the root knot nematode resistance gene Mi by PCR in tomato. Turkish Journal of Agriculture and Forestry 28: 253-257.
8
Dong W., Holbrook C.C., Timper P., Brenneman T.B., and Mullinix G. 2007. Comparison of methods for assessing resistance to Meloidogyne arenaria in peanut. Journal of Nematology 39: 169-175.
9
Dropkin V.H. 1969. The necrotic reaction of tomatoes and other hosts resistance to Meloidogyne: reversal by temperature. Phytopathology 59:1632-1637.
10
Ghayedi S., and Abdollahi M. 2013. Evaluation of eight bean cultivars for resistance to root knot nematode, Meloidogyne javanica. Seed and Plant Improvement Journal 30-1(1): 17-36. (In Persian)
11
Hadisoeganda W.W,. and Sasser J.N. 1982. Resistance of tomato, bean, southern pea and garden pea cultivars to root-knot nematodes based on host suitability. Plant Disease 66: 145-150.
12
Hussey R.S., and Barker K.R.1973. Acomparison of methods of collecting inocula of Meloidogyne spp. including a new technique. Plant Disease Reports 57: 1025-1028.
13
Hussey R.S. and Jansen G.S. 2002. Root-knot nematodes: Meloidogyne P. 69-76. In: J. L. Starr et al. Plant Resistance to Parasitic Nematodes. CAB International.
14
Jaiteh F., Kwoseh C., and Akromah R. 2012. Evaluation of tomato genotypes for resistance to root-knot nematodes. African Crop Science 20: 41-49.
15
Jepson S.B. 1987. Identification of root-knot nematodes Meloidogyne CABI Publishing.
16
Kaloshian I., Williamson V.M., Miyao G., Lawn D.A., and Westerdahl B.B. 1996. Resistance- breaking nematodes in California tomatoes California Agriculture 50: 18-19.
17
Kamalwanshi R.S., Khan A., and Srivastava A.S. 2004. Reaction of tomato germplasm against root knot nematode, Meloidogyne incognita. Indian Journal of Nematology 34: 94-95.
18
Karssen G., and Moens M. 2006. Root- knot nematodes. p. 59-90. In R.N Perry and M Moens. (ed). Plant Nematology Wallingford. CABI Publishing.
19
Khan M.R. 1994. Nematology in developing countries. p. 379- 398. In: C.C. Carter and J. N. Sasser. (ed.) An Advanced Treatise on Meloidogyne 1: Biology and control. Co-publication of Department of Plant Pathology, North Carolina State University and the USAID, Raleigh, North Carolina, USA.
20
Khodaei Arbat A., Taheri A.A.H., Pahlevani M.H., and Niknam CH. R. 2009. Evaluation of tomato cultivars resistance to root-knot nematode (Meloidogynenjavanica Chitwood, 1949). Journal of Plant Production 16: 45-55. (In Persian)
21
Li X.X., and Zhu D.W. 2005. Descriptors and data standard for cucumber (Cucumis sativus). Beijing: China Agriculture Press, 78-79.
22
Mani A., and Zidgali T.Al. 1995. Screening of tomato cultivars for resistance against Meloidogyne incognita. Nematologia Mediterranea 23: 269.
23
Mirehki K., Abdollahi M., and Dehdari A. 2014. Response of eight tomato cultivars to root-knot nematode, javanica, under glasshouse condition. Iranian Journal of Plant Protection Science 44: 291-298. (In Persian)
24
Mobasseri M., Pedram M., and Pourjam E. 2017. A new species of the rare genus Anguillonema Fuchs, 1938 (Nematoda: Hexatylina, Sphaerulariodea) with its molecular phylogenetic study. Journal of Nematology 49: 286-294.
25
Nasohi G., and koshki M. 2002. Tomato in Greenhouse. Authors, 122p.
26
QuesenberryH., Baltensperger D.D., Dunn R.A., Wilcox C.J., and Hardy S.R. 1989. Selection for tolerance to root-knot nematodes in red clover. Crop Science 29: 62-65.
27
Ramezani B., Mahdikhani Moghadam E., and Rouhani H. 2013. Resistance evaluation of some tomato cultivars to root-knot nematode, Meloidogyne javanica, in greenhouse conditions. Journal of Plant Protection 27(3): 276-285. (In Persian)
28
Reddy Y.S., Sellaperumal C., Prasanna H.C., Yadav A., Kashyap S.P., Singh S., Rai N., Singh M., and Singh B. 2016. Screening of tomato genotypes against root-knot nematode and validation of Mi 1 gene linked markers. Proceedings of the National Academy of Sciences, India Section B: Biological Sciences, 88.DOI: 10.1007/s40011-016-0731-1.
29
Roberts P.A. 2002. Concepts and consequences of resistance. Pp. 23–41 in L. Starr, R. Cook, and J. Bridge, eds. Plant Resistance to Parasitic Nematodes. Wallingford, UK: CAB International.
30
Sasser J.N., Carter C.C., and Hartman K.M. 1984. Standardization of host suitability studies and reporting of resistance to root-knot nematode. North Carolina State University, Raleigh and United States Agency for International Developmen, 7pp.
31
Singh S.J., and Khurma U.R. 2007. Susceptibility of six tomato cultivars to the root-knot nematode, Meloidogyne incognita. The south pacific Journal of Natural Science 13: 73-77.
32
Smith P.G. 1944. Embryo culture of a tomato species hybrid. In: Proceeding of American Society of Horticultural Science 44: 413-416.
33
Stirling G., Nicol J., and Reay F. 2002. Advisory services for nematode pests (operational guidelines). Publication No. 99/4. Rural Industries Research Development Corporation 99(4). 114
34
Sujatha R., Irene Vethamoni P., Manivanna N., and Sivakumar M. 2017. Screening of tomato genotypes for root knot nematode (Meloidogyne incognita Kofoid and White Chitwood). International Journal of Current Microbiology and Applied 6: 1525-1533.
35
Taylor A.L., and Sasser J.N. 1978. Biology, Identification and Control of Root Knot Nematodes (Meloidogyne ). A Cooperative Publication of the Department of Plant Pathology, North Carolina State University and The United States Agency for International Development. North Carolina State Graphics, Raleigh, N.C.
36
Udo I., Uguru M.I., Ogbuji R.O., and Ukeh D.A. 2008. Sources of tolerance to root-knot nematode Meloidogyne javanica In cultivated and wild tomato species. Plant Pathology 7: 40-44.
37
Walters S.A., Wehner T.C., and Barker K.R. 1999. Greenhouse and field resistance in cucumber to root-knot nematodes. Nematology 1: 279-284.
38
Williamson V.M., and Kumar A. 2006. Nematode resistance in plants: the battle underground. Trends in Genetics 22: 396-403.
39
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات بیولوژیکی گونههای تریکودرمای ریزوسفر گوجهفرنگی و قارچکش بیولوژیکی Trichomax-HV علیه بیماری پژمردگی فوزاریومی گوجهفرنگی در شرایط آزمایشگاهی
پژمردگی فوزاریومی گوجهفرنگی از مهمترین و شایعترین بیماریهای گوجهفرنگی در مناطق زیر کشت این گیاه در سراسر جهان میباشد. کنترل بیولوژیک بیماریهای گیاهی با استفاده از میکروارگانیسمهای غیر بیماریزا توجه بسیاری از پژوهشگران را به خود جلب نموده است. از موفقترین و پرکاربردترین میکروارگانیسمهایی که باعث جلوگیری از خسارت قارچها در گیاهان میشوند، گونههای مختلف جنسTrichoderma میباشند. در این تحقیق اثر دو جدایه Trichoderma harzianum و Trichoderma virens و سم بیولوژیک Trichomax-HV علیه Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici عامل بیماری پژمردگی فوزاریومی گوجهفرنگی در آزمایشگاه و گلخانه مورد ارزیابی قرار گرفت. فعالیت آنتاگونیستی این جدایهها علیه این بیمارگر در آزمایشگاه به روش کشت متقابل مورد مطالعه قرار گرفت. به منظور بررسی اثر این جدایههای آنتاگونیست در گلخانه، ابتدا مایه تلقیح قارچ بیمارگر به یکسوم تحتانی خاک گلدانها افزوده شد و به محض انتقال دادن گیاهچهها به گلدان، آنتاگونیستهای قارچی به گلدانها اضافه شد و پس از 60 روز برهمکنش بین بیمارگر و آنتاگونیست، مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج بررسیهای آزمایشگاهی نشان داد که T. harzianum به میزان 9.48 درصد، Trichomax-HV به میزان 6.45 درصد و T. virens به میزان 22.36 درصد از رشد بیمارگر (در مقایسه با شاهد) جلوگیری کردند و باعث کلونیزه کردن پرگنههای بیمارگر شدند. عوامل آنتاگونیست در آزمایشهای گلخانهای موجب افزایش ارتفاع ساقه، وزن تر و خشک اندامهای هوایی و ریشه در غیاب بیمارگر شدند. فقط T. harzianum در برهمکنش با بیمارگر باعث افزایش ارتفاع ساقه، وزن تر و خشک اندامهای هوایی و ریشه نسبت به شاهد آلوده شد.
https://jpp.um.ac.ir/article_40335_2f07e817c5933315f5b0b203f7ed8ba8.pdf
2021-10-23
293
302
10.22067/jpp.2021.32846.0
کنترل بیولوژیک
T. harzianum
T. virens
سجاد
جلالی
samira.pakbaz@gmail.com
1
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل. سیستان و بلوچستان. ایران
AUTHOR
مصطفی
درویش نیا
darvishnia.m@lu.ac.ir
2
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لرستان، لرستان، ایران
LEAD_AUTHOR
ناصر
پنجه که
naserpanjehkeh@gmail.com
3
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل. سیستان و بلوچستان. ایران
AUTHOR
سمیرا
پاکباز
pakbaz.s@lu.ac.ir
4
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لرستان، لرستان، ایران
AUTHOR
Akrami M., and Ebrahimof A. 2010. The Investigation efficiency of combining two Trichoderma species in the biological control of Fusarium diseases of chickpea under greenhouse conditions. Journal Uni. Agricultural Science Tabriz 1(14): 75-83.
1
Amini K. 2009. Physiological race of Fusarium oxysporum sp. lycopersici in Kurdistan Province of Iran and reaction of some tomato cultivars to race 1 of pathogen. Plant Pathology 8: 68-73.
2
Banihashemi Z., and Dezeeuw D.J. 1969. Two improved methods for selectively isolating Fusarium oxysporum from soil and plant roots. Journal Plant Disease 53: 589-591.
3
Banihashmi Z. 2010. Reaction of Cucumis melo cultivars to races of Fusarium oxysporumsp. melonis the cause of melon vascular wit. Journal Plant Disease 46(1): 11-22.
4
Behboudi K., Sharifi Tehrani A., Hejaroud G.H., and ZAD J. 2005. Antagonistic effects of Trichoderma species on Phytophthora capsici, the causal agent of pepper root and crown rot. Plant Phytopathology 41: 345-362.
5
Booth C. 1971. The Genus Fusarium, Common wealth Mycological Institute Kew, Surrey, England, Printed in Great Britain by the Eastern Press Limited London and Reading 237 pp.
6
Chet I. 1987. Trichoderma– Application, mode of action and potential as a biocontrol agent of soil borne plant pathogenic fungi, Innovative Approaches to Plant Disease Control (I, Chet, Ed), J. Wiley and Sons, New York: 137-160.
7
Chet I., Inbar J., and Hadar Y. 1997. Fungal Antagonists and mycoparasites in: The mycota, Environmental and microbial relationships. Wicklow, D. T. And B. soders trom (eds). Vel 4. Springer- verlag, Berlin, Germany 165-184.
8
Cook R.J., and Baker K.F. 1983. The Nature and Practice of Biological Control of Plant Pathogens. American Phytopathological Society, 539 pp.
9
Davet P. 1979. Technique pour lanalyse des populations de Trichoderma et de Gliocladium virens dans le sol. Annuals Phytopathology 11: 529-533.
10
Dennis C., and Webester J. 1971. Antagonist properties of species group of Trichoderma Hyphal interaction. Transaction of the British Mycological Society 57: 363-369.
11
Gerlach W., and Nirenberg H. 1982. The Genus Fusarium a Pictorial atlas. Mitt. Biol. Bundesanst. Land-und Forstwirtsch. Berlin Dahlem, 406 pp.
12
Harman G. E., Howell C.R., Viterbo A., Chet I., and Lorito M. 2004. Trichoderma species- opportunistic, avirulent plant symbionts. Nature Reviews Microbiology 2: 43–56.
13
Howell C.R. 2003. Mechanisms employed by Trichoderma species in the biological control of plant diseases: The history and evolution of current concepts. Journal Plant Disease 87(1): 4-10.
14
Juber K.S., Hassan A.K., Alhamiri Y.N. 2014. Evaluation of biocontrol agents and chemical inducers for managing a vascular wilt of tomato caused by Fusarium oxysporum sp. lycopersici. Journal Biology Agriculture Healthcare 4(27): 335-343.
15
Kamal A.M., Elyousr A., and Mohamed H.M. 2009. Biological control of Fusarium wilt in tomato by plant Growth-promoting yeast and Rhizobacteria. Plant Pathology 25(2): 199-204.
16
Kari Dolatabadi H., and Mohammadi Goltapeh E. 2010. In vivo biological activity of Piriformospora indica, Sebacina vermifera and Trichoderma against Fusarium wilt of lentil. Journal of Plant Protection Reseach 2(2): 127-143.
17
Leslie J.F., and Summerell B.A. 2006. The Fusarium Laboratory Blackwell Publishing Professional, Ames, USA, 388pp.
18
Little T.M., and Hills F.J. 1978. Agricultural experimentation design and analysis. John Willy & Sons 350 pp.
19
Manafi R., Babai ahri A., Arznlo M., and Valizadeh M. 2012. Evaluation common resistance varieties a greenhouse tomato to Fusarium wilt in East Azerbaijan province and study of biological control of the disease. Journal of Sustainable Agricultural Production 22(1): 145-158.
20
Mohammadi N. 2010. Studies on pathogenicity and genetic diversity of some Iranian isolates Fusarium oxysporum sp lentis and determination of resistant lentil cultivars. M. SC. Thesis, Uni. Tarbiat Modares, Iran. 134p.
21
Nawrocka J., Malolepza V. 2013. Diversity in plant systemic resistance induced by Trichoderma. Biology Control 67(2): 149-156.
22
Nelson P.E., Toussoun T.A., and Marasas W.F.O. 1983. Fusarium Species: An Illustrated Manual for Identification. Pennsylvania State Uni. Press, Uni. Park. 193p.
23
Niknejad Kazempour M. 1992. Effect of several fungicides and Trichoderma fungi on tomato pathogen Fusarium wilt Fusarium oxysporumsp. lycopersici, MSc thesis, Faculty of Agriculture Tehran Uni. Karaj: 129 p.
24
Niknejad Kazempour M., and Sharifi Tehrani A. 1992. Effect of antagonistic fungi Trichoderma on pathogen Fusarium wilt of tomato Fusarium oxysporumsp. lycopersici. Laboratory and in greenhouse condition. Proc. 11th Iran. Plant Protec. Cong. Uni. Gilan-Rasht: 165p.
25
Niknejad Kazempour M., Sharifi Tehrani A., and Okhovat M. 2000. Effect of Antagonistic fungi Trichoderma On the control of Fusarium wilt of tomato caused Fusarium oxysporum f.sp. lycopersici under greenhouse condition. Iranian Journal Agricultural Science 31(1): 31-37. (In Persian with English abstract)
26
Ojha S., Chatterjee NC. 2012. Induction of resistance in tomato against Fusarium oxysporum sp. lycopersici mediated through salicylic acid and Trichoderma harzianum. Journal Plant Protecttion Research 52(2): 220-225.
27
Panjekeh N., Saberian A., Afshari Azad H., and Salari M. 2011. Biological control of phomalingam, the causal agent of rapeseed blackleg, by Trichoderma and Bacillus subtilis Iranian Journal of Plant Pathology 47(1): 19-30. (In Persian with English abstract)
28
Papavizas G.C. 1985. Trichoderma and Gliocladium: Biology, Ecology, and Potential for Biocontrol. Annual Review of Phytopathology 23: 23-54.
29
Pourjam E., Kamali N., and Sahebani N. 2015. Elicitation of defense responses in tomato against Meloidogyne javanica and Fusarium oxysporum sp. lycopersici wilt complex. Journal Crop Protection 4(1): 29-38.
30
Rajik M., Biswas SK., and Shakti S. 2012. Biochemical basis of defense response in plant against Fusarium wilt through bio-agents as an inducer. Afr Journal Agriculture Research 7(43): 5849-5857.
31
Sajadi S.A., and Asemi H. 2008. Evaluation of biological control potential Trichoderma species against of tobacco collar rot in Mazandaran province; New Findings in Agriculture 2(3): 253-270.
32
Sivan A., Ucko O., and Chet I. 1986. Trichoderma harzianum and effective biocontrol agent of Fusarium Microbial Communities in Soil, 447pp.
33
Sundaramoorthy S., and Balabaskar P. 2013. Biocontrol efficacy of Trichoderma against wilt of tomato caused by Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici. Journal ApplBiol Biotechnology 1(3): 36- 40.
34
Walker J.C. 1981. Fusarium wilt of tomato. Monograph NO. 6, APS Press, 56 pp.
35
Zamanizadeh H.R., Hatami N., Aminaee M.M., and Rakhshandehroo F. 2011. Application of biofungicides in control of damping disease off in greenhouse crops as a possible substitute to synthetic fungicides. International Journal Environment Science Technology 8 (1): 129-136.
36
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی کارایی میکروارگانیسمهای موثر (EM®) علیه نماتد ریشهگرهی (Meloidogyne javanica) در گیاه گوجهفرنگی
نماتدهای موجود در جنس Meloidogyne spp. به دلیل انتشار جغرافیایی گسترده، دامنه میزبانی وسیع و ایجاد خسارت شدید در گیاهان به عنوان خطرناکترین نماتدهای انگل گیاهی مطرح میباشند. به دلیل آثار منفی استفاده از سموم نماتدکش بر سلامت انسان و محیط زیست، توسعه سایر روشهای مدیریتی برای نماتدهای انگل گیاهی ضروری میباشد. مهار زیستی یکی از گزینههای مورد توجه برای کنترل این نماتدهای به جای سموم شیمیایی میباشد. در مطالعه حاضر، در شرایط گلخانه تأثیر غلظتهای مختلف از ترکیب تجاری EM® (میکروارگانیسمهای موثر) به تنهایی و EM® + عصاره برگ گیاه گلجعفری (Tagetes erecta) مخلوط شده با نسبت مساوی، روی گیاه گوجهفرنگی برای کنترل نماتد M. javanica بررسی شدند. گیاهچههای گوجهفرنگی در مرحله چهار برگی با یک میلیلیتر از سوسپانسیون تخم نماتد M. javanica حاوی 6000 تخم مایهزنی شدند. همزمان با مایهزنی نماتد و به روش خیساندن خاک، گیاهچهها با 50 میلیلیتر EM® و EM® + عصاره برگ گیاه گلجعفری در غلظتهای 5، 10، 15 و 20 درصد تیمار شدند. آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با پنج تکرار انجام پذیرفت. نتایج پس از 60 روز نشان داد که خیساندن خاک گیاهان سالم و آلوده با EM® به تنهایی و EM® + عصاره برگ گیاه گلجعفری باعث بهبود شاخصهای رویشی گیاه میشود. تعداد تخم، گال و کیسه تخم در ریشه و فاکتور تولیدمثل نماتد در گیاهان تیمار شده با مخلوط EM® + عصاره برگ گیاه گلجعفری در غلظت 20 % به عنوان بهترین تیمار، به ترتیب 28، 40، 37 و 27 درصد نسبت به گیاهان شاهد کاهش یافت.
https://jpp.um.ac.ir/article_40197_53292819a476458ff38d06f4fdab4550.pdf
2021-10-23
303
310
10.22067/jpp.2021.67213.0
شاخصهای جمعیتی نماتد
شاخصهای رویشی گیاه
عصاره برگ گلجعفری
گلخانه
مهار زیستی
حبیب اله
چاره گانی
h.charehgani@yu.ac.ir
1
بیماریشناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج
LEAD_AUTHOR
سعید
مهدی
saeidmahdi9776@gmail.com
2
بیماریشناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج
AUTHOR
Alikarami M., Charehgani H., and Abdollahi M. 2017. Nematicidal activity of some plant extracts on root-knot nematode on tomato (Solanum lycopersicum) in vitro and in vivo Iranian Journal of Plant Protection Science 48(2): 317-326. (In Persian with English abstract)
1
Ansari S., Charehgani H., and Ghaderi R. Resistance of ten common medicinal plants to the root-knot nematode Meloidogyne javanica. Hellenic Plant Protection Journal 12: 6-11.
2
Chantal K., Xiaohou S., Weimu W., and Basil T.I.O. 2010. Effects of effective microorganisms on yield and quality of vegetable cabbage comparatively to nitrogen and phosphorus fertilizers. Pakistan Journal of Nutrition 9: 1039-1042.
3
Chapuis-Lardy L., Diakhate S., Djigal D., BA A.O., Dick R.P. Sembene P.M., and Masse D. 2015. Potential of sahelian native shrub materials to suppress the spiral nematode Helicotylenchus dihystera. Journal of Nematology 47(3): 214-217.
4
Compant S., Duffy B., Nowak J., Clement C., and Barka E.A. 2005. Use of plant growth promoting bacteria for biocontrol of plant diseases: principles, mechanisms of action, and future prospects. Applied and Environmental Microbiology 71: 4951-4959.
5
Condor A.F., Gonzalez P., and Lakre C. 2007. Effective microorganisms: Myth or reality? The Peruvian Journal of Biology 14: 315-319.
6
Dehghanian S.Z., Abdollahi M., Charehgani H., and Niazi A. 2020. Combined application of salicylic acid and Pseudomonas fluorescens CHA0 on the expression of PR1 gene and control of Meloidogyne javanica in tomato. Biological Control 141: 104134. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2019.104134.
7
Dourado D.P., de Oliveira Lima F.S., and Muraishi C.T. 2013. Nematicidal activity in vitro and in vivo of neem oil on Meloidogyne incognita. Brazilian Journal of Applied Technology for Agricultural Science 6(1): 63-68.
8
Hashemi S., Abdollahi M., and Charehgani H. 2017. Inhibitory effect of Quercus brantii extract on Meloidogyne javanica, the causal agent of root-knot disease, in tomato plants. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants 33(1): 39-50. (In Persian with English abstract)
9
Higa T. 1991. Effective microorganisms: a biotechnology for mankind. p. 8–14. In J.F. Parr, S.B. Hornick and C.E. Whitman (eds.). First International Conference on Kyusei Nature Farming. Washington, DC, USA.
10
Huang W.K., Cui J.K., Liu S.M., Kong L.A., Wu Q.S., Peng H., He W.T., Sun J.H., and Peng D.L. 2016. Testing various biocontrol agents against the root-knot nematode (Meloidogyne incognita) in cucumber plants identifies a combination of Syncephalastrum racemosum and Paecilomyces lilacinus as being most effective. Boilogical Control 92: 31-37.
11
Hussey R.S., and Barker K.R. 1973. A comparison of methods of collecting inocula of Meloidogyne including a new technique. Plant Disease Reporter 57: 1025-1028.
12
Jepson S.B. 1987. Identification of root knot nematodes. Cambrian News Ltd. CABI, Wallingford, UK.
13
Kennedy I.R., Choudhury A., and Kecskes M.L., 2004. Non-symbiotic bacterial diazotrophs in crop-farming systems: can their potential for plant growth promotion be better exploited? Soil Biology and Biochemistry 36: 1229-1244.
14
Khan I.A., Sayed M., Shaukat S.S., and Handoo Z.A. 2008. Efficacy of four plant extracts on nematodes associated with papaya in Sindh, Pakistan. Nematologia Mediterranea 36(1): 93-98.
15
Khan M.S., Zaidi A., and Wani P.A. 2007. Role of phosphate-solubilizing microorganisms in sustainable agriculture: a review. Agronomy for Sustainable Development 27: 29-43.
16
Marambe B., and Sangakkara U.R. 1996. Effect of EM on weed populations, weed growth and Ttomato production in Kyusei nature farming. http://www.futuretechtoday.net/em/index2.htm 6.htmlnt growth.
17
Mayer J., Scheid S., Widmer F., Fliessbach A., and Oberholzer H.R. 2010. How effective are ‘Effective microorganisms® (EM)’? Results from a field study in temperate climate. Applied Soil Ecology 46: 230-239.
18
Moazezikho A., Charehgani H., Abdollahi M., and Rezaei R. 2020. The evidence for inhibitory effect of Pseudomonas fluorescens CHA0 and aqueous extracts of Datura stramonium and Myrtus communis on tomato plants infected with Meloidogyne javanica (Tylenchida: Heteroderidae). Egyptian Journal of Biological Pest Control 30: 15. https://doi.org/10.1186/s41938-020-00217-0
19
Mohan B. 2008. Evaluation of organic growth promoters on yield of dryland vegetable crops in India. Journal of Organic Systems 3: 23-36.
20
Mosahaneh L., Charehgani H., Abdollahi M., and Rezaei R. 2020. Biological control agents in the management of different initial population densities of Meloidogyne javanica in tomato. Acta Phytopathologica et Entomologica Hungarica 55(2): 161-170.
21
Mozafaryan S., Abdollahi M., and Charehgani H. 2017. Inhibitory effects of Prangos ferulacea and Satureja hortensis on root knot nematode, Meloidogyne javanica. Iranian Journal of Plant Pathology 52(4): 445-464. (In Persian with English abstract)
22
Ncube L., Minkeni P.N.S., and Brutsch O. 2011. Agronomic suitability of effective microorganisms for tomato production. African Journal of Agricultural Research 6: 650-654.
23
Nicol J.M., Turner S.J., and Coyne D.L. 2011. Current nematode threats to world agriculture. p. 21-43. In J. Jones, G. Gheysen, and C. Fenoll (eds.). Genomics and Molecular Genetics of Plant-Nematode Interactions. Springer, Berlin.
24
Olle M. 2020. Review: Bokashi technology as a promising technology for crop production in Europe, The Journal of Horticultural Science and Biotechnology DOI:10.1080/14620316.2020.1810140.
25
Osman H.A., El-Gindi A.Y., Taha H.S., El-Kazzaz A.A., Youssef M.M.A., Ameen H.H., and Lashein A.M. 2008. Biological control of root-knot nematode Meloidogyne incoginita and evaluation of the nematicidal effects of Tagetes erecta tissue culture under laboratory and greenhouse Egyptian Journal of Phytopathology 35(1-2): 33-44.
26
Rafiee F., Charehgani H., and Abdollahi M. 2019. Evaluation of burdock and mountain almond leaf extracts against Meloidogyne javanica on tomato. Archives of Phytopathology and Plant Protection 52(11-12): 1035-1047.
27
Sarwar G., Naseem A.R., and Mujeeb F. 2009. Efficiency of various organic materials for improving chemical characteristics of normal soil. Pakistan Journal of Botany 40(5): 2107-2113.
28
Schenck zu Schweinsberg-Mickan M., and Müller T. 2009. Impact of effective microorganisms and other biofertilizers on soil microbial characteristics, organic‐matter decomposition, and plant growth. Journal of Plant Nutrition and Soil Science 172(5): 704-712.
29
Seenivasan N., and Senthilnathan S. 2017. Effect of humic acid on Meloidogyne incognita (Kofoid and White) Chitwood infecting banana (Musa). International Journal of Pest Management 64(2): 110-118.
30
Subadiyasa N.N. 1997. Effective microorganisms (EM) technology: its potential and prospect in Indonesia. Majalah Ilmiah Fakultas Pertanian Universitas Udayana 16: 45-51.
31
Taylor A.L., and Sasser J.N., 1978. Biology, identification, and control of root-knot nematodes (Meloidogyne species). Raleigh, North Carolina, US.
32
Tokeshi H., Alves M.C., Sanches A.B., and Harada D.Y. 2010. Effective microorganisms for controlling the phytopathogenic fungus Sclerotinia sclerotiorum in Lettuce. http://emrojapan.com/emdb/content/12.
33
Whitehead A.G., and Hemming J.R. 1965. A comparison of some quantitative methods of extracting small vermiform nematodes from soil. Annals of Applied Biology 55: 25-38.
34
Wijesinghe D., and Sangakkara R. 2014. Successful potato production in nature farming with effective microorganisms – A case study. p. 995-997. In G. Rahmann and U. Aksoy (eds.). Proceedings of the 4th ISOFAR Scientific Conference. 'Building Organic Bridges’, at the Organic World Congress. Istanbul, Turkey.
35
Yass S.T.A., Ammar A., Aish A.A., Al-Sandooq D.L.E., and Mostafa M.M. 2020. Activity of humic acid against root knot nemaodes on tomato. Plant Archives 20(Supplement 1): 1-3.
36
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی کنهکش انویدور اسپید 24 درصد اس سی در کنترل کنه قرمز مرکبات در استان مازندران
استفاده کنهکشها از گروههای شیمیایی جدید در تناوب مصرف علیه کنههای آفت از کاهش کارائی آنها جلوگیری میکند. در این بررسی، تاثیر غلظتهای 2/0 و 3/0 در هزار کنهکش جدید انویدور اسپید 24% اس سی با کنهکشهای آلی، سموم گیاهی، معدنی و دترجنت (شوینده) علیه جمعیت فعال کنه قرمز مرکبات در شرق و غرب استان مازندران مطالعه شد. محلولپاشی تیمارها با ملاحظه میانگین جمعیت 5 کنه فعال در سطح فوقانی 30 % نمونه برگها انجام شد. کارائی هر تیمار از طریق جمعآوری تصادفی تعداد 48 نمونه برگ و شمارش جمعیت زنده کنه در سطح فوقانی برگ در فواصل یک روز قبل و 3 ، 7 ، 14 و 21 روز بعد صورت گرفت. تاثیر سوء تیمارها روی دشمنان طبیعی با شمارش جمعیت آنها یک روز قبل و در مقایسه با 21 روز بعد و برای تعیین خسارت کمی کنه از توزین 16 پرتقال برای هر تیمار یک ماه بعد از محلولپاشی در سه نوبت به فاصله یکماه تکرار شد. نتایج تلفات کنه از تاثیر هر دو غلظت انویدور- اسپید تا نوبت 21 روز بعد با کنترل کنه آفت همراه شد و میانگین بالای 18/01 جمعیت کنه روی هر برگ در کارائی انوایدور اسپید خللی ایجاد نکرد. تلفات کنه از تاثیر کنهکشهای ارگانیک (بایومایت، مایع معدنی سیلیکون، دترجنت) و آلی (انویدور، آبامکتین، اورتوس) در شرق نسبت به غرب استان بیشتر بود. بیشترین کاهش دشمنان طبیعی از تاثیر غلظت 0.3 در هزار انویدور-اسپید و بایومایت و کمترین برای دترجنت ملاحظه شد. اثرات سوء تیمارها روی کنه اوریباتیده (Scheloribates sp.) کم و برای کنههای شکارگر (Amblyseius herbicolus, Typhlodromus caspiansis) بیشتر مشاهده شد. خسارت کمی کنه روی وزن میوه تفاوت معنیداری (p>0.05) در بین تیمارها نداشت. با استفاده از غلظت کمتر انویدور اسپید در شروع فعالیت کنه آفت تا 33 درصد از مصرف آن صرفهجویی خواهد شد.
https://jpp.um.ac.ir/article_40513_69c542e017b545aa1a523e18d38e73da.pdf
2021-10-23
311
320
10.22067/jpp.2021.32750.0
پرتقال
کنترل
کنه آفت
کنهکش جدید
مازندران
مسعود
اربابی
marbabi18@yahoo.com
1
بخش تحقیقات جانورشناسی کشاوزری، مؤسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور
LEAD_AUTHOR
شعبانعلی
مافی پاشاکلائی
mafiali@hotmail.com
2
بخش تحقیقات گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان مازندران، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
مولود
غلام زاده چیتگر
b_gh.chitgar60@yahoo.com
3
بخش تحقیقات گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان مازندران، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
مجتبی
خانی
kmojtaba39@yahoo.com
4
بخش تحقیقات جانورشناسی کشاوزری، مؤسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور
AUTHOR
1. Ahmadi K., Gholizadeh H., Ebadizadeh H.R., Hossienipour R., Hatami F., Abdshah H., Rezai M.M., Kazemifard R., and Fazeli A. 2015. Agricultural data, Horticultural crop, Deputy of Economic and Programming framework, Ministry of Jihad-e-Agriculture, 147 pp. (In Persian)
1
2. Akbarzadeh Shokat Gh.A., and Arbabi M. 2014. Effectiveness of biomite in the control European red mite (Panonychus ulmi Koch) in Ourmieh. Proceedings of 21St National Iranian Congress of Plant Protection. 23-26 August, Collage of Agriculture and natural resources, Ourmieh University, p. 10-16. (In Persian)
2
3. Arbabi M. 2010. Evaluation six decades pesticides application to control agricultural mite pests in Iran. Extended abstract proceeding of half century pesticides uses in Iran, Iranian Research Institute of Plant Protection, p. 145-159.
3
4. Arbabi M., Baradaran P., and Khosrowshahi M. 1998. Important plant feeding mites in agriculture of Iran. Ministry Agric., Agric. Res. Edu. & Ext. Organization, Plant Pests & Diseases Res., Amozesh Nasher Keshavarzi Publ., Karaj, 27 pp.
4
5. Arbabi M., Javadi S., and Jafari M.A. 2005. The effects of Spirodiclofen SC 240 on citrus rust mite (Phyllocoptruta oleivora (Ashmead)) in Western parts of Mazandaran province. Journal of Agriculture 7(1): 7-16.
5
6. Arbabi M., Javadi S., and Baradaran P. 2012. Study and comparison of registered acaricides in control citrus red mite (Panonychus citri). Applied Plant Protection Journal 1: 55-62.
6
7. Arbabi M., Asadi U., Mirhosseini M.R., and Zaghi A.R. 2006. Evaluation of Fenpyroximate 5% EC against citrus red mite (Panonychus citri (McGroger) in Sari region. Iranian Journal of Agriculture Sciences 2(3): 83-90.
7
8. Arbabi M., Daneshvar H., Shirdel R., and Baradaran P. 2011. Results of half century investigation of phytoseiid mite fauna in Iran. Extend abstract proceeding of first national biological control development in Iran. Iranian Research Institute of Plant Protection 369-378.
8
9. Arbabi M., Akbarzadeh Shokat Gh.A., Karbalaei Khiavi H., Imami M.S., Kamali H., and Farazmand H. 2020. Evaluation of Kaolin in control of Panonychus ulmi in apple orchards of Iran. Journal of Plant Protection 34(1): 47-53.
9
10. Childers C.C, Rogers M.E., McCoy C.W., Nigg H.N., and Stansly P.A. 2009. Florida citrus pest management guide: Rust mites, University of Florida Extension article, IFAS 7,
10
11. Curkovic T., Araya J.E., Canales C., and Medina A. 2006. Evaluation of two agriculture detergents as control alternatives for green peach aphid and two spotted spider mite, two pests affecting peach orchards in Chile. Acta Horticulture 713: 405–407.
11
12. Curkovic S. 2016. Detergents and Soaps as Tools for IPM in Agriculture, in: integrated Pest Management (IPM): Environmentally Sound Pest Management, http://dx.doi.org/10.5772/64343, 155-189pp.
12
13. FAO of United Nations. 2015. Citrus fruits statistic of 2015, market and policy analyses of raw materials, horticulture and tropical (RAMHOT) products team trade and markets division. http://www.fao.org/economic/est/est-commodities/citrus/en/
13
14. Gheibi M., and Taheri Y. 2014. Effects of acaricide, envidor speed, on fig spider mite Eotetranychus hirsti (Acari: Tetranychidae). Plant Protection Journal 6(3): 211-223.
14
15. Hare D.J., and Phillips P.A. 1992. Economic effect of the citrus red mite (Acari: Tetranychidae) on southern California coastal lemons. Journal Economic of Entomology 85(5): 1926-1932.
15
16. Hare D.J., Pehrson J., Clemens J., Menge J.L., Coggins C.W., Tom JR., Embleton W., and Meyer J.L. 1990. Effects of managing citrus red mite (Acari: Tetranychidae) and cultural practices on total yield, fruit size, and crop value of Navel' orange. Journal of Economic Entomology 83(3): 976-984.
16
17. Kongchuensin M., and Takafuji A. 2006. Effects of Some Pesticides on the Predatory Mite, Neoseiulus longispinosus (Evans) (Gamasina: Phytoseiidae), Journal Acarology of Society of Japan 15(1): 17-2.
17
18. Lee C.Y., Lo K.C., and Yao M.C. 2006. Effects of household soap solutions on the mortality of the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae). Formosan Entomology 26: 379-390.
18
19. Marcis D. 2012. Acaricides in modern management of plant-feeding mites. Journal of Pesticide Sciences 85: 395–408.
19
20. Migeon A., and Nougier E., and Dorkeld F. 2011. Spider Mites Web: a comprehensive database for the Tetranychidae. In Sabelis, M.W. and Bruin, J. (Eds.). Trends in Acarology, Proceedings of the 12th International Congress, pp. 557-560.
20
21. Migue J.G., Santos V.F., Amadeu M.V., Soares M., and Susana L. 2011. Evaluation of the combined effects of dimethoate and spirodiclofen on plants and earthworms in a designed microcosm experiment. Applied Soil Ecology 48: 294-300.
21
22. Osborne L.S., and Petitt F.L. 1985. Insecticidal soap and the predatory mite, Phytoseiulus persimilis (Acari: Effects of Household Soap Solutions on Tetranychus urticae 389 Phytoseiidae), used in management of the two spotted spider mite (Acari: Tetranychidae) on greenhouse grown foliage plants. J. Econ. Entomology 78: 687-691.
22
23. Rezai M., Kamali H., Shirdel D., and Akbarzadeh-Shokat Gh. 2020. Efficiency of new acaricide of EnvidorSpeed (24% SC) in control of European red mite (Panonychus ulmi) in apple orchards of west, east Azerbaijan and Khorasan Razavi provinces. Journal of Animal Environments 11(3): 257-264.
23
24. Shirdel D., and Arbabi M. 2016. Evaluation of biomite pesticide in control of Panonychus ulmi Koch population (Acari: Tetranychidae) in east Azerbaijan province. Proceeding of 22nd National Iranian Congress of Plant Protection. 27 - 30 August, College of agriculture and natural resources Karaj, Tehran University, P. 820. (In Persian)
24
25. Vacante V. 2010. Review of the phytophagous mites collected in citrus in the world. Acarologica 50(2): 221-241.
25
26 .Zomorodi A. 2003. History of Iran Plant Protection. Deputy of Horticulture, Publication, 724 pp. (In Persian)
26
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر دو ماده افزودنی Scorch و п Torpedo در کارایی حشرهکشهای ایمیداکلوپراید و فلونیکامید روی شته جالیز(Aphis gossypii Glover) در گلخانه خیار
شته جالیز (پنبه) (Aphis gossypii Glover) یکی از مهمترین آفات می باشد. مواد افزودنی (ادجوانتها) باعث بهبود و افزایش کارایی آفتکشها شده و در کاهش مصرف آنها میتوانند تاثیر داشته باشند. در تحقیق حاضر، تاثیر دو ماده افزودنی به نامهای Scorch و Torpedo п بر کارایی حشرهکشهای ایمیداکلوپراید و فلونیکامید روی شته جالیز در دو گلخانه خیار (کرج و ارومیه) در قالب طرح کاملا تصادفی در 15 تیمار و سه تکرار انجام شد. نمونهبرداری یک روز قبل از سمپاشی و سه، هفت و14 روز پس از سمپاشی انجام شد. تجزیه واریانس مرکب داده ها نشان داد که اثر متقابل تیمار در مکان معنیدار نیست. به عبارت دیگر تیمارهای آزمایشی در مکانهای مختلف، پاسخهای مشابهی را نشان دادهاند. بنابراین دادهها بر این اساس و بدون در نظر گرفتن مکانهای مورد مطالعه (ارومیه و کرج) تجزیه آماری شدند. نتایج نشان داد که هر دو ادجوانت قادرند کارائی ایمیداکلوپراید و فلونیکامید را افزایش دهند. مثلا در بازه زمانی سه روز پس از سمپاشی، کارائی تیمار ایمیداکلوپراید به تنهائی با کارائی 47/81 درصد در گروه آماری bc قرار گرفت اما تیمارهای "ایمیداکلوپراید+تورپدو" و "ایمیداکلوپراید+اسکورچ" بهترتیب 60/92 و 43/93 درصد کارائی (گروه آماری a) نشان دادند. با اضافه شدن ادجوانت تورپدو به ایمیداکلوپراید، وقتی که با کاهش دز حشرهکش همراه شد، کارائی ایمیداکلوپراید به شدت کاهش یافت. بنابراین اضافه کردن تورپدو همراه با کاهش دز ایمیداکلوپراید توصیه نمیشود. در عوض اضافه شدن اسکورچ، وقتی با کاهش دز ایمیداکلوپراید همراه شد، توانست کارائی ایمیداکلوپراید را در حد بالائی حفظ کند. علاوه بر آن، اضافه شدن هر دو ادجوانت به فلونیکامید، وقتی با کاهش دز این حشرهکش همراه شد، باعث شد که کارائی در حد بالائی حفظ شود. در مجموع نتایج تحقیق حاضر میتواند هم از نظر اقتصادی و هم از نظر زیست محیطی حائز اهمیت باشد چون طبق نتایج گرفته شده، میتوان مقدار مصرف ایمیداکلوپراید و فلونیکامید را تا 20 درصد کاهش داد.
https://jpp.um.ac.ir/article_40293_51b4d1ddacf63a10788c2023acd48e21.pdf
2021-10-23
321
331
10.22067/jpp.2021.70680.1025
ادجوانت
شته جالیز
ایمیداکلوپراید
فلونیکامید
هادی
مصلی نژاد
hmosalla@gmail.com
1
مؤسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مریم
فروزان
maryam_fourouzan@yahoo.com
2
بخش تحقیقات گیاه پزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان آذربایجان غربی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران
AUTHOR
لاله
ابراهیمی
ebrahimi.laleh@gmail.com
3
مؤسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی تهران، ایران
AUTHOR
Abd-Allah A.A.A. 2011. Influence of some adjuvants on efficacy of certain insecticides against onion thrips, Thrips tabaci (LIND.) infesting onion and garlic plants. Journal of Plant Protection and Pathology 2: 169-178.
1
Abdelgaleil S.A., Abdel-Aziz N.F., Sammour E.A., El-Bakry A.M., and Kassem S.M. 2015. Use of tank-mix adjuvants to improve effectiveness and persistence of chlorpyrifos and cyhalothrin formulations. Journal of Agricultural Science and Technology 17(6): 1539-1549.
2
Acheampong S., and Stark J.D. 2004. Effects of the agricultural adjuvant Sylgard 309 and the insecticide pymetrozine on demographic parameters of the aphid parasitoid, Diaeretiella rapae. Biological Control 31(2): 133-137.
3
Ahmadi K., Ebadzadeh H., Hatami F., Hosseinpour R., and Abdshah H. Iran agricultural statistics of 2019. Ministry of Agricultural Jihad. 163 pp.
4
Aioub A.A., Omar A.E., and El-Sobki A.E.A. 2015. Filed evaluation of thiamethoxam insecticide and its mixtures with certain adjuvants in controlling leguminous aphid, Aphis craccivora (koch) and their residues in plants and soil. Zagazig Journal of Plant Protection Research 42(4): 835-841.
5
Barbosa P.R., Michaud J.P., Bain C.L., and Torres J.B. 2017. Toxicity of three aphicides to the generalist predators Chrysoperla carnea (Neuroptera: Chrysopidae) and Orius insidiosus (Hemiptera: Anthocoridae). Ecotoxicology 26(5): 589-599.
6
Betana M.D.M.A., Hussein and EL-Kadi A.M.A. 2004. Influence of some adjuvants on physico-chemical properties, effectiveness, and pesticides formulations. Journal of Agricultural Science, Mansoura 29(4): 2105-2116.
7
Chen H., Zhang Y., Zhang H., and Ding W. 2014. Synergistic effect of imidacloprid combined with synergistic agents (Beichuang, Jiexiaoli) on Myzus persicae. International Journal of Pest Management 60(3): 201-207.
8
Colomer I., Aguado P., Medina P., Heredia R.M., Fereres A., Belda J.E., and Viñuela E. 2011. Field trial measuring the compatibility of methoxyfenozide and flonicamid with Orius laevigatus Fieber and Amblyseius swirskii in a commercial pepper greenhouse. Pest Management Science 67(10): 1237-1244.
9
Eugene Brady U., Wayne Berisford C., Thomas Hall L., and Joseph Hamilton S. 1980. Efficacy and persistence of chorpyrifos, chorpyrifos-methyl, and lindane for preventive and remedial control of the southern pine beetle. Journal of Economic Entomology 73(5): 639-641.
10
Foy C.L. 1996. Adjuvants–current trends and technology. Pesticide formulation and adjuvant technology, Eds. C. L. Foy and D. W. Pritchard, CRC Press. pp. 323–352.
11
Gaskin R.E., Horgan D.B., and Manktelow D.W. 2010. Adjuvant effects on the retention and uptake of spirotetramat insecticide sprays on kiwifruit. New Zealand Plant Protection 63: 60-65.
12
Gatarayiha M.C., Laing M.D., and Miller R.M. 2010. Effects of adjuvant and conidial concentration on the efficacy of Beauveria bassiana for the control of the two spotted spider mite, Tetranychus urticae. Experimental and Applied Acarology 50(3): 217-29.
13
Gautam B.K., Little B.A., Taylor M.D., Jacobs J.L., Lovett W.E., Holland R.M., and Sial A.A. 2016. Effect of simulated rainfall on the effectiveness of insecticides against spotted wing drosophila in blueberries. Crop Protection 81: 122-128.
14
Green J.M., and Beestman G.B. 2007. Recently patented and commercialized formulation and adjuvant technology. Crop Protection 26(3): 320-327.
15
He L., Ding L., Zhang P., Li B., Mu W., and Liu F. 2021. Impact of the equilibrium relationship between deposition and wettability behavior to the high‐efficiency utilization of pesticides. Pest Management Science 77: 2485–2493.
16
Henderson CF., and Tilton EW. 1955. Tests with Acaricides against the brown wheat mite. Journal of Economic Entomology 48: 157–161.
17
Holloway P.J. 1998. Improving agrochemical performance: possible mechanisms for adjuvancy. Chemistry and technology of agrochemical formulations, Ed. Knowles D. A., Kluwer Academic Publisher, Dordrecht, The Netherlands. pp. 232-263.
18
Houbraken M., Senaeve D., Fevery D., and Spanoghe P. 2015. Influence of adjuvants on the dissipation of fenpropimorph, pyrimethanil, chlorpyrifos and lindane on the solid/gas interface. Chemosphere 138: 357-363.
19
Jeschke P., Nauen R., and Beck M.E. 2013. Nicotinic acetylcholine receptor agonists: a milestone for modern crop protection. Angewandte Chemie International Edition 52(36): 9464-9485.
20
Kierzek R., Wachowiak M., Krawczyk R., and Ratajkiewicz H. 2014. Effect of spray nozzle type and adjuvants on herbicide activity in maize. Problems of Agricultural Engineering Journal 2(84): 29-39. (In Polish with English abstract)
21
Kodandaram M.H., Kumar Y.B., Banerjee K., Hingmire S., Rai A.B., and Singh B. 2017. Field bioefficacy, phytotoxicity and residue dynamics of the insecticide flonicamid (50 WG) in okra (Abelmoschus esculenta (L) Moench). Crop Protection 94: 13-19.
22
Kumar V., Jindal V., Kataria S.K., and Pathania M. 2019. Activity of novel insecticides against different life stages of whitefly (Bemisia tabaci). Indian Journal of Agricultural Sciences 89(10): 1599-1603.
23
Kunjwal N., and Srivastava R.M. 2018. Insect pests of vegetables. Pests and their Management, Ed. Omkar (2018) Springer, Singapore. pp. 163-221.
24
Larson L.L. 1997. Effects of adjuvants on the activity of Tracer™ 480SC on cotton in the laboratory, 1996. Arthropod Management Tests 22: 415-416.
25
Liu T.X., and Stansly P.A. 2000. Insecticidal activity of surfactants and oils against silverleaf whitefly (Bemisia argentifolii) nymphs (Homoptera: Aleyrodidae) on collards and tomato. Pest Management Science 56(10): 861–866.
26
Mayer D.F., and Lunden J.D. 1994. Effects of the adjuvant Sylgard 309 on the hazard of selected insecticides to honey bees. Bee Science 3(3): 135-138.
27
McKenna C., Gaskin R., Horgan D., Dobson S., and Jia Y. 2013. Efficacy of a postharvest spirotetramat spray against armoured scale insects on kiwifruit vines. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science 41(3): 105-116.
28
Meng Y., Lan Y., Mei G., Guo Y., Song J., and Wang Z. 2018. Effect of aerial spray adjuvant applying on the efficiency of small unmanned aerial vehicle for wheat aphids control. International Journal of Agricultural and Biological Engineering 11(5): 46-53.
29
Morita M., Ueda T., Yoneda T., Koyanagi T., and Haga T. 2007. Flonicamid, a novel insecticide with a rapid inhibitory effect on aphid feeding. Pest Management Science 63(10): 969-973.
30
Morita M., Yoneda T., and Akiyoshi N. 2014. Research and development of a novel insecticide, flonicamid. Journal of Pesticide Science 39(3): 179-180.
31
Noorbaksh S. 2019. List of important pests, diseases and weeds of major agricultural products, pesticides and recommended methods to control them. PPO publication. 197 pp.
32
Pacanoski Z. 2015. Herbicides and adjuvants. Intech Open Science 125-147.
33
Palumbo J.C. 2009. Influence of adjuvants and Movento spray timing on aphid contamination in head lettuce. Arthropod Management Tests, ESA, Vol 34, E34.
34
Palumbo J.C. 2010. Efficacy of Movento and adjuvant combinations for pre-harvest control of lettuce aphid in romaine lettuce. Arthropod Management Tests, ESA, Vol 35, E33.
35
Palumbo J.C. 2011. Influence of adjuvants and spray timing of Movento on aphid contamination and crop injury in Baby Spinach. Plant Health Progress 12(1): 10.
36
Ratajkiewicz H., Kierze R., Raczkowski M., Kulas A.H., Łacka A., Wójtowicz A., and Wachowiak M. 2016. Effect of the spray volume adjustment model on the efficiency of fungicides and residues in processing tomato. Spanish Journal of Agricultural Research 14(3): 23-31.
37
Ratajkiewicz , Kierzek R., Raczkowski M., Kulas A.H., Łacka A., and Szulc T. 2018. The effect of coarse-droplet spraying with double flat fan air induction nozzle and spray volume adjustment model on the efficiency of fungicides and residues in processing tomato. Spanish Journal of Agricultural Research 16(1): 22-32.
38
Roditakis E., Fytrou N., Staurakaki M., Vontas J., and Tsagkarakou A. 2014. Activity of flonicamid on the sweet potato whitely Bemisia tabaci (Homoptera: Aleyrodidae) and its natural enemies. Pest Management Science 70(10): 1460-1467.
39
Sétamou M., Rodriguez D., Saldana R., Schwarzlose G., Palrang D., and Nelson S.D. 2010. Efficacy and uptake of soil-applied imidacloprid in the control of Asian citrus psyllid and a citrus leaf miner, two foliar-feeding citrus pests. Journal of Economic Entomology 103(5): 1711-1719.
40
Seyedebrahimi S.S., Talebi Jahromi K., Imani S., Hosseininaveh V., and Hesami S. 2016. Resistance to imidacloprid in different field populations of Aphis gossypii Glover (Hem.: Aphididae) in South of Iran. Journal of Entomological and Acarological Research 48: 6-10.
41
Srinivasan R., Hoy M.A., Singh R and Rogers M.E. 2008. Laboratory and field evaluations of Silwet L-77 and kinetic alone and in combination with imidacloprid and abamectin for the management of the Asian citrus psyllid, Diaphorina citri. Florida Entomologist 91(1): 87-100.
42
Tariq K., Ali R., Butt Z. A., Ali A., Naz G., Anwar Z., and Shah J.A. 2016. Comparative efficacy of different insecticides alone and along with adjuvant against cotton whitefly, Bemisia tabaci in Multan, Pakistan. American-Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Sciences 16: 1424-30.
43
Tomizawa M., and Casida E. 2005. Neonicotinoid insecticide toxicology: mechanisms of selective action. Annual Review of Pharmacology and Toxicology 45: 247-268.
44
Van Emden H.F., and Harrington R. 2017. Aphids as crop pests, second edition. CABI. 450 pp.
45
Wang L., Zhang S., Luo J.Y., Wang C.Y., Lv L.M., Zhu X.Z., and Cui J.J. 2016. Identification of Aphis gossypii Glover (Hemiptera: Aphididae) biotypes from different host plants in North China. PLoS One 11(1): e0146345.
46
Xu L.Y., Zhu H.P., Ozkan H.E., Bagley W.E., Derksen R.C., and Krause C.R. 2010. Adjuvant effects on evaporation time and wetted area of droplets on waxy leaves. American Society of Agricultural and Biological Engineers 53(1): 13-20.
47
Zand E., Aliverdi A., Hammami H., and Heidari A. 2013. Adjuvants, oils, surfactants and other additives for farm chemicals. 94 pp. (translation in Persian)
48
ORIGINAL_ARTICLE
اثر قارچ Beauveria bassiana و نانوسیلیکا روی شته مومی کلم Brevicoryne brassicae و زنبور پارازیتویید آن Diaeretiella rapae در شرایط آزمایشگاهی
شته مومی کلمBrevicoryne brassicae یکی از آفات مهم و خسارتزای چلیپاییان است که در بسیاری از نقاط ایران فعال است و در طول دورهی زمستان موجب ایجاد خسارت کمی و کیفی در زراعت گیاهان مذکور میشود. دشمنان طبیعی متعددی نظیر زنبور پارازیتوئید Diaeretiella rapae روی این شته فعالیت دارند. در سالهای اخیر عوامل سازگار با محیط زیست به دلیل اثرات جانبی کمتر در کنترل آفات بیشتر مورد توجه قرار گرفتهاند. این مطالعه برای تعیین تاثیر غلظتهای مختلف (103، 104، 105، 106 و ۱۰7 اسپور بر میلیلیتر) قارچ Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. و نانوسیلیکا در غلظتهای (125، 250، 500، 1000 و 2000 ppm) به صورت جداگانه و توأم روی زندهمانی جمعیت شته مومی کلم و زنبور پارازیتوئید آن انجام شد. آزمایشها در دمای2±25 درجه سلسیوس، رطوبت نسبی 5±65 و دوره نوری 8: 16ساعت (تاریکی: روشنایی) در آزمایشگاه انجام شد. مقادیر LC50 حاصل از تجزیه پروبیت در نتیجه تاثیر غلظتهای مختلف قارچ بعد از گذشت 7 روز و نانوسیلیکا طی 24، 48 و 72 ساعت پس از تیمار روی حشرات کامل شته مومی کلم به ترتیب برابر با ۱۰۵×2/2 اسپور بر میلیلیتر و 4356/14، 1164/42 و 487/19 ppm بود، همچنین در نتیجه تاثیر غلظتهای مختلف قارچ بعد از گذشت 4 روز و نانوسیلیکا طی 24، 48 و 72 ساعت پس از تیمار روی زنبور پارازیتوئید به ترتیب ۱۰6×1/2 اسپور بر میلیلیتر و 3639/79، 619/51 و 289/77 ppm بدست آمد. نتایج حاکی از حساسیت حشرات کامل شته مومی کلم به قارچ بود. کمترین زمان لازم برای مرگ 50 درصد افراد جمعیت شته مومی کلم توسط قارچ در غلظت 107 اسپور بر میلیلیتر 5/02 روز محاسبه شد. میزان تلفات نانوسیلیکا 72 ساعت پس از تیمار در بالاترین غلظت روی شته مومی کلم و زنبور پارازیتوئید به ترتیب90 و 99/66 درصد برآورد شد. همچنین اختلاط این دو عامل در 72 و 120 ساعت پس از تیمار حشرات کامل شته مومی کلم و زنبور پارازیتوئید تفاوت معنیداری با تیمار شاهد داشت. بر اساس نتایج این تحقیق قارچ B. bassiana و نانوسیلیکا میتوانند به عنوان عوامل مؤثر در برنامه مدیریت تلفیقی این شته مورد استفاده قرار گیرند.
https://jpp.um.ac.ir/article_40326_040610971562766a95181274f2e18be5.pdf
2021-10-23
333
345
10.22067/jpp.2021.70807.1030
پارازیتوئید
شته مومی کلم
قارچ بیمارگر حشرات
کنترل غیرشیمیایی
ساناز
امامی
emami.sanaz67@gmail.com
1
دانشجوی دکتری حشرهشناسی کشاورزی، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه
AUTHOR
شهرام
ارمیده
shahramaramideh@gmail.com
2
دانشیارگروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه
LEAD_AUTHOR
سجاد
پیرسا
s.pirsa@urmia.ac.ir
3
دانشیار دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه
AUTHOR
جی پی
میچاود
4
مرکز تحقیقات کشاورزی هی- دانشگاه کانزاس امریکا
AUTHOR
Akbari S., Safavi S.A., and Ghosta Y. 2014. Efficacy of Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. Against Cabbage aphid Brevicoryne brassicae (Hem.: Aphididae) in laboratory condition. Archives of Phytopathology and Plant Protection 47(12): 1454-1458.
1
Akbari S., Mirfakhraie S., Aramideh S., and Safaralizadeh M.H. 2020. Effect of fungal isolates and imidacloprid on cabbage aphid Brevicoryne brassicae and its parasitoid Diaeretiella rapae. Zemdirbyste-Agriculture 107(3): 255-262.
2
Al Antary T.M., Ateyyat M.A., and Abussamin B.M. 2010. Toxicity of certain insecticides to the parasitoid Diaeretiella rapae (McIntosh) (Hymenoptera: Aphidiidae) andits host, the cabbage aphid Brevicoryne Brassicae (Homoptera: Aphididae). Australian Journal of Basic and Applied Sciences 4(6): 994-1000.
3
Jarrahi A., and Safavi S.A. 2016. Effects of pupal treatment with Proteus® and Metarhizium anisopliae sensu lato on functional response of Habrobracon hebetor parasitising Helicoverpa armigera in an enclosed experiment system. Biocontrol Science and Technology 26(2): 206-216.
4
Jarrahi A., and Safavi S.A. 2016. Sublethal effects of Metarhizium anisopliae on life table parameters of Habrobracon hebetor parasitizing Helicoverpa armigera larvae at different time intervals. Biocontrol 61: 167-175.
5
Blackman R.A., and Eastop V.F. 1984. Aphis on the Worlds Crops. John Wiley and Sons, New York. 466 pp.
6
De A., Bose R., Kumar A., and Mozumdar S. 2014. Management of insect pests using nanotechnology: as modern approaches. In Targeted delivery of pesticides using biodegradable polymeric nanoparticles (pp. 29-33). Springer, New Delhi.
7
Debnath N., Das S., Seth D., Chandra R., Bhattacharya S.C., and Goswami A. 2011. Entomotoxic effect of silica nanoparticles against Sitophilus oryzae (L.). Journal of Pest Science 84(1): 99-105.
8
Desneux N., Rafalimanana H., and Kaiser L. 2004. Dose-response relationship in lethal and behavioral effects of different insecticides on the parasitic wasp Aphidiuservi. Chemosphere 54(5): 619-627.
9
Dhiman S.C. 2007. Population dynamics of Diaeretiella rapae (McIntosh): a parasitoid of mustard aphid, Lipaphis erysimi (Kalt). Journal of Applied Zoological Researches 18(2): 117-120.
10
Dorschner K.W., Feng M., and Baird C.R. 1991. Virulence of an aphid derived isolate of Beauveria bassiana (Fungi: Hyphomycetes) to the hop aphid, Phorodon humuli (Homoptera: Aphididae). Environmental Entomology 20(2): 690-693.
11
El-Bendary H.M., and El-Helaly A.A. 2013. First record nanotechnology in agricultural: Silica nano-particles a potential new insecticide for pest control. Applied Scientific Reports 4(3): 241-246.
12
Embaby E.E., and Lotfy D.E. 2016. Controlling cabbage aphid (Brevicoryne brassicae) using isolated mycoinsecticides. Journal of Plant Protection and Pathology 7(1): 73-77.
13
Enayati A., and Ebrahimnejad P. 2012. Nanopesticides: Production, application and biological considerations. Journal of Mazandaran University of Medical Sciences 21(86): 296-311. (In Persian with English abstract)
14
Ezz N. 2012. Entomopathogenic fungi associated with certain scale insects (Hemiptera: Coccoidea) in Egypt. Egyptian Academic Journal of Biological Sciences 5(3): 211-221.
15
Feng M., Johnson J.B., and Kish L.P. 1990. Virulence of Verticillium lecanii and an aphid derived isolate of Beauveria bassiana (Fungi: Hyphomycetes) for six species of cereal-infesting aphids (Homoptera: Aphididae). Environmental Entomology 19(3): 815-820.
16
Ghidan A.Y., Al-Antary T.M., and Awwad A.M. 2016. Green synthesis of copper oxide nanoparticles using Punica granatum peels extract: Effect on green peach aphid. Environmental Nanotechnology, Monitoring and Management 6: 95-98.
17
Gurulingappa P., McGee P.A., and Sword G. 2011. Endophytic Lecanicillium lecanii and Beauveria bassiana reduce the survival and fecundity of Aphis gossypii following contact with conidia and secondary metabolites. Crop Protection 30(3): 349-353.
18
Harper S. 2010. New approaches needed to gauge safety of nanotech-based pesticides, Researchers Urge. Physics and Chemistry 4(33): 2010-2012.
19
Helle W., and Overmeer W.P.J. 1985. Toxicological test methods. In: W. Helle & Sabelis, M.W. (eds.), Spider Mites: their Biology, Natural Enemies and Control. Elsevier. Amsterdam. Oxford. New York. Tokio. 1: 391-395.
20
Hersanti Susanto A., Virgiawan R., and Joni I.M. 2018. The effectiveness of Penicillium mixed with silica nanoparticles in controlling Myzus persicae. In: American Institute of Physics Conference Series. 1927(1).
21
Kassa A. 2003. Development and testing of mycoinsecticides based on submerged spores and aerial conidia of the entomopathogenic fungi Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae (Deuteromycotina: Hyphomycetes) for control of locusts, grasshoppers and storage pests. Doctoral Dissertation. Georg-August-University Gottingen. (Germany)
22
Laing M.D., Gatarayiha M.C., and Adandonon A. 2006. Silicon use for pest control in agriculture: a review. In: Proceedings of the South African Sugar Technologists’ Association 80: 278-286.
23
Meyling N.V., and Eilenberg J. 2007. Ecology of the entomopathogenic fungi Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae in temperate agroecosystems: potential for conservation biological control. Biological Control 43(2): 145-155.
24
Modarres-Najafabadi S.S., Akbari-Moghaddam H., and Gholamian G. 2005. Population fluctuations of cabbage aphid (Brevicoryne brassicae) and identification of its natural enemies in Sistan region. Iranian Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources 8(4): 175-185. (In Persian with English abstract)
25
Mweke A., Ulrichs C., Nana P., Akutse K.S., Fiaboe K.K.M., Maniania N.K., and Ekesi S. 2018. Evaluation of the Entomopathogenic Fungi Metarhizium anisopliae, Beauveria bassiana and Isaria sp. for the Management of Aphis craccivora (Hemiptera: Aphididdae). Journal of Economic Entomology 111(4): 1587-1594.
26
Oerke E.C., and Dehne H.W. 2004. Safe guarding production-losses in major crops and the role of crop protection. Crop Protection 23(4): 275-285.
27
Pavitra G., Sushila N., Sreenivas A.G., Ashok J., and Sharanagouda H. 2018. Biosynthesis of Green Silica Nanoparticles and Its Effect on Cotton Aphid, Aphis gossypii Glover and Mealybug, Phenacoccus solenopsis International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences 7(10): 1450-1460.
28
Qayyum A. 2021. Effects of host age on two closely related parasitoid species Diaeretiella rapae (McIntosh) and Aphidius colemani (Vireck) (Aphidiidae: Hymenoptera). Pakistan Journal of Zoology 33: 193-200.
29
Quesada-Moraga E.E.A.A., Maranhao E.A.A., Valverde-García P., and Santiago-Álvarez C. 2006. Selection of Beauveria bassiana isolates for control of the whiteflies Bemisia tabaci and Trialeurodes vaporariorum on the basis of their virulence, thermal requirements, and toxicogenic activity. Biological Control 36(3): 274-287.
30
Rannback L.M., Cotes B., Anderson P., Ramert B., and Meyling N.V. 2015. Mortality risk from entomopathogenic fungi affects oviposition behavior in the parasitoid wasp Trybliographa rapae. Journal of Invertebrate Pathology 124: 78-86.
31
Rehner S.A., and Buckley E. 2005. A Beauveria phylogeny inferred from nuclear ITS and EF1-a sequences: evidence for cryptic diversification and links to Cordyceps teleomorphs. Mycologia 97(1): 84-98.
32
Rouhani M., Samih M.A., and Kalantari S. 2013. Insecticidal effect of silica and silver nanoparticles on the cowpea seed beetle, Callosobruchus maculatus (Col.: Bruchidae). Journal of Entomological Research 4: 297-305.
33
Satar S., Kersting U., and Ulvsoy M.R. 2005. Temperature dependent life history traits of Brevicoryne brassicae (Hom.: Aphididae) on white cabbage. Turkish Journal of Agriculture 29(5): 341-346.
34
Serebrov V.V., Gerber O.N., Malyarchuk A.A., Martemyanov V.V., Alekseev A.A., and Glupov V.V. 2006. Effect of Entomopathogenic Fungi on detoxification enzyme activity in reater wax moth Galleria mellonella (Lepidoptera: Pyralidae) and role of detoxification enzymes in development of insect resistance to entomopathogenic fungi. Biological Bulletin 33(6): 581-586.
35
Singh R., and Singh G. 2015. Systematics, distribution and host range of Diaeretiella rapae (McIntosh) (Hymenoptera: Braconidae, Aphidiinae). International Journal of Research Studies in Biosciences 3(1): 1-36.
36
Taheri Sarhozaki M., Aramideh S., Akbarian J., and Pirsa S. 2020. The effect of zinc oxide nanoparticles, kaolin powder and Beauveria bassiana (Balsamo) Vuillemin in combination with neemarin against Bemisia tabaci and pupae of Eretmoceru smundus under field conditions. Plant Protection 43(3): 97-115. (In Persian with English abstract)
37
Wraight S.P., Carruthers R., Bradley C.A., Jaronski S.T., Lacey L.A., Wood P., and Galaini-Wraight S. 1998. Pathogenicity of the entomopathogenic fungi Paecilomyces spp. and Beauveria bassiana against the silver leaf whitefly, Bemisia argentifolii. Journal of Invertebrate Pathology 71(3): 217-226.
38
Zavareh M., and Emam Y. 2000. An identification guide for rapeseed (Brassica napus) developmental stages. Iranian Journal of Crop Sciences 2(1): 1-14. (In Persian with English abstract)
39
Ziaee M., and Hamzavi F. 2014. Application of nanoparticles in pest management programs. Nanotechnology 10: 18-23. (In Persian)
40
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر دما و شوری بر ویژگیهای جوانهزنی بذر دو اکوتیپ سسدرختی (Cuscuta monogyna Vahl.)
سسدرختی از مهمترین گونههای سس است که انگل درختان میوه و درختچههای زینتی است. به منظور مطالعه تأثیر شوری و دما بر ویژگیهای جوانهزنی دو اکوتیپ سس درختی آزمایشی به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در سال 1394-95 در دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد اجرا گردید. تیمارهای مورد بررسی شامل شوری در 8 سطح صفر (شاهد)، 0/1-، 0/2-، 0/4-، 0/6-، 0/8-، 1- و 1/2- مگاپاسکال و دما هم در 8 سطح 5، 10، 15، 20، 25، 30، 35 و 40 درجه سانتیگراد بودند. نتایج نشان داد که با افزایش شوری در هر سطح دمایی درصد و سرعت جوانهرنی در هر دو اکوتیپ کاهش یافت به طوریکه در پتانسیل 1/2- مگاپاسکال جوانهزنی هر دو اکوتیپ متوقف شد. در هر دو اکوتیپ در دماهای 5 ،10 و 40 درجه سانتیگراد در تمام سطوح مختلف شوری جوانهزنی متوقف شد. بیشترین درصد و سرعت جوانهزنی هر دو اکوتیپ در تیمار شوری شاهد و در دماهای 25 و 30 درجه به دست آمد. با توجه به نتایج به دست آمده جوانهزنی اکوتیپ بردسکن هم در دماهای بالا و هم در سطوح بالای شوری نسبت به اکوتیپ قوچان برتری داشت. با توجه به نتایج آزمایش، شوری موثر برای 50 درصد کاهش جوانهزنی در اکوتیپ قوچان در دماهای 15، 20، 25، 30 و 35 درجه سانتیگراد به ترتیب 0/79-، 0/86-، 0/87-، 0/77- و 0/68- مگاپاسکال و در اکوتیپ بردسکن 0/93-، 0/93-، 0/95-، 0/90- و 75 /0- مگاپاسکال برآورد شد. اطلاعات این مطالعه برای پیشبینی پتانسیل این گونه علفهرز برای انتشار به مناطق جدید و برای بهبود برنامههای مدیریتی این گونه علفهرز انگلی مفید خواهد بود.
https://jpp.um.ac.ir/article_39792_5b05d29837e5ee96eb999a591514c9e6.pdf
2021-10-23
347
356
10.22067/jpp.2021.31941.0
استقرار گیاهچه
اکولوژی علفهرز
تنش شوری
عوامل محیطی
گیاهان انگلی
اسماعیل
ابراهیمی
esmail.ebrahimi@mail.um.ac.ir
1
دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
ابراهیم
ایزدی دربندی
eizadi2000@yahoo.com
2
فردوسی
LEAD_AUTHOR
محمد حسن
راشد محصل
mhrmohassel@yahoo.com
3
دانشکده کشاورزی
AUTHOR
رضا
توکل افشاری
tavakolafshari@um.ac.ir
4
دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
Benvenuti S., Dinelli G., Bonetti A., and Catizone P. 2005. Germination ecology’ emergence and host detection in Cuscuta campestris. Weed Research 45: 270-278.
1
Bewley J.D., and Black M. 1982. Physiology and biochemistry of seeds in relation to germination. Vol. 2. Viability, dormancy and environmental control, Springer-Verlag. New York.
2
Chauhan B.S., Gill G., and Preston C. 2006. Factors affecting seed germination of annual sowthistle (Sonchus oleraceus) in southern Australia. Weed Science 54: 854-860.
3
Chauhan B.S., Gill G., and Preston C. 2006. Seed germination and seedling emergence of three horn bedstraw (Galium tricornutum). Weed Science 54: 867–872.
4
Chauhan B.S., and Johnson D.E. 2008. Seed germination and seedling emergence of giant sensitiveplant (Mimosa invisa). Weed Science 56: 244-248.
5
DiTommaso A. 2004. Germination behavior of common ragweed (Ambrosia artemisifolia) populations across a range of salinities. Weed Science 52: 1002-1009.
6
Ebrahimi E., Eslami S.V., and Zand E. 2011. Effect of environmental factors on germination and emergence of Eastern dodder (Cuscuta monogyna). Journal of Plant Protection 25(1): 83-91. (In Persian with English abstract)
7
Ebrahimi E., and Eslami S.V. 2012. Effect of different treatments on dormancy breaking and seed germination of Eastern dodder (Cuscuta monogyna Vahl) and African rocket (Malcolmia africana (R.BR.)). Journal of Plant Protection 26(2): 191-198. (In Persian with English abstract)
8
Ebrahimi E., and Eslami S.V. 2013. Seed dormancy breaking and Effect of some environmental factors on germination of cutleaf mignonette (Reseda lutea ) seed. Journal of Plant Protection 27(2): 177-184. (In Persian with English abstract)
9
Fathoulla C.N., and Mosleh M.S. 2008. Biological and anatomical study of different Cuscuta Kurdistan Conference Biological 11: 22-39.
10
Fenando E.P., Boero C., Gallardo M., and Gonzalez J. 2000. Effect of NaCl on germination, growth, and soluble suger content in Chenopodium quinonaseeds. Botanical Bulletin of Academia Sinica 41: 27- 34.
11
Fowler J.L., Hageman J.H., Moore K.J., Suzukida M., and Assadian H. 1988. Evalution of salinity tolerance of Russian-thistle, a potential forage crop. Agronomy Journal 80: 250-258.
12
Goldwasser Y., Miryamchik H., Rubin B., and Eizenberg H. 2016. Field dodder (Cuscuta campestris) - a New Model describing temperature dependent seed germination. Weed Science 64: 53–60.
13
Greenway H., and Munns R. 1980. Mechanisms of salt tolerance in nonhalophytes. Annal. Review. Plant. Physiology 31: 149-190.
14
Guma I.R., Padron-Mederos M.A., Santos-Guerra A., and Reyes-Betancort J.A. 2010. Effect of temperature and salinity on germination of Salsola vermiculata (Chenopodiaceae) from Canary Islands. Journal of Arid Environment 74: 708–711.
15
Holm L., Holm D.L.J., Pancho J.V., and Herberger J.P. 1997. World Weeds: Natural histories and distribution. John wiley and sons, Newyork. 1129 pp.
16
Karimi H. 2001. Weeds of Iran. Tehran, 419pp. (In Persian)
17
Keiffer C.W., and Ungar I.A. 1995. Germination responses of halophyte seeds exposed to prolonged hypersaline conditions. In: Khan M.A., Ungar I.A. (eds.) Biology of Salt Tolerant Plants. Karachi: Department of Botany, University of Karachi, 43-50.
18
Khaleghi E., and Ramin A.A. 2005. Study of the effects of salinity on growth and development of lawns (Lolium perenne , Festuca arundinacea and Cynodon dactylon). Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources 9: 57-68.
19
Khan M.A., and Ungar I.A. 1999. Seed germination and recovery of Triglochin maritima from salt stress under different thermo periods. Great Basin Naturalist 59: 144–150.
20
Khan M.A., and Ungar I.A. 1997. Effects of light, salinity, and thermoperiod on the seed germination of halophytes. Canadian J of Botany 75: 835-841.
21
Khan M.A., Gul B., and Weber D.J. 2001. Effect of salinity and temperature on the germination of Kochia scoparia. Wetlands Ecology and Management 9: 483-489.
22
Khan M.A., and Gulzar S. 2002. Germination responses Of Sporobolus ioclados: a salin desert grass. Journal Arid Environment 53: 387-364.
23
Khan M.A., Gul B., and Weber D.J. 2000. Germination responsesto Salicornia rubra to temperature and salinity. Journal Arid Environment 45: 207-214.
24
Kiyani E., Siahmarguee A., and Soltani A. 2015. The effects of temperature, Salinity and seeding depth on seed germination and emergence of morning glory (Ipomoea spp.). Journal of Plant Protection 29(3): 437-448. (In Persian with English abstract)
25
Koger C.H., Reddy K.N., and Poston D.H. 2004. Factors affecting seed germination, seedling emergence, and survival of texasweed (Caperonia palustris).Weed Science 52: 989-995.
26
Koskela T., Salonen V., and Mutikainen P. 2001. Interaction of a host plant and its holoparasitie effects of previous selection by the parasite. Journal of Biology 6: 14-91.
27
Krsmanovic M.S., Bozic D., Pavlovic M., Radivojevic L., and Vrbnicanin S. 2013. Temperature Effects on Cuscuta campestris Seed Germination. Journal of Pestic Phytomed 28(3): 187–193.
28
Izadi-Darbandi E., Mohammadian M., Yanegh A., and Zarghani H. 2012. The Effects of Temperature and Salinity on Germination and Seedling Growth Characteristics of Sesame (Sesamum indicum) Landraces. Journal of Iranian Field Crop Research 10: 335-345. (In Persian with English abstract)
29
Maguire J.D. 1962. Seed of germination–aid in selection and evaluation for seedling emergence and vigor. Crop Science 2: 176-177.
30
Mennan H., and Ngouajio M. 2006. Seasonal cycles in germination and seedling emergence of summer and winter population of catch weed bedstraw and wild mustard. Weed Science 54: 114-120.
31
Nazari S. 2014. Introducing Cuscuta monogyna as Oak Trees Parasite, its Biology, and Method to Fight in Lorestan province. Bull. Environment. Pharmacol. Life Science 3(2): 164-168.
32
Radosevich S.R., Holt J.S., and Ghersa C.M. 2007. Ecology of Weeds and Invasive Plants Relationship to Agriculture and Natural Resource Management. John Wiley& Sons, 472pp.
33
Smith S.E., and Dobrenz A.K. 1987. Seed age and salt tolerance at germination in alfalfa: Crop Science 27: 1053-1058.
34
Stevens O.A. 1932. The number and weight of seeds produced by weeds. American Journal of Botany 19: 784-794.
35
Tanji K.K., and Kielen N.C. 2002. Agricultural Drainge Water Management in Arid and Semi-Arid Areas. Fao Irrigation and Drainage Papper 61. Rome Italy. Food and Agriculture Organization of the United Nations, 202p.
36
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین گیاگان و پراکنش گیاهان هرز مزارع سویا با استفاده از سامانه اطلاعات جغرافیایی (مطالعه موردی: شهرستان گرگان)
به منظور بررسی گیاگان و نحوه پراکنش گیاهان هرز مزارع سویا، مطالعه حاضر در سال زراعی 97- 1396 در 48 مزرعه سویای سطح شهرستان گرگان انجام شد. در این مطالعه از روش W برای نمونهبرداری علفهای هرز و GPS برای ثبت اطلاعات مکانی مزارع استفاده شد که در نهایت اطلاعات بدست آمده در نرمافزار ArcGIS پردازش و نقشه پراکنش علفهای هرز استخراج گردید. در این مطالعه 21 نوع گونه علفهرز متعلق به 13 تیره گیاهی شناسایی شدند که تیره گندمیان با 4 گونه گیاهی بیشترین تعداد گونه گیاهی را به خود اختصاص داد. از نظر چرخه زندگی 14/28 درصد از گروه چندسالهها و مابقی یکساله بودند. در بررسی گیاهان هرز از لحاظ مسیر فتوسنتزی، 42/85 درصد C4 و حدود 57/15 درصد C3 بودند. گیاگان علفهای هرز مزارع مورد مطالعه شامل 23/80 درصد علفهای هرز باریکبرگ و 76/19 درصد علفهای هرز پهنبرگ بود. نتایج نشان داد که بیشترین فراوانیها به ترتیب مربوط به عروسک پشت پرده (Physalis divaricate L.)، قیاق و خربزه وحشی (Cucumis melo.var agrestis L.) بهترتیب با 91/66، 54/16 و 52/08 درصد بود. بررسی نقشه پراکنش علفهای هرز با فراونی 50 تا 100 درصد نشان داد که این گیاهان هرز در اکثر مزارع مورد بررسی، مشاهده شده و تقریباً از شرق تا غرب شهرستان پراکنده هستند. در این مطالعه مشخص شد که تنوع گیاهان هرز در مزارع سویا شهرستان گرگان بالاست که این امر مدیریت آنها را پیچیدهتر میکند و از طرفی حضور برخی گیاهان هرز مهاجم در برخی از مزارع، خطری بالقوه برای اراضی منطقه محسوب میشود.
https://jpp.um.ac.ir/article_40244_8e5d323c0d2766f428d2c32677474d1a.pdf
2021-10-23
357
372
10.22067/jpp.2021.32717.0
سامانه اطلاعات جغرافیایی
سویا
گیاهان هرز
نقشه پراکنش
سعید
موشانی
1
گروه زراعت، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
حسین
کاظمی
hossein_k_p@yahoo.com
2
گروه زراعت، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
LEAD_AUTHOR
افشین
سلطانی
afsoltani@yahoo.com
3
گروه زراعت، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
محمد اسماعیل
اسدی
4
بخش تحقیقات فنی و مهندسی کشاورزی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان گلستان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
AUTHOR
Ahmadi K., Gholizadeh H.A., Ebadzadeh H.R., Abdshah H., Hosseinpour R., Kazemian A., and Rafiei M. 2017. Agricultural Statistics of 2015-16. Ministry of Agriculture Deputy Director of Planning and Economics Information and Communications Center Tehran Iran. (In Persian)
1
Anderson R.L., Tanaka D.L., Black A.L., and Schweizer E.E. 1998. Weed community and species response to crop rotation, tillage and nitrogen fertility. Weed Technology 12: 531-536.
2
Asadi M.E., and Faraji A. 2009. Applied principles on oilseeds cultivation (Soybean, Cotton, Canola, Sunflower). Iranian Agricultural Science Publishing, Tehran. (In Persian)
3
Asghari J., and Mahmoudi A. 2012. Weeds farms and rangelands of Iran. Publishing by University of Mazandaran, Sari. (In Persian)
4
Bailey W.A., Askew S.D., Dorai-Raj S., and Wilcut J.W. 2003. Velvetleaf (Abutilon theophrasti) interference and seed production dynamics in cotton. Weed Science 51: 94-101.
5
Bensch C.N., Horak M.J., and Peterson D. 2003. Interference of redroot pigweed (Amaranthus retroflexus), Palmer amaranth ( palmeri), and common waterhemp (A. rudis) in soybean. Weed Science 51: 37-43.
6
Blossey B., and Notzold R. 1995. Evolution of increased competitive ability in invasive nonindigenous plants: A hypothesis. The Journal of Ecology 83: 887-889.
7
Buhler D.D., and Oplinger E.S. 1990. Influence of tillage systems on annual weed densities and control in solid-seeded soybean (Glycine max). Weed Science 38: 158-164.
8
Derksen D.A., Anderson R.L., Blackshawc R.E., and Maxwelld B. 2002. Weed Dynamics and Management Strategies for Cropping Systems in the Northern Great Plains. Agronomy Journal 94: 174-185.
9
Gorgani M., Siahmarguee A., Ghaderifar F., and Ghererkhloo J. 2017. Locating areas prone to infection with Ivy-leaved morning glory (Ipomoea hederaceae Jacq) in germination stage: a new entrant’s weed in arable lands of Golestan Province. Weed Research Journal 8: 35-51. (In Persian with English abstract)
10
Hall M.C., Swanton C.J., and Anderson G.W. 1992. The critical period of weed control in corn (Zea mays ). Weed Science 40: 441-447.
11
Holm L.G., Plucknett D.L., Pancho J.V., and Herberger J.P. 1991. The World’s Worst Weeds: Distribution and Biology. The University Press of Hawaii, Malabar,
12
Holm L.G., Plucknett D.L., Pancho J.V., and Herberger J. P. 1977. The World’s Worst Weeds. University Press of Hawaii, Honolulu, Hawaii.
13
Khakzad R., Alebrahim M.T., Tobeh A., Oviesi M., and Valiolahpor R. 2017. Prediction emergence of the most important weed species in soybean (Glycine max L) under different management operation. Plant Protection 31: 322-336. (In Persian)
14
Koocheki A., and Boroumand Rezazadeh Z. 2009. Soil Tillage in Agroecosystems. Ferdowsi University of Mashhad Press, Mashhad. (In Persian)
15
Korres N.E., Norsworthy J.K., and Mauromoustakos A. 2019. Effects of Palmer amaranth (Amaranthus palmeri) establishment time and distance from the crop row on biological and phenological characteristics of the weed: implications on soybean yield. Weed Science 67: 126–135.
16
Krausz F.R., Young B.G., Kapusta G., and Matthews J.L. 2001. Influence of weed competition and herbicides on glyphosate-resistant soybean (Glycine max). Weed Technology 15: 530–534.
17
Latifi , Siahmarguee A., Akram-Ghadri F., and Yones-badi M. 2009. Effects of tillage systems on weeds population dynamics in cotton (Gossypium hirsutum L.) followed by rapeseed (Brassica napus L.). Agricultural Research 7: 195-203. (In Persian with English abstract)
18
Longden P.C. 1989. Effects of increasing weed-beet density on sugar-beet. Yield and quality. Annals Applied Biology 114: 527–532.
19
Minbashi Moeini M., Baghestani M.A., Rahimian H., and Aleefard M. 2008. Weed mapping for irrigated wheat fields of Tehran province using Geographic Information System (GIS). Iranian Journal of Weed Science 4: 97-118. (In Persian with English abstract)
20
Minbashi Moeini M., Ebtali Y., Esfandiyari H., Adiham H., Brajasteh A., Pourazar R., Jahedi A., Jafarzadeh N., Jamali M.R., Hosseini S.M., Sarani M., Sarihi S., Sabahi N., Salahiardakani A., Tabatabaei R., Qasemi M.T., Lak M.R., Mousavi S.K., Maknali A., Saeidi naeini F., Mirvakili S.M., Nazer kakhki S.H., Narimani V., Nourozzadeh S., Vaesi M., and Younes-Abadi M. 2012. Preparation of weed distribution map of irrigated wheat fields using geographic information system (GIS). Agronomy Journal 95: 22-31. (In Persian)
21
Minbashi Moeini M., Rahimian H., Zand E., and Baghestan M.A. 2010. Invasion weeds, a forgotten challenge p. 30-38. The 3rd Iranian Weed Science Congress, February 2010. Babolsaer, Iran. (In Persian)
22
Mitchell K.M., and Pike D.R. 1996. Using a geographic information system (GIS) for herbicide management. Weed Technology 10: 856-864.
23
Momen-Yesaghi R., Siahmarguee A., Zeinali E., Ghaderi far F., and Kamkar B. 2017. The study of weed population and seed bank dynamic and soybean yield under different tillage methods. Agroecology 9: 575-592.
24
Nakamoto T., Yamagishi J., and Miura F. 2006. Effect of reduced tillage on weeds and soil organisms in winter wheat and summer maize cropping on Humic Andosols in Central Japan. Soil and Tillage Research 85: 94-106.
25
Nasiri Mahallati M., Koocheki A., Rezvani P., and Beheshti A. 2016. Agroecology. Ferdowsi University of Mashhad. (In Persian)
26
Nazari , Rahimian Mashadi H., Alizade H., and Mousavi S.K. 2011. Comparative phenology and damage of ground cherry (Physalis divaricate L.) on sugar beet crop. Weed Science 7: 1-13. (In Persian with English abstract)
27
Riar D.S., Norsworthy J.K., Johnson D.B., Scott R.C., and Bagavathiannan M. 2011. Glyphosate resistance in a johnsongrass (Sorghum halepense) biotype from Arkansas. Weed Science 59: 299–304.
28
Sardar M., Behdani M.A., Eslami S.V., and Mahmodi S. 2015. Effects of tillage systems and chemical control on weeds density and diversity in cotton (Gossypium hirsutum ) followed by wheat. Journal of Agroecology 7: 254-266. (In Persian)
29
Savari-Nejad A.R., Habibian L., and Younes-Abadi M. 2010. The introduction of new invasive weeds of wild melon, morning glory and two spurge species in soybean fields in Golestan province. The First National Conference on Advances in the Production of Oil plants, 26-27 May 2010. Bojnourd, Iran. (In Persian with English abstract)
30
Shrestha A., Knezevic S.Z., Roy R.C., Ball-Coelho B.R., and Swanton C.J. 2002. Effect of tillage, cover crop and crop rotation on the composition of weed flora in a sandy soil. Weed Research 42: 76-87.
31
Siahmarguee A., Kazemi H., and Kamkar B. 2016. The feasibility of some invasive weeds presence in Golestan Province. Research Report of Gorgan University of Agricultural Science and Natural Resources. 35p.
32
Siahmarguee A., Nazarian Z., and Ghaderifar F. 2016. Germination response study of tall morningglory (Ipomoea purpurea (L.) Roth.), an invasive weed, to temperature and water potential. Weed Research Journal 8: 59-71.
33
Singh M., Bhullar M.S., and Chauhan B.S. 2015. Seed bank dynamics and emergence pattern of weeds as affected by tillage systems in dry direct-seeded rice. Crop Protection 67: 168-177.
34
Sohrabi S., Ghanbari A., Rashed Mohasel M.H., Nassiri-Mahallati M., Gherekhloo J. and Bagherani, N. 2014. The assessment of seed production of wild melon (Cucumis melo ) and it distribution map in Golestan province. Weed Research Journal 6: 39-50. (In Persian)
35
Stanley C., Agustin E., Gimenez A.C., York R.B. and John W.W. 2001. Morningglory (Ipomoea spp.) and large crabgrass (Digitaria sanguinalis) control with glyphosate and 2, 4-DB mixtures in glyphosate-resistant soybean (Glycine max). Weed Technology 15: 56-61.
36
Thomas A.G. 1985. Weed survey system used in Saskatchewan for cereal and oilseed crops. Weed Science 33: 34-43.
37
Vyn T.J., Opoku G., and Swanton C.J. 1998. Residue management and minimum tillage systems for soybean following wheat. Agronomy Journal 90: 131-138.
38
Webster T.M., and Nichols R. 2012. Changes in the weed species in the major agronomic crops of the United States: 1994/1995 to 2008/2009. Weed Science 60:145–157
39
Yousefi A. R., Rastgoo M., Alizadeh H., and Baghestani M.A. 2014. Canopy architecture of soybean (Glycine max), Xanthium strumarium and Amaranthus retroflexus under different interference condition. Journal of Plant Protection 28: 302-312. (In Persian)
40
Yousefi A.R., Gonzalez-Andujar J.L., Alizadeh H., Baghestani M.A., Rahimian H., and Karimmojeni H. 2012. Interactions between reduced rate of imazethapyr and multiple weed species–soyabean interference in a semi-arid Weed Research 52: 242-251.
41
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی شاخصهای رقابتی و کارایی کشت مخلوط پنبه- چغندر علوفهای در شرایط تداخل علف هرز
بهمنظور ارزیابی تأثیر شاخصهای رقابتی و کارایی کشت مخلوط پنبه-چغندر علوفهای در شرایط تداخل علفهای هرز، آزمایشی بهصورت فاکتوریل خرد شده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در مزرعه تحقیقاتی دانشگاه فردوسی مشهد انجام شد. تیمارها شامل الگوی کشت مخلوط پنبه-چغندر علوفهای در دو سطح کشت مخلوط بین ردیفی و کشت مخلوط درون ردیفی و نسبت کشت مخلوط در پنج سطح شامل 75: 25، 50: 50، 25: 75 و کشت خالص دو گیاه پنبه و چغندر علوفهای بهعنوان عامل اصلی و تداخل علفهای هرز در دو سطح شامل وجین و عدم وجین تمام فصل علف هرز بهعنوان عامل فرعی بودند. نتایج نشان داد که اثر الگوی کشت مخلوط و برهمکنش الگوی کشت و نسبتهای کاشت مخلوط پنبه–چغندر علوفهای بر تراکم و وزن خشک کل علفهای هرز معنیدار نبود، اما اثر نسبتهای مختلف کشت مخلوط پنبه–چغندر علوفهای بر وزن خشک کل علفهای هرز معنیدار بود. در نسبت کشت 25: 75 از پنبه-چغندر علوفهای، وزن خشک علفهای هرز پایینتر از سایر نسبتهای اختلاط بود. در شرایط تداخل و یا عدم تداخل علفهای هرز، حداقل 50 درصد کاهش در عملکرد وش پنبه و 83 درصد کاهش در عملکرد ریشه چغندر علوفهای در شرایط کشت مخلوط، در مقایسه با کشت خالص هر یک از گیاهان مشاهده شد. دو شاخص نسبت برابری زمین و کاهش عملکرد واقعی نشاندهنده برتری کشت خالص پنبه نسبت به کشت مخلوط بود، ولی شاخص مجموع ارزش نسبی بیانکننده برتری کشت مخلوط پنبه-چغندر علوفهای نسبت به کشت خالص پنبه بود. بهطوریکه کاشت مخلوط پنبه-چغندر علوفهای با نسبت 75:25 موجب شد در شرایط حضور و عدم حضور علف هرز مجموع ارزش نسبی بهترتیب 5/2 و 6/8 برابر کشت خالص پنبه افزایش یابد. شاخصهای رقابتی شامل ضریب ازدحام نسبی، نسبت رقابت و شاخص غالبیت نشان دادند که چغندر علوفهای نسبت به پنبه از قدرت رقابتی بالاتری برخوردار بود. بهطور کلی نتایج این آزمایش نشان داد که کشت مخلوط پنبه-چغندر علوفهای بهصورت جانشینی، فقط از نظر یکی از شاخصهای ارزیابی کشت مخلوط (مجموع ارزش نسبی) مناسب بود و درمجموع قابل توصیه نیست.
https://jpp.um.ac.ir/article_40025_063e7a5b279918908cb734fe74189283.pdf
2021-10-23
373
387
10.22067/jpp.2021.32834.0
سریهای جانشینی
عملکرد وش
مجموع ارزش نسبی
مهدی
راستگو
m.rastgoo@um.ac.ir
1
گروه اگروتکنولوژی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
قربانعلی
اسدی
asadi@um.ac.ir
2
گروه اگروتکنولوژی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
عبدالله
درپور سرخ سرایی
a_dorpoor@yahoo.com
3
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
سلمان
رحیمی
s.rahimi@live.com
4
گروه اگروتکنولوژی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
Ahmadi K., Ebadzadeh H.R., Abdeshah H., Kazemian A., and Rafiei M. 2018. Agricultural Statistics; 2016-17 growing season (Vol.1). Iranian Ministry of Agriculture. 116 Pp. (In Persian)
1
Akram Ghaderi F., Sirani S., Aghajari A.A.Gh., Sohrabi B., and Younesabadi M. 2006. Determination of the critical period of weed control in cotton (Gossypium hirsutum) in Gorgan. Iranian Journal of Agricultural Science 37: 167-175. (In Persian with English abstract)
2
Banik P., Midya A., Sarkar B.K., and Ghose S.S. 2006. Wheat and chickpea intercropping systems in an additive series experiment: advantages and weed smothering. European Journal of Agronomy 24: 325-332.
3
Barati Mahmoodi H., Jami Alahmadi M., Rashed Mohassel M.H., Mahmoodi S., and Shikhzadeh N. 2012. The Effect of integrated weed management (chemical and mechanical) on density and dry weight of weed and introduction of new herbicide (envoke) in cotton (Gossypium hirsutum) field in Birjand region. Iranian Journal of Field Crops Research 9: 176-181. (In Persian with English abstract)
4
Buchanan G.A., and Burns E.R. 1970. Influence of weed competition on cotton. Weed Science 18: 149-154.
5
Choubforoush Khoei B., Amini R., Dabbagh Mohammadi Nasab A., and Raei Y. 2020. Effect of soybean, moldavian balm and proso millet intercropping on growth characteristics and yield of sugar beet (Beta vulgaris L.). Journal of Agricultural Science 30: 41-58. (In Persian with English abstract)
6
Dhima K.V., Lithourgidis A.S., Vasilakoglou I.B., and Dordas C.A. 2007. Competition indices of common vetch and cereal intercrops in two seeding ratio. Field Crops Research 100: 249-256.
7
Doğan M.N., Jabran K., and Unay A. 2014. Integrated Weed Management in Cotton. Recent advances in weed management. Springer. 197-222 Pp.
8
Fathollahzadeh Dizaji R., and Mirshekari B. 2014. Additive intercropping of marigold (Calendula officinalis) and mungbean (Vigna radiata): a strategy for yield improvement and weeds control. Research in Field Crop Journal 1: 56-68. (In Persian with English abstract)
9
Food and Agriculture Organization (FAO). 2019. FAO Statistical. Food and Agriculture Organization of the United Nations. Available at http://www.fao.org/faostat/en/#data.
10
Frison E.A., Cherfas J., and Hodgkin T. 2011. Agricultural biodiversity is essential for a sustainable improvement in food and nutrition security. Sustainability 3: 238–253.
11
Ghosh P.K. Growth, yield, competition and economics of groundnut/cereal fodder intercropping systems in the semi-arid tropics of India. Field Crop Research 88: 227-237.
12
Hauggaard-Nielsen H., Jørnsgaard B., Kinane J., and Jensen E.S. 2008. Grain legume-cereal intercropping: the practical application of diversity, competition and facilitation in arable and organic cropping systems. Renew. Agricultural Food Systems 23: 3–12.
13
Jamshidi K., Mazaheri D., Majnoun Hosseini N., Rahimian Mashhadi H., and Peyghambari A. 2011. Investigation of corn/cowpea intercropping effect on suppressing the weeds. Iranian Journal of Field Crop Science 42: 233-241. (In Persian with English abstract)
14
Jayakumar M., and Surendran U. 2017. Intercropping and balanced nutrient management for sustainable cotton production. Journal of Plant Nutrition 40: 632-644.
15
Kandhro M.N., Tunio S., Rajpar I., and Chachar Q. 2014. Allelopathic impact of sorghum and sunflower intercropping on weed management and yield enhancement in cotton. Sarhad Journal of Agricultural Science 30: 311–318.
16
Khazaie M. 2015. The study of maize and Sugar beet intercropping. Journal of Crops Improvement 16: 987-997. (In Persian with English abstract).
17
Koochaki A., Nasiri Mahalati M., Moradi R., and Alizadeh Y. 2015. Effect of different nitrogen levels on yield and nitrogen use efficiency in corn-cotton intercropping. Iranian Journal of Field Crops Research 13: 1-13. (In Persian with English abstract)
18
Liebman M., and Dyck E. 1993. Crop rotation and intercropping strategies for weed management. Ecological Applications 3: 92–122.
19
Littell R.C., Stroup W.W., Milliken G.A., Wolfinger R.D., and Schabenberger O. 2006. SAS for mixed models. SAS Institute.
20
Mansouri L., Jamshidi K., Rastgoo M., Saba J., and Mansouri H. 2013. The effect of additive maize-bean intercropping on yield, yield components and weeds control in zanjan climate conditions. Iranian Journal of Field Crops Research 11: 483-492. (In Persian with English abstract)
21
Mardan poor F., Arian nia N., and Lorzadeh Sh. 2017 .Effect of intercropping of maize and bean on growth weeds control and yield plant in Gotvand area. Journal of Plant Production Sciences 7: 32-40. (In Persian with English abstract)
22
Mead R., and Wiley R.W. 1980. The concept of a "Land Equivalent Ratio" and advantage in yields from intercropping. Experimental Agriculture 16: 217-228.
23
Mehni J., Mahdavi B., Azari A., Afkar S., and Hashemi S. 2020. Evaluation of yield and productivity indices of black cumin and fenugreek intercropping under weedy and weed-free conditions. Iranian Journal of Field Crop Science 51: 73-87. (In Persian with English abstract)
24
Mohler C.L., and Liebman M. 1987. Weed productivity and composition in sole crops and intercrops of barley and field pea. Journal of Applied Ecology 24: 685-699.
25
Moradi R., Koocheki A., Nasiri Mahallati M. 2017.Evaluation of economical yield and radiation use efficiency of maize and cotton in sole and intercropping systems as affected by different levels of Nitrogen. Journal of Crop Production and Processing 7:47-59. (In Persian with English abstract)
26
Pannacci E., Lattanzi B., and Tei F. 2017. Non-chemical weed management strategies in minor crops: A review. Crop Protection 96: 44-58.
27
Rajab M.N., Salem A.K., and Abdel-Galil A.M. 2014. Increasing fodder beet productivity by intercropping with some field crops. Journal of Plant Production 5: 821-836.
28
Richardson R.J., Wilson H.P., and Hines T.E. 2007. Preemergence herbicides followed by Trifluxysulfuron postemergence in cotton. Weed Technology 21: 1-6.
29
Saeed M., Shahid M.R.M., Jabbar A., Ullah E., and Khan MB. 1999. Agro-economic measurement of different cotton based inter-relay cropping system in two geometrical patterns. International Journal of Agriculture and Biology 4: 234–237.
30
Salimi H., Bazoubandi M., and Fereidoonpour M. 2010. Investigating different methods of integrated weed management in cotton (Gossypium hirsutum). Journal of Crop Production 3: 187-197. (In Persian with English abstract).
31
Shetty S.V.R., and Rao A.N. 1981. Weed management studies in sorghum/pigeonpea and pearl millet/groundnut intercrop systems-some observations. Pp 238-248 in International Crops Research Institute for the Semi-Arid Tropics (ICRISAT). Proceedings of the International Work- shop on Intercropping, 10-13 January 1979, Hyderabad, India. ICRISAT, Patencheru, India.
32
Singh S. 2014. Sustainable weed management in cotton. Haryana Journal of Agronomy 30: 1-14.
33
Vandermeer J.H. 1992. The Ecology of Intercropping. Cambridge University Press.
34
Weerarathne L.V.Y., Marambe B., and Chauhan B.S. 2016. Intercropping as an effective component of integrated weed management in tropical root and tuber crops: A review. Crop Protection 95: 89-100.
35
Xia J.Y., Wang J., Cui J.J., Leffelaar P.A., Rabbinge R., and van der Werf W. 2018. Development of a stage-structured process-based predator–prey model to analyse biological control of cotton aphid, Aphis gossypii, by the seven spot ladybeetle, Coccinella septempunctata, in cotton. Ecological Complexity 33: 11-30.
36
Yazdani S., Shahbazi H., and Kavoosi Kelashami M. 2011. Assessment of indirect production function and budget constraint in Khorasan provinces' cotton production. Iranian Journal of Agricultural Economics and Development Research 41: 425-433. (In Persian with English abstract).
37
Zand E., Baghestani M.A., Nezamabadi N., Shimi P., and Mousavi S.K. 2017. A Guide to Chemical Control of Weeds in Iran. Jahad e Daneshgahi Mashhad Press. 224 Pp. (In Persian)
38
Zhang L.Z., Van der Werf W., Zhang S.P., Li B., and Spiertz J.H.J. 2007. Growth, yield and quality of wheat and cotton in relay strip intercropping systems. Field Crops Research 103: 178-188.
39
ORIGINAL_ARTICLE
اثر رقابت اندامهای هوایی و زیر زمینی علفهرز خردل وحشی (Sinapis arvensis) بر رشد و عملکرد ارقام گندم (Triticum aestivum)
این آزمایش به منظور بررسی اثر رقابت اندامهای هوایی و زیر زمینی علفهرز خردل وحشی بر رشد و عملکرد ارقام گندم، بصورت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در دانشکده کشاورزی دانشگاه آزاد واحد شوشتر در سال 1395 اجرا شد. رقابت ریشه، اندامهای هوایی و رقابت کامل (رقابت توام ریشه و اندامهای هوایی) و شاهد (گیاه زراعی بدون علفهرز) و سه رقم گندم چمران، کریم و وریناک به عنوان عوامل آزمایشی مورد بررسی قرار گرفتند. اثر رقابت خردل وحشی بر عملکرد دانه و برخی صفات مورفولوژیکی گندم ارزیابی شد. نتایج نشان داد، در رقابت توام اندامهای هوایی و ریشه نسبت به هر کدام از رقابتهای اندام هوایی و ریشه به صورت جداگانه، کاهش عملکرد دانه گندم و اکثر صفات مورد ارزیابی بیشتر بود، بطوریکه بیشترین درصد کاهش ارتفاع بوته (22/10 درصد)، طول ریشه (40/60 درصد)، تعداد پنجه بارور در بوته (53/33 درصد)، طول سنبله (37/67 درصد)، تعداد دانه در سنبله (41/71 درصد)، تعداد سنبله در واحد سطح (21/39 درصد)، وزن هزار دانه (27/87 درصد)، عملکرد دانه (69/79 درصد) و عملکرد بیولوژیکی (42/48 درصد) در شرایط رقابت کامل (رقابت توام ریشه و اندامهای هوایی) علفهرز خردل وحشی با رقم وریناک مشاهده شد. بطور کلی رقم چمران به دلیل داشتن عملکرد اقتصادی بیشتر در شرایط عاری از علفهرز و شرایط تداخل میتواند به عنوان یک رقم رقیب در عملیات زراعی و ویژگیهای آن در برنامههای به نژادی مورد استفاده قرار گیرد که البته این موضوع نیازمند مطالعات تکمیلی میباشد.
https://jpp.um.ac.ir/article_40062_1ce16bba9c426cdc7c68c8671c18b3d4.pdf
2021-10-23
389
398
10.22067/jpp.2021.69400.1019
تداخل
قدرت رقابتی ارقام
مدیریت غیرشیمیایی
ویژگیهای رشدی
عادل
مدحج
adelmodhej2006@yahoo.com
1
دانشگاه آزاد اسلامی، واحد شوشتر
LEAD_AUTHOR
Ahmadvand G. 2002. Canopy structure and light and nitrogen absorption and use efficiency as affected by wheat and wild oat inter and intra- specific competition. Ph.D thesis. Ferdowsi university of Mashhad. Iran. (In Persian)
1
Armin M., and Asghripour M. 2011. Effect of plant density on wild oat competition with competitive and noncompetitive wheat cultivars. Agriculture Science 10: 1554-1561.
2
Baghestani M.A., and Zand E. 2004. Study of competitive ability of winter wheat (Triticum aestivum) genotypes against weeds with attention to Goldbachia laevigata DC and Avena ludoviciana Dur in Karaj. Plant Pest and Disease 72: 1-21. (In Persian with English abstract)
3
Baghestani M.A., Zand E., Rahimian Mashhadi H., and Soufizadeh S. 2005. Morphological and physiological characteristics which enhance competitiveness of winter wheat (Triticum aestivum) against Goldbachia laevigata. Weed Science 1: 111-126.
4
Baghestani Meybodi M.A., Akbari A.G., Atri A.R., and Mokhtari M. 2003. Competitive effects of rye (Secale cereale ) on growth indices, yield and yield components of wheat. Pajouhesh and Sazandegi 61: 2-11. (In Persian with English abstract)
5
Beckie H.J., Johnson E., Blackshaw R.E., and Gan Y. 2008. Weed suppression by canola and mustard cultivars. Weed Technology 22: 182–185.
6
Cousens R.D., Barnett A.G., and Barry G.C. 2003. Dynamics of competition between wheat and oats. I. effects of changing the timing of phonological events. Agronomy 95: 1295-1304.
7
Cowan P., Weaver S.E., and Swanton C.J. 1998. Interference between pigweed (Amaranthus ), barnyardgrass (Echinochloa crusgalli), and soybean (Glycine max). Weed Science 46: 533-539.
8
Dianat M., Rahimian Mashhadi H., Baghestani M.A., Alizadeh H.M., and Zand E. 2007. Evaluation of Iranian cultivars of bread Wheat (Triticum aestivum ) for competitive ability against rye (Secale cereale). Agriculture Science 23: 267-280. (In Persian with English abstract)
9
Ebrahimpour Noorabady F., Aynehband A., Nour Mohammadi Gh., Moosavinia H., and Mesgarbashi M. 2006. Study of some wheat ecophysiologic indices as influenced by wild oat interaction. Pajouhesh and Sazandegi 73: 117-125. (In Persian with English abstract)
10
Eslami S.V., Gill G.S., Bellotti B., and McDonald G. 2006. Wild radish (Raphanus raphanistrum) interference in wheat. Weed Science 54: 749-756.
11
FinchA., Guillaume G., French S.A., Colaço R.D.D.R., Davies J.M., and Swarbreck S.M. 2017. Wheat root length and not branching is altered in the presence of neighbors, including blackgrass. PLoS ONE 12(5): e0178176.
12
Holman J.D., Bussan A., Maxwell B., Miller P., and Mickelson J. 2004. Spring wheat, canola, and sunflower response to Persian darnel (Lolium persicum) interference. Weed Technology 18: 509-520.
13
Huel D.G., and Hucl P. 1996. Genotypic variation for competitive ability in spring wheat. Plant Breeding 115: 325-329.
14
Kennet J., and Kirkland K.J. 1993. Spring wheat (Triticum aestivum) growth and yield as influenced by duration of wild oat (Avena fatua) competition. Weed Technology 7: 890-893.
15
Knezevic S.Z., Evans S.P., Blankenship E.E., Van Acker R.C., and Lindquist J.L. 2002. Critical period for weed control: The Concept and Data Analysis. Weed Science 50: 773–786.
16
Kropff M.J., and Lotz L.A.P. 1992. Systems approaches to quantify crop-weed interactions and their application in weed management. Agricultural System 40: 265-282.
17
Lemerle D., Gill G.S., Murphy C.E., Walker S.R., Cousens R.D., Mokhtari S., Peltzer S.J., Coleman R., and Luckett D.J. 2001. Genetic improvement and agronomy for enhanced wheat competitiveness with weed. Australian Journal Agricultural Research 52: 527-548.
18
Mennan H., and Zandstra B.H. 2005. Effect of wheat (Triticum aestivum) cultivars and seeding rate on yield loss from Galium aparine (cleavers). Short communication. Crop Protection 24: 1061-1067.
19
Mohajeri F., and Ghadiri H. 2003. Competition in different densities of wild Mustard (Brassica kaber) with winter wheat (Triticum aestivum) under different levels of nitrogen fertilizer application. Iranian Journal of Agriculture 34(3): 527-537. (In Persian with English abstract)
20
Naderi R., and Ghadiri H. 2011. Competition of wild mustard (Sinapis arvense L.) densities with rapeseed (Brassica napus L.) under different levels of nitrogen fertilizer. Agriculture Science 13: 45-51.
21
Navabpour S., and Kazemi G. 2013. Stady the relation between grain yield and related traits in wheat by path analysis. Crop Production 6(1): 191-203. (In Persian with English abstract)
22
Olsen J., Kristensen L., and Weiner J. 2005. Effects of density and spatial pattern, of winter wheat on suppression of different weed species. Weed Science 690-694.
23
Paynter B.H., and Hills A.L. 2009. Barley and rigid ryegrass (Lolium rigidum) competition is influenced by crop cultivar and density. Weed Technology 23: 40-48.
24
Pester T.A., Burnside O.C., and Orf J.H. 1999. Increasing crop competitiveness to weed through crop breeding. Journal of Crop Production 2: 59-76.
25
Rahimian Mashhadi H., Baghestani M.A., Zand E., and Dianat M. 2004. Assess the competitiveness of the eight wheat cultivars with rye in Karaj and Varmyn. 8th National Iranian Crop Science congress, Rasht. Guilan University. (In Persian)
26
Rezvani H., Asghari J., Ehteshami M.R., and Kamkar B. 2013. Study reaction yield wheat cultivars in competition with the weed in Gorgan. Journal of Crop Production 6(4): 178-214. (In Persian with English abstract)
27
Roberts J.R., Peeper T.F., and Solie J.B. 2001. Wheat (Triticum aestivum) row spacing, seeding rate and cultivar affect interference from rye (Secale cereale). Weed Technology 15: 19-25.
28
Saadatian B., Ahmadvand G., and Soleymani F. 2011. Study of canopy structure and growth characters role of two wheat cultivars in competition, on economic threshold and yield of rye and wild mustard. Iranian Journal Field Crops Research 9(3): 494-504. (In Persian with English abstract)
29
Saadatian B., Ahmadvand G., and Soleymani F. 2012. Effect of rye (Secale cereale) and wild mustard (Sinapis arvensis) competition on yield and yield components of two winter wheat (Triticum aestivum ) cultivars. Journal Plant Protection 26(1): 8-19.
30
Safahani Langrodi A., Kamkar B., Zand E., and Bagherani Meybodi M.A. 2008. Evaluation of ability tolerance competition of canola cultivars to wild mustard (Sinapis arvensis) using some empirical models in Golestan province. Journal Agriculture Science Natural Resource 15: (5):101-111.
31
Safahani Langrodi A., Kamkar B., Zand E., Bagherani Meybodi M.A., and Bagheri M. 2007. Reaction of grain yield and its components of canola (Brassica napus ) cultivars in competition with wild mustard (Sinapis arvensis L.) in Gorgan. Crop Science 9: 356-370. (In Persian with English abstract).
32
Seefeldt S.S., Ogg A.G., and Yuesheng H. 1999. Near-isogenic lines for Triticum aestivum height and crop competitiveness. Weed Science 47: 316-320.
33
Siyahpoosh A., Zand E., Bakhshande A., and Gharineh M.H. 2012. Competitive of different densitiesof two wheat cultivars with wild mustard weed species (Sinapis arvensis) in different densities. Weed Science 20: 748-752.
34
Soleymani F., Ahmadvand G., and Saadatian B. 2012. The effect of nitrogen levels and wild mustard densities on yield and economic threshold of canola. Electronic Journal Crop Production 4(4): 85-102. (In Persian with English abstract)
35
Van Acker R.C., and Oree R. 2004. Wild oat (Avena fatua) and wild mustard (Brassica kaber) wheller interference in canola (Brassica napus). Weed Science 39: 210-221.
36
Wall D.A., Friesen G.H., and Bhati T.K. 2006. Wild mustard interference in traditional and semi-leafless field wheats. Canadian Plant Science 71: 473-480.
37
Williams W.D., and Muhammad K. 1997. Canada thistle (Cirsium arvense) effects on yield components of spring wheat (Triticum aestivum). Weed Science 44: 114-121.
38
Yenish J.P., and Young F.L. 2004. Winter wheat competition against jointed goatgrass (Aegilops cylindrica) as influenced by wheat plant height, seeding rate, and seed size. Weed Science 52: 996-1001.
39
Zand E., and Beckie H.J. 2002. Competitive ability of hybrid and open pollinated canola (Brassica napus ) with wild oat (Avena fatua). Canadian Plant Science 82: 473-480.
40