ORIGINAL_ARTICLE
همسانهسازی، تنوع ژنتیکی ژن رمزکننده پروتئین پوششی و تعیین زیرگروههای نژادی جدایههای ویروس موزائیک خیار در مزارع طالبی شهرستان ورامین
منطقهی ورامین واقع در جنوب تهران یکی از مراکز مهم تولید خربزه و طالبی است. اخیرا تغییر در جمعیت ویروسهای کدوئیان گزارش شده است. از اینرو، به منظور بررسی تنوع ژنتیکی ویروس موزائیک خیار و بررسی تغییر احتمالی جمعیت این ویروس در مزارع طالبی مناطق ورامین، پیشوا و پاکدشت، 132 نمونهی برگی طی سالهای 1393 و 1394 با علایم مشکوک به آلودگی ویروسی شامل موزاییک، پیسک و بدشکلی برگ و نیز کوتولگی گیاه جمعآوری شد. آلودگی 59 نمونه از کل نمونهها (69/44 درصد) به CMV توسط آزمون الایزا تعیین شد که نشان دهنده میزان آلودگی بالای گیاهان طالبی نمونهبرداری شده از مزارع مورد مطالعه است. از نمونههای الایزا مثبت، آرآنای کل استخراج و ژن پروتئین پوششی به همراه بخشیهایی از اطراف آن طی RT-PCR تکثیر شد. برای تعیین زیرگروههای جدایههای جمعآوری شده، محصولات RT-PCR با استفاده از آنزیم MspI (HpaII) برش داده شدند که در اثر آن قطعاتی به اندازههای 335 و 537 جفت باز تولید شدند. بر این اساس جدایههای جمعآوری شده در این مطالعه در گروه I قرار گرفتند. ژن CP در چهار جدایه که بر اساس فاصله مکانی انتخاب شده بودند به حامل pTG19-T متصل و در میزبانEscherichia coli همسانهسازی شد. نتایج تعیین توالی، وجود جایگاه برشی آنزیم MspI را در موقعیت یاد شده تأیید کرد. چهار جدایهی تعیین توالی شده در این پژوهش، 99-100 درصد در سطح اسیدهای نوکلئیک و همچنین 100 درصد در سطح آمینواسیدی با یکدیگر تشابه داشتند. میزان تشابه این جدایهها با جدایههای از قبل گزارش شده از ایران به ترتیب 93-100 و 98-100 درصد در سطح نوکلئوتیدی و آمینواسیدی دیده شد. نتایج فیلوژنی در سطح نوکلئوتیدی و آمینواسیدی نیز نتایج RT-PCR-RFLP را تأیید نمود و مشخص شد که جدایههای CMV در مزارع طالبی ورامین متعلق به زیرگروه AI و جدایههایی با شدت بیماریزایی شدید هستند.
https://jpp.um.ac.ir/article_37505_066c7981b1849edde9c90111f2b390c7.pdf
2019-08-23
123
133
10.22067/jpp.v33i2.72268
طالبی
فیلوژنی
ورامین
ویروس موزائیک خیار
RT-PCR-RFLP
مجید
جعفری
majafari59@yahoo.com
1
مجتمع آموزش عالی سراوان
LEAD_AUTHOR
سمیه
قلی زاده روشنق
gholizadeh.somayeh92@gmail.com
2
پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران
AUTHOR
شاهین
نوری نژاد زرقانی
sh_nourinejhad@ut.ac.ir
3
پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران
AUTHOR
1- Arafati N., Farzadfar S., and Pourrahim R. 2013. Characterization of coat protein gene of Cucumber mosaic virus isolates in Iran. Iranian Journal of Biotechnology 11: 109-114.
1
2- Berniak H., Malinowski T., and Kaminska M. 2009. Comparison of elisa and rt-pcr assays for detection and identification of Cucumber mosaic virus (CMV) isolates infecting horticultural crops in Poland. Journal of Fruit and Ornamental Plant Research 17: 5-20.
2
3- Clark M.F., and Adams A. 1977. Characteristics of the microplate method of Enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of plant viruses. Journal of General Virology 34: 475-483.
3
4- Deyong Z., Willingmann P., Heinze C., Adam G., Pfunder M., Frey B., and Frey J.E. 2005. Differentiation of Cucumber mosaic virus isolates by hybridization to oligonucleotides in a microarray format. Journal of Virological Methods 123: 101-108.
4
5- Eyvazi A., Dizadji A., Rastgou M., and Habibi M.K. 2015. Bioassay and phylogeny of five Iranian isolates of Cucumber mosaic virus from different hosts based on CP gene sequence. Plant Protection Science 51: 200-207.
5
6- Farzadfar S., Pourrahim R., and Arafati N. 2013. Molecular identification of Cucumber mosaic virus subgroup IB isolates in south Iran. Journal of Plant Pathology 95: 423-428.
6
7- Gallitelli D. 2000. The ecology of Cucumber mosaic virus and sustainable agriculture. Virus Research 71: 9-21.
7
8- Haas A., and Richter J., and Rabenstein F. 1989. Monoclonal Antibodies for Detection and Serotyping of Cucumber mosaic virus. Journal of Phytopathology 127: 129-136.
8
9- Hosseinzadeh H., Nasrollanejad S., and Khateri H. 2011. First report of Cucumber mosaic virus subgroups I and II on soybean, pea, and eggplant in Iran. Acta Virologica 56: 145-148.
9
10- King A.M.Q., Adams M.J., Carstens E.B., and Lefkowitz E.J. 2012. Virus Taxonomy, Classification and nomenclature of viruses, Ninth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. Elsevier Academic Press. 1327 p.
10
11- Liu J.C.K., Ng S., and Perry R.L. 2000. Cucumber mosaic virus Mutants with Altered Physical Properties and Defective in Aphid Vector Transmission. Virology 276: 395-403.
11
12- Mohammadi K., Hajizadeh M., and Koolivand D. 2016. Detection and identification of four vegetable fruit viruses in west and northwest of Iran. Iranian Journal of Plant Pathology 52: 279-288.
12
13- Nematollahi S., and Rakhshandehroo F. 2012. Phylogenetic analysis of new isolates of Cucumber mosaic virus from Iran on the basis of different genomic regions. The Plant Pathology Journal 28: 381-389.
13
14- Nitta N., Masuta C., Kuwata S., and Takanami Y. 1988. Comparative studies on the nucleotide sequence of Cucumber mosaic virus RNA3 between Y strain and Q strain. Annals of the Phytopathological Society of Japan 54: 516-522.
14
15- Palukaitis P., and Zaitlin M. 1997. Replicase-mediated resistance to plant virus disease. Advances in Virus Research 48: 349-378.
15
16- Palukaitis P., Roosinck M.J., Dietzgen R.G., and Francki R.I.B. 1992. Cucumber mosaic virus. Advances in Virus Research 41: 281-348.
16
17- Pares R.D., Gillings M.R., and Gunn L.V. 1998. Differentiation of Australian cucumber mosaic cucumovirus isolates: comparison of dsRNA type, polymerase chain reaction-restriction enzyme analysis, DNA hybridisation and serogrouping. Australasian Plant Pathology 27: 36-39.
17
18- Quiot J.B. 1981. Ecology of Cucumber mosaic virus in the Rhone Valley of France. III Conference on Epidemiology and Control of Virus Diseases of Vegetables, p. 9-22. Italy, Bari, 29 Agu. 1979.
18
19- Rasoulpour R., and Izadpanah K. 2008. Properties and taxonomic position of hoary cress strain of Cucumber mosaic virus. Journal of Plant Pathology 90: 97-102.
19
20- Rizos H., Gunn L.V., Pares R.D., and Gillings M.R. 1992. Differentiation of cucumber mosaic virus isolates using the polymerase chain reaction. Journal of General Virology 73: 2099-2103.
20
21- Roossinck M.J., Zhang L., and Hellwald K.H. 1999. Rearrangements in the 5′ nontranslated region and phylogenetic analyses of Cucumber mosaic virus RNA 3 indicate radial evolution of three subgroups. Journal of Virology 73: 6752-6758.
21
22- Sambrook J., and Russell D.W. 2001. Molecular cloning: a laboratory manual. 3rd ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York.
22
23- Schneider W.L., and Roossinck M.R. 2001. Genetic diversity in RNA virus quasispecies is controlled by host-virus interactions. Journal of Virology 75: 6566-6571.
23
24- Singh Z., Jones R.A., and Jones M.G.K. 1995. Identification Cucumber mosaic virus subgroup I isolates from banana plants affected by infectious chlorosis disease using RT-PCR. Plant Disease 79: 713-716.
24
25- Sokhandan Bashir N., Kalhor M.R., and Zarghani S.N. 2006. Detection, differentiation and phylogenetic analysis of Cucumber mosaic virus isolates from cucurbits in the northwest region of Iran. Virus Genes 32: 277-288.
25
26- Wilson A.D., and Halliwell R.S. 1985. Characterization and field studies of a Cucumber mosaic virus isolate from Spinach in the winter garden area of Texas. Plant Disease 69:751-754.
26
27- Yordanova A., Hristova D., Stoimenova E. 2002. Serological and electrophoretic characterization of the necrotic strain CMV-NB of Cucumber mosaic virus. Journal of Culture Collections 3: 84-91.
27
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین توالی کامل RNA2 یک جدایه از ویروس موزاییک کدو (SqMV) از استان خراسان جنوبی در ایران
ویروس موزاییک کدو (Squash mosaic virus, SqMV)، تقریبا در تمامی نقاط کشت این محصول در دنیا گسترده بوده، و یکی از عوامل مهم خسارت و کاهش بازارپسندی این محصول میباشد. به منظور شناسایی و بررسی برخی از خصوصیات مولکولی ویروس موزاییک کدو، در سال 1394 از مزارع عمده کشت خربزه در استان خراسان جنوبی، تعداد 62 نمونه برگی دارای علائم جمعآوری شد. نمونههای جمعآوری شده توسط آزمون مولکولی RT-PCRمورد بررسی قرار گرفتند .در این آزمون با استفاده از آغازگرهای اختصاصی طراحی شده مربوط به پروتئین پوششی، قطعهای به طول bp1900 جهت شناسایی نمونههای آلوده تکثیر گردید. سپس از بین نمونههای آلوده، یک نمونه (شهرستان طبس) انتخاب، و با استفاده از آغازگرهای اختصاصی طراحی شده، RNA2 ویروس به طول 3271 جفت باز، طور کامل تعیین توالی گردید. RNA2 ایزووله طبس دارای یک ORF بوده که با AUG121 آغاز و در UAG3148 پایان یافته و پلی پروتئینی به طول 1009 آمینواسید را کد میکند. مقایسه توالی پلی پروتئین RNA2 بدست آمده با جدایههای موجود در بانک ژن نشان داد، که جدایه تعیین توالی شده دارای بیشترین درصد تشابه در سطح نوکلئوتیدی (45/88 درصد) و آمینو اسیدی (59/90 درصد)، با جدایهای از استرالیا (شماره دسترسی MF166754) بوده و کمترین درصد تشابه آن در سطح نوکلئوتیدی (82/86 درصد) با جدایهای از ژاپن (شماره دسترسی NC_003800) و در سطح آمینواسیدی (36/86 درصد) با جدایه اسپانیا (شماره دسترسی KP223324)، بود. بررسیهای فیلوژنتیکی جدایههای SqMV را در دو گروه مجزا قرار داد که جدایه خراسان جنوبی- طبس درکنار جدایههایی از چین (EU 421060)، آریزونا (AF059532) و اسپانیا در یک زیرگروه قرار گرفت که نشاندهنده قرابت این جدایهها با یکدیگر است.
https://jpp.um.ac.ir/article_37508_29324ff65d2a4706ed22b319938943b8.pdf
2019-08-23
135
141
10.22067/jpp.v33i1.73339
ویروس موزاییک کدو
RNA2
خربزه
ایران
محدثه
گرامی نوقابی
mohadese.gerami@yahoo.com
1
فردوسی مشهد
AUTHOR
محسن
مهرور
mehrvar@um.ac.ir
2
فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
محمد
زکی عقل
zakiaghl@um.ac.ir
3
فردوسی مشهد
AUTHOR
1- Avgelis A.D., and Katis N. 1989. Occurrence of Squash mosaic virus in melons in Greece. Plant Pathology 38: 111-113.
1
2- Bananej K., and Vahdat A. 2008. Identification, distribution and incidence of viruses in field grown cucurbit crops of Iran. Phytopathologia Mediterranean 47: 247-257.
2
3- Campbell R.N. 1971. Squash mosaic virus. Description of plant viruses. Applied Biology. No. 43, 4p.
3
4- Chinnadurai C., Ramkissoon A., Rajendran R., Tony S.T., Ramsubhag A., and Jayaraj J. 2015. First Report of Zucchini yellow mosaic virus and Squash mosaic virus Infecting Cucurbits in Trinidad. Plant Disease 100: 866-870.
4
5- Freitag J.H. 1956. Beetle transmission, host rang and properties of Squash mosaic virus. Phytopathology 46: 73-81.
5
6- Goldbach R.W., and Wellink J. 1996. Comoviruses: molecular biology and replication. In The Plant Viruses. Polyhedral Virions and Bipartite RNA Genomes 5: 35-76.
6
7- Haudenshield J.S., and Palukaitis P. 1998. Diversity among isolates of squash mosaic virus. Journal of General Virology 79: 2331–2341.
7
8- Hu J., Zhou T., Liu L., Peng B., Li H., Fan Z., and Gu Q. 2009. The genomic sequences of a Chinese isolate of Squash mosaic virus with novel 5' conserved ends. Virus Genes 38: 475–477.
8
9- Hull R. 2002. Mathews Plant Virology. Academic press New York.
9
10- Kempo W.G., Wieda J., and Patrick Z.A. 1972. Squash mosaic virus in muskmelon and distributed commercially in Ontario. Canadian Plant Disease 52: 58-59.
10
11- Kendrick J.B. 1934. Cucurbit mosaic transmitted by muskmelon seed. Phytopathology 24: 820-823.
11
12- Li R., Gao A.S., Berendsen B.S., Fei C.Z., and Linga B.K. 2015. Complete Genome Sequence of a Novel Genotype of Squash Mosaic Virus Infecting Squash in Spain. Genome Announcements. V3. 13-14.
12
13- Nasr Abadi A., Mehrvar M., and Zaki Aghl M. 2018. Identification and Molecular Analysis of Squash mosaic virus in Khorasan Razavi, Southern Khorasan and Mazandaran Provinces. Journal of Plant Protection 31: 576-580.
13
14- Nelson M.R., and Knuhtsen H.K. 1973. Squash mosaic virus variability: review and serological comparisons of six biotypes. Phytopathology 63: 920–926.
14
15- Privvidenti R., Gonsalves D., and Humaydan H.S. 1984. Occurrence of Zucchini yellow mosaic virus in cucurbits from Connecticut, New York, Florida, and California. Plant Disease 68: 443-446.
15
16- Samiee A. 2004. Identification, distribution and some characteristics of viruses that infect greenhouse Iran. Master thesis. Master thesis. 158pp.
16
17- Shamshiri N. 2008. Biology and genome characterization features Squash mosaic virus isolates in Iran. Master thesis. Shahid Bahonar university of Kerman.
17
18- Sobhani A.R., and Hmidi H. 2015.Melon breeding and production management. Tak press.
18
19- Yoshida K., Goto T., Nemoto M., and Tsuchizaki T. 1980. Squash mosaic virus isolated from melon (Cucumis melo L.) in Hokkaido. Annual Phytopathology Society Japan, 46: 349–356.
19
20- Zimmern D. 1975. The 5' end group of tobacco mosaic virus RNA is m7 G5'ppp5'Gp. Nucleic Acids Research 2: 1189–1201.
20
ORIGINAL_ARTICLE
گزارش شش گونه از نماتدهای dorylaimid از جنگلهای ارسباران
به منظور شناسایی فون نماتدهای dorylaimid جنگلهای ارسباران، نمونهبرداری از خاک فراریشه درختان و نیز نقاط دیگر انجام و در مجموع، تعداد 65 نمونه پس از کنار زدن سه تا پنج سانتیمتر خاک رویی، جمعآوری شدند. پس از استخراج، کشتن، تثبیت و تهیه اسلایدهای میکروسکوپی از نماتدها با روشهای مرسوم، بر اساس صفات ریختشناختی و ریختسنجی و با استفاده از منابع معتبر، شناسایی نماتدها تا سطح گونه صورت پذیرفت. در نتیجه، گونههای Crassolabium saccatum، C. himalum، C. ettersbargense ، Syncheilaxonchium nairi، Paravulvus hartingii، Eudorylaimus spaulli،Epidorylaimus lugdunensis ، Nygolaimus brachyuris،Paraxonchium carmenae ،Metaxonchium persicum ،Aulolaimus oxycephalus ، A. nanocephalus،Discolaimus mariae ،Longidorella soadi ، Sectonema demani، Xiphinema macroacanthum، X. vuittenezi،X. uthahense،Longidorus africanus ،Tylencholaimus constricus ،T. tahatikus ،Xiphinemella globilabiata و Enchodelus macrodorus شناسایی شدند که در این مقاله شش گونه Discolaimus mariae،Crassolabium saccatum ، C. himalum، C. ettersbargense، Xiphinema uthahense وTylencholaimus tahatikus که گزارش جدید برای مجموع نماتدهای ایران میباشند، توصیف میشوند.
https://jpp.um.ac.ir/article_37510_20bf7b7ef3d61dd1154b531b1ed2cb37.pdf
2019-08-23
143
157
10.22067/jpp.v33i2.76301
ریخت سنجی
ریخت شناسی
فون
نماتدهای آزادزی
حبیبه
جباری
jabbari@maragheh.ac.ir
1
دانشگاه مراغه
LEAD_AUTHOR
غلامرضا
نیکنام
ghniknam@yahoo.com
2
دانشگاه تبریز
AUTHOR
امین
فلاحی
falahiamin43@yahoo.com
3
دانشگاه تبریز
AUTHOR
ابراهیم
زاهدی اصل
e.zahedi59@gmail.com
4
دانشگاه تبریز
AUTHOR
مصطفی
نیکدل
mnikdel1374@gmail.com
5
دانشگاه تبریز
AUTHOR
1- Ahad S., and Ahmad W. 2016. Description of two new and six known species of the genus Tylencholaimus de Man, 1876 (Nematoda: Dorylaimida) with a diagnostic compendium and key to species. Zootaxa 4107 (4): 451-490.
1
2- Chen D.Y., Ni H.F., Yen J.H., Cheng Y.H., and Tsay T.T. 2005. Differentiation of the Xiphinema americanum-group nematodes X. brevicollum, X. incognitum, X. diffusum and X. oxycaudatum in Taiwan by morphometrics and nuclear ribosomal DNA sequences. Nematology 7(5): 713-725.
2
3- Ciobanu V., Abolafia J., and Pena-Santiago R. 2010. Two remarkable new species of the genus Crassolabium Yeates, 1967 from Vietnam (Nematoda: Dorylaimida: Qudsianematidae). Journal of Natural History 44(33-34): 2049-2064.
3
4- De Grisse A.T. 1969. Redescription ou modification de quelqutes techniques utilissisedans L; etude des Nematode phytoparasutaires. Meded, Rijksfaculteti der LandbouVeten, Gent 34: 351- 369.
4
5- Jabbari H., Niknam Gh., Vinciguerra MT., Moslehi Sh., Abolafia J., and Peña-Santiago R. 2012. Description of Crassolabium persicum sp. n. (Nematoda, Dorylaimida, Qudsianematidae), an interesting species from Iran. ZooKeys 203: 55–63.
5
6- Jenkins W.R. 1964. A rapid centrifugal-flotation technique for separating nematodes from soil. Plant Disease Reporter 48: 692.
6
7- Lamberti F., and Bleve-Zacheo T. 1979. Studies on Xiphinema americanum senso lato with description of fifteen new species (Nematoda, Longidoridae). Nematologia Mediterranea 7: 51-106.
7
8- Lamberti F., and Carone M. 1991. A dichothomus key for the identification of the species of Xiphinema (Dorylaimida) whithin the X. americanum group. Nematologia Mediterranea 19: 341-348.
8
9- Lamberti F., Molinari S., Moens M., and Brown D.J.F. 2002. The Xiphinema americanum-group. 11. Morphometric relationships. Russian Journal of Nematology 10(2): 99 -112.
9
10- Loof P.A.A., Luc M., and Coomans A. 1993. The Xiphinema americanum group (Nematoda: Dorylaimida). 1. Comments upon the key to species published by Lmnberti and Carone (1992). Fundamental and Applied Nematology 16(4): 355-358.
10
11- Moslehi Sh., Niknam Gh., and Ashrafi M. 2011. First report of three known species of the genus Aulolaimus (Nematoda: Aulolaimidae) from Iran. Nematologia Mediterranea 39(1): 53-57.
11
12- Moslehi Sh., Niknam Gh., and Ashrafi M. 2012. One new and four known species of the genus Eudorylaimus Andrassy, 1959 (Dorylaimida: Qudsianematidae) from Iran. International Journal of Nematology 22(1): 30-40.
12
13- Nikdel M., Niknam Gh., and Ye W. 2011. Steinernema arasbaranense sp. n. (Nematoda: Steinernematidae), a new entomopathogenic nematode from Arasbaran, Iran. Nematologia Mediterranea 39: 17-28.
13
14- Niknam Gh., Jabbari H., Moslehi Sh., Vinciguerra M.T., and Nikdel M. 2010a. Some free living nematodes from Arasbaran forests. p. 657. In: Abbasi M. and Ali abadi F. (ed.) Proceeding of 19th Iranian plant protection congress. 31 Jul-3 AUG., 2010. Vol II. Iranian research institute of plant protection. Tehran. (In Persian)
14
15- Niknam Gh., Ashrafi M., and Naderiyan R. 2010b. Three nygolaimid species from soils of northwest Iran. P. 612. In: Abbasi M. and Ali abadi F. (ed.) Proceeding of 19th Iranian plant protection congress. 31 Jul-3 AUG., 2010. Vol II. Iranian research institute of plant protection. Tehran. (In Persian)
15
16- Pena-Santiago R., and Coomans A. 1994. Revision of the genus Tylencholaimus de Man, 1876. Didelphic species. Nematologica 40: 32–68.
16
17- Pena-Santiago R., and Coomans A. 1996. Revision of the genus Tylencholaimus de Man, 1876. General discussion and key to the species. Nematologica 40: 440–454.
17
18- Pena-Santiago R., Torres B., Liebanas G., and Abolafia J. 2002. Nematodes of the order Dorylaimida from Andalucia Oriental, Spain: Discolaimus Cobb, 1913. 1. Description of two new species. Nematology 4(3): 361-369.
18
19- Pena-Santiago R., and Ciobanu M. 2008. The genus Crassolabium Yeates, 1967 (Dorylaimida: Qudsianematidae): Diagnosis, list and compendium of species, and key to their identification. Russian Journal of Nematology 16(2): 77- 95.
19
20- Thorne G. 1974. Nematodes of the Northern Great Plains. Part II. Dorylaimoidea in part (Nemata: Adenophorea). Technical Bulletin of Agricultural Experiment Station, South Dakota State University, 41: 1-120.
20
21- Tsalolikhin S.Ya. 2017. Crassolabium alekseevi sp. n. (Nematoda, Dorylaimida, Qudsianematidae) from Taiwan Island. Zoologicheskii Zhurnal 96(6): 740-744.
21
22- Wu W., Yan L., Xu Ch., Wang K., Jin Sh., and Xie H. 2016. A new species of the genus Discolaimus Cobb, 1913 (Nematoda: Dorylaimida: Qudsianematidae) from Qinghai, China. Zootaxa 4088(1): 129–138.
22
23- Zahedi E., Niknam Gh., Decraemer W., and Karegar A. 2009. Trichodorus arasbaranensis n. sp. (Nematoda: Trichodoridae) from a natural forest in Arasbaran, north-west Iran. Nematology 11(2): 243-252.
23
ORIGINAL_ARTICLE
اثر غلظتهای کشنده و زیرکشنده سه حشرهکش روی برخی فرآسنجههای رشدی زنبور پارازیتوئید Habrobracon hebetor به روش تماسی و میزبان مسموم
تعیین اثرات غلظتهای کشنده و زیرکشندهی حشرهکشها بر فرآسنجههای رشدی دشمنان طبیعی زنده مانده یکی از نیازهای تحقیقاتی در برنامههای مدیریت آفات میباشد. هرچه این اثرات کمتر باشد حشرهکش انتخابیتر عمل کرده و در برنامه کنترل آفات از جایگاه بهتری برخوردار میباشد. زنبور پارازیتوئید Habrobracon hebetor Say بهعنوان یک دشمن طبیعی مؤثر نیز از این قاعده مستثنی نیست. در این تحقیق اثر کشنده و زیرکشندهی حشرهکشهای رایج آبامکتین® و پروتئوس® و سیرینول® به دو روش تماسی و میزبان مسموم بر خصوصیات رشدی این زنبور بررسی گردید. آزمایشهای زیستسنجی در شرایط آزمایشگاهی (دمای 2±25 درجه سلسیوس، رطوبت نسبی 5±60 درصد و روشنایی 8D:16L) در پنج تکرار و هر تکرار با 30 زنبور در روش تماسی و هر تکرار با 15 لارو میزبان آزمایشگاهی (شبپره آرد، Ephestia kuhniella Zeller) در روش میزبان مسموم انجام شد. غلظت کشنده این تیمارها در روش تماسی روی این زنبور پارازیتوئید به ترتیب 38/1، 037/0 و 621/6 میلیلیتر بر لیتر و روی لارو میزبان آزمایشگاهی برای این زنبور به ترتیب 490/0، 155/2 و 138/0 میلیلیتر بر لیتر بدست آمد. نتایج نشان داد که بیشترین کل طول دورهی رشدی این زنبور پس از تیمار شاهد (79/0± 95/25 روز) مربوط به تیمار سیرینول در روش میزبان مسموم با غلظت زیرکشنده (86/0 ± 42/23 روز) بود. بیشترین طول عمر حشرات ماده زنبور مربوط به تیمار سیرینول در کاربرد غلظت زیرکشنده به صورت تماسی (17/0± 31/30 روز) و بیشترین طول عمر حشرات نر مربوط به کاربرد تیمار سیرینول در غلظت زیرکشنده در روش میزبان مسموم (15/0± 02/22 روز) بود. بیشترین میزان تخم گذاشتهشده در تیمار سیرینول در غلظت زیرکشنده به صورت کاربرد تماسی (48/1 ± 01/177 عدد) مشاهده شد. نتایج نشان داد که تیمار سیرینول به صورت کاربرد تماسی کمترین اثر سوء را روی زنبور پارازیتوئید داشت.
https://jpp.um.ac.ir/article_37512_9fae09ebc42d0303c22408fc750a9356.pdf
2019-08-23
159
170
10.22067/jpp.v33i2.77262
آبامکتین
پروتئوس
سیرینول
زیستسنجی
کنترل بیولوژیک
مژگان
رضایی
mojganrezaei_20@yahoo.com
1
واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی
AUTHOR
شهرام
حسامی
shahram.hesami@gmail.com
2
آزاد اسلامی واحد شیراز
LEAD_AUTHOR
مهدی
غیبی
mehgheibi@yahoo.com
3
واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی
AUTHOR
هادی
زهدی
hadi_zohdi@yahoo.com
4
مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان کرمان
AUTHOR
1- Abedi Z., Saber M., Gharekhani G.H., Mehrvar A., and Kamita S.G. 2014. Lethal and sub lethal effect of Azadirachtin and Cypermethtin on Habrobracon hebetor (Hymemoptera: Braconidae). Journal of Economic Entomology 107: 635-645.
1
2- Amir-Maafi M., and Chi H. 2006. Demography of Habrobracon hebetor (Hymemoptera: Braconidae) on Two Pyralid Hosts (Lepidoptera: Pyralidae). Annals of Entomological Society of America 99 (1): 84-90.
2
3- Campbell P.J., Brown K.C., Harrison E.G., Bakker F., Barrett K.L., Candolfi M.R., Canez V., Dinter A., Lewis G., Mead-Briggs M., Miles M., Neumann P., Romijan K., Schmuck R., Shires S., Ufer A., and Waltersdorfer A. 2000. A Hazard Quotient approach for assessing the risk to non-target arthropods form plant protection product under 91/414/EEC: hazard quotient trigger value proposal and validation. Journal of Pest Science 73: 117-124.
3
4- Chi H. 1988. Life table analysis incorporating both sexes and variable development rates among individuals. Environmental Entomology 17: 26-34.
4
5- Chi H. 2009. Probit-MSChart: a computer program for probit analysis. http://140.120.197.173/Ecology/.
5
6- Chi H., and Liu H. 1985. Two new method for the study of insect population ecology. Bulletin of the Institute of Zoology, Academia Sinica 24: 225-240.
6
7- Desneux N., Pam-Delegue M.H., and Kaiser L. 2004. Effects of sub lethal and lethal doses of lambda-cyhalothrin on oviposition experience and host searching behavior of a parasitic wasp, Aphidius ervi (Hym., Aphidiidae). Pest Management Science 60: 381-89.
7
8- Huang Y., Ho S.H., Lee H.C., and Yap Y.L. 2002. Insecticidal properties of eugenol, isoeugenol and methyleugenol and their effects on nutrition of Sitophilus zeamais Motsch (Col., Culculionidae) and Tribolium castaneum Herbst (Col., Tenebrionidae). Journal of Stored Products Research 38: 403-412.
8
9- Faal–Mohammadali H., Seraj A.A., and Talebi-Jahromi K. 2014. Effects of traditional insecticides on H. hebetor (Hymenoptera: Braconidae): bioassay and life-table assay. Archives of Phytology and Plant Protection 47(9): 1089-1102.
9
10- Fooladi M., Golmohammadi G.H., and Ghajarieh H.R. 2015. Lethal and sub lethal effects of insecticides Azadirachtin, Flonicamid, Thiacloprid and Thiocyclam on parasitoid wasp Habrobracon hebetor. Biocontrol in Plant Protection 3: 9-18.
10
11- Glean E.S., and Timothy J.K. 2000. Lethal and sub lethal effects of early season insecticides on insidious flower bug (Orius insidious): an important predator in cotton. Proceeding of the 2000 cotton Research Meeting.
11
12- Golmohammadi G.H., Hejazi M., Iranipour S.H., and Mohammadi S.A. 2009. Lethal and Sub lethal effects of endosulfan, imidacloprid and indoxacarb on first instar larvae of Chrysoperla carnea (Neu.: Chrysopidae) under laboratory conditions. Journal of Entomological Society of Iran 28(2): 37-47.
12
13- Grosch D.S. 1975. Reproductive performance of Bracon hebetor after Sub lethal Dose of carbaryl. Journal of Economic Entomology 68: 659-662.
13
14- Mahdavi V., Saber M., Rafiee-Dastjerdi H., and Kamita S.G. 2015. Lethal and demographic impact of Chlorpyrifos and Spinosad on the Ectoparasitoid Habrobracon hebetor (Say) (Hymenoptera: Braconidae). Neotropical Entomology 44: 626-633.
14
15- Morseli H. 2008. Study of sub lethal effect of Indoxacarb and Thiodicarb on life table parameters on Habrobracon hebetor (Say) (Hymenoptera: Braconidae). M.Sc. Thesis of Entomology, Tehran University, Iran, 87 pp. (In Persian)
15
16- Rafiee-Dastjerdi H. 2007. Study of lethal effect of thiodicarb, profenofos, spinosad and hexaflumuron on cotton boll worm and sub lethal effect of these on Habrobracon hebetor Say. Ph.D Thesis. Agricultural faculty. Tabriz University. (In Persian)
16
17- Robertson J.L., and Preisler H.K. 1991. Pesticide Bioassay with Arthropods. CRC Press, Boca Raton, FL, USA, 224 pp.
17
18- Saber M., and Abedi Z. 2013. Effects of methoxyfenozide and pyridalyl on the larval ectoparasitoid Habrobracon hebetor. Journal of Pest Science 86: 685–693.
18
19- Sarmadi S. 2008. Study of sensitive of pupal stage of H. hebetor (Hymemoptera: Braconidae) to the recommended field concentration of Imidacloprid, Indoxacarb and Deltamethrin. 18th congress of plant pathology. 24-27 August, Hamedan. Iran. 274 pp. (In Persian)
19
20- Sarmadi S., Nouri-Ganbalani G., Rafiee-Dastjerdi H., Hassanpour M., and Pour-Abed R.F. 2010. The effects of Imidacloprid, Indoxacarb and Deltamethrin on some biological and demographic parameters of H. hebetor (Hymemoptera: Braconidae) in adult stage treatment. Munis Entomology and Zoology 5: 646-651.
20
21- Tran D.H., Takagi M., and Takasu K. 2004. Effects of selective insecticides on host searching and oviposition behavior of Neochrysocharis Formosa (Westwood) (Hymenoptera: Eulophidae), a larval parasitoid of the American serpentine leafminer: Applied Entomology and Zoology 39: 435-41.
21
ORIGINAL_ARTICLE
دینامیسم جمعیت پسیل معمولی پسته و ارزیابی روشهای شبکه عصبی مصنوعی و عصبی- ژنتیک در پیشبینی انبوهی جمعیت آفت
در این بررسی، پویایی جمعیت پسیل معمولی پسته و پیشبینی تغییرات جمعیت آفت در شهرستان مهولات استان خراسان رضوی بررسی شد. نمونهبرداریهای هفتگی در سالهای 1394 و 1395 از جمعیت پوره و حشرهی کامل پسیل معمولی پسته در باغ پسته رقم اکبری انجام شد. روش شبکه عصبی مصنوعی با پرسپترون چندلایه و روش ترکیبی شبکه عصبی- ژنتیک جهت پیشبینی جمعیت مورد استفاده قرار گرفت. میانگین دما، میانگین رطوبت نسبی، میانگین بارندگی، سرعت باد، جهت باد و جمعیت دشمنان طبیعی ورودیهای مدل و جمعیت حشرات کامل و پورهها خروجی مدل بودند. بررسی منحنیهای تغییرات جمعیت حاکی از وجود پنج نسل از آفت بود. مقایسهی میانگین جمعیت حشره کامل و پورهی پسیل معمولی پسته بین دو سال نمونهبرداری حاکی از بالاتر بودن جمعیت در سال 1395 نسبت به سال 1394 بود ولی این تفاوت تنها در مورد پوره معنادار بود. مقدار R2 (مرحله آزمون) برای جمعیت حشره کامل پسیل معمولی پسته بهترتیب در روشهای شبکه عصبی مصنوعی، عصبی-ژنتیک و رگرسیون خطی برابر 61/0، 73/0 و 32/0 و مقدار RMSE (مرحله آزمون) بهترتیب 233/0، 083/0 و 79/31 حاصل شد. در مدلسازی تغییرات جمعیت پورهی پسیل مقدار R2 84/0، 88/0 و 22/0و مقدار RMSE برابر 051/0، 051/0 و 03/48 بهترتیب در روشهای شبکه عصبی مصنوعی، عصبی-ژنتیک و رگرسیون خطی بهدست آمد. مقدار پایین RMSE در روش عصبی-ژنتیک پایین بودن خطا و دقت بالای مدل را نشان میدهد. با توجه به مقادیر پایین R2 مدل رگرسیونی این روش نتوانست بخشی از تغییرپذیری تراکم جمیت پسیل معمولی پسته را بهوسیله عوامل کمکی به کار گرفته شده توجیه کند.
https://jpp.um.ac.ir/article_37515_93a206adf34f9082ddff08e07b046bb6.pdf
2019-08-23
171
185
10.22067/jpp.v33i2.79972
الگوریتم ژنتیک
پسیل معمولی پسته
پویایی جمعیت
شبکه عصبی پرسپترون چندلایه
متغیرهای آبوهوایی
سمانه
غلامی مقدم
1
دانشگاه رازی، کرمانشاه
AUTHOR
ناصر
معینی نقده
moeeny@razi.ac.ir
2
رازی کرمانشاه
LEAD_AUTHOR
لیلا
ندرلو
lnaderloo@gmail.com
3
دانشگاه رازی، کرمانشاه
AUTHOR
1- Assar M. 2001. Biology of pistachio psylla Agonoscena pistaciae (Hom. : Psyllidae) in Dameghan and effect of Releasing Chrysoperla carnea (Stephens) (Neu.: Chrysopidae) egg integrated with using sticky yellow traps in reducing psylla populations in different generations. M. Sc. dissertation, Islamic Azad University, Science & Research Branch, Tehran, Iran. (In Persian)
1
2- Bianconi A., Von Zuben C.J., Serapião A.B.S., and Govone, J. 2009. Artificial neural networks: A novel approach to analysing the nutritional ecology of a blowfly species, Chrysomya megacephala. Journal of Insect Science 10: 1-18.
2
3- Chon T.S., Park Y.S., Kim J.M., Lee B.Y., Chung Y.J., and Kim Y. 2000. Use of an artificial neural network to predict population dynamics of the forest–pest pine needle gall midge (Diptera: Cecidomyiida), Environmental Entomolology 29: 1208-1215.
3
4- Dezianian A., and Sahragard A. 2004. Biology and natural enemies of pistachio psyllid, Agonoscena pistaciae in Dameghan region, Journal of Agricultural Science 1(5): 83-92. (In Persian)
4
5- Dustiy Z., Moeini Naghadae N., Zamani A.A., and Naderloo L. 2017. Modeling the population changes of sunn pest with environmental variables using artificial neural network and comparison with the linear regression model in Chadegan County. Iranian Journal of Plant Protection Science 47(2): 307-315. (In Persian with English abstract)
5
6- Food and Agriculture Organization. 2016. FAO statistical databases. From http://www.faostat.fao.org.
6
7- Freeman J., and Sakura D. 2005. Neural Networks: Algorithms, Applications, and Programming Techniques, Addison-Wesley, Berlin.
7
8- Han J., Pei J., and Kamber M. 2011. Data mining: concepts and techniques, Elsevier, Waltham, USA, 673p.
8
9- Hassani M.R., Nouri-Ghanbalani Gh., Eizadi H., and Shojaei M. 2010. Population fluctuations of pistachio psylla, Agonoscena pistaciae (Hemiptera: Psyllidae), in Rafsanjan region. Iranial Journal of Plant Protection Science 40(2): 93-98. (In Persian)
9
10- Heung B., Chak H., Zhang J., Knudby A., Bulmer C.E., and Schmidt, M.G. 2016. An overview and comparison of machine-learning techniques for classification purposes in digital soil mapping, Geoderma 265: 62-77.
10
11- Jalaeian M., and Karimi Malati A. 2013. Comparison of common pistachio psyllid (Agonoscena pistaciae) population on main native and non-native pistachio varieties in Khorasan Razavi Province, Plant Pest Research 2(4): 45-54. (In Persian with English abstract)
11
12- Karamouz M., and Araghinejad S. 2014. Advanced Hydrology. 3rd edition. Amirkabir University of Technology Press, Tehran. (In Persian)
12
13- Kouchakzadeh M., and Bahmani A. 2006. Assessment of artificial neural networks revenue in reducing required parameters for estimation of reference evapotranspiration. Journal of Agriculture Science 11(4): 87-97.
13
14- Lankin-Vega G., Worner S.P., and Teulon D.A.J. 2008. An ensemble model for predicting Rhopalosiphum padi abundance. Entomologia Experimentalis et Applicata 129: 308–315.
14
15- Mehrnejad M.R. 2008. Seasonal biology and abundance of Psyllaephagus pistaciae (Hymenoptera: Encyrtidae), a biocontrol agent of the common pistachio psylla Agonoscena pistaciae (Hemiptera: Psylloidea). Biocontrol Science and Technology 18: 409-417.
15
16- Mehrnejad M.R. 2010. Potential biological control agents of the common pistachio psylla, Agonoscena pistaciae, a review. Entomofauna 18: 249-272.
16
17- Mehrnejad M.R., and Emami S.Y. 2005. Parasitoids associated with the common pistachio psylla, Agonoscena pistaciae in Iran, Biological Control 32: 385-90.
17
18- MenhajM. 2005. Computational intelligence. Amirkabir University of Technology Press, Tehran. (In Persian)
18
19- Moeini- NaghadehN. 2007. Ecological approach on insect pest management. Razi University Press, Kermanshah. (In Persian)
19
20- Montgomer D.C., Peck E.A., and Vining, G.G. 2015. Introduction to Linear Regression Analysis, John Wiley & Sons.
20
21- Park Y.S., Cereghino R., Compin A., and Lek S. 2003. Applications of artificial neural networks for patterning and predicting aquatic insect species richness in running waters, Ecological Modelling 160: 265-280.
21
22- Samih M.A., Alizadeh A., and Saberi Riseh R. 2005. Pistachio pests and diseases in Iran and their IPM, Organization of Jihad-e-University, Tehran.
22
23- Schaap M.G., Leij F.J., and van Genuchten M.T. 1998. Neural network analysis for hierarchical prediction of soil hydraulic properties. Soil Science of Society of America Journal 62: 847-855.
23
24- Souliotes C., Markoyiannaki-Printziou D., and Lefkaditis F. 2002. The problems and prospects of integrated control of Agonoscena pistaciae Burck. and Laut. (Hom., Sternorrhyncha) in Greece. Journal of Applied Entomology 126: 384-388.
24
25- Tonnang H.E.Z., Nedorezov L.V., Owino J.O., Ochanda H., and Lohr B. 2010. Host–parasitoid population density prediction using artificial neural networks: diamondback moth and its natural enemies. Agricultural and Forest Entomology 12: 233-242.
25
26- Worner S.P., and Gevrey M. 2006. Modelling global insect pest species assemblages to determine risk of invasion. Journal of Applied Ecology 43: 858-867.
26
27- Yang L.N., Peng L., Zhang L.M., Zhang L.L., and Yang S.S. 2009. A prediction model for population occurrence of paddy stem borer (Scirpophaga incertulas), based on back propagation artificial neural network and principal components analysis. Computers and Electronics in Agriculture 68: 200–206.
27
28- Yanik E., and Unlu L. 2015. Initial study of rearing and release of Anthocoris minki Dohrn (Hemiptera: Anthocoridae) for biological control of Agonoscena pistaciae Burckhardt and Lauterer (Hemiptera: Psyllidae) in pistachio orchards. Agriculture & Forestry 61: 347-358.
28
29- Zhang W., Zhoung X.Q., and Liu G.H. 2008. Recognizing spatial distribution patterns of grassland insects: neural network approaches. Stochastic Environmental Research and Risk Assessment 22:207–216.
29
ORIGINAL_ARTICLE
تراکم مناسب تله نوری برای شکار شبپره بید گوجهفرنگی در شرایط گلخانه
بید گوجهفرنگی “Tuta absoluta (Meyrick)” یکی از آفات کلیدی گوجهفرنگی میباشد. استفاده از تلههای نوری یکی از روشهای کم هزینه و کم ریسک برای شکار حشرات بالغ، و در نتیجه کاهش خسارت این آفت میباشد. در این تحقیق مناسبترین تعداد تله نوری، از طریق مقایسه دو، چهار، شش و هشت تله نوری (با منبع نوری UV Blacklight Blue) در هر واحد 1000 متری گلخانه، در سه استان بررسی شد. نتایج نشان داد که در تراکم کم جمعیت آفت، میانگین شکار در هر تله با افزایش تعداد تله کاهش مییابد. اما در آلودگی شدید، میانگین تعداد شکار، با افزایش تعداد تله در واحد سطح، حتی با نصب هشت تله در هر هزار متر مربع گلخانه نیز کاهش نمییابد. در استان هرمزگان، به عنوان مثال، میانگین تعداد پروانههای شکار شده با نصب دو تله 75/27 و با نصب چهار تله 39/14 هنگام آلودگی پائین ثبت شد اما در آلودگی بالا، میانگین تعداد شکار با نصب شش تله 67/112 و با نصب هشت تله 33/113 بود. براساس نتایج فوق میتوان گفت که در طول فصل کشت که گلخانه تحت مدیریت مناسب قرار دارد، با نصب چهار تله نوری در هر 1000 متر مربع گلخانه، بیشترین شکار حشره کامل بید گوجهفرنگی را در پی داشته و میتواند برنامههای مدیریت انبوهی این آفت مد نظر قرار گیرد.
https://jpp.um.ac.ir/article_37523_be9562ed7c840bfa9e96960e5ef9b478.pdf
2019-08-23
187
192
10.22067/jpp.v33i2.72135
بید گوجه فرنگی
تله نوری
کنترل غیر شیمیایی
محمد جواد
ارده
mjardeh@gmail.com
1
موسسه گیاهپزشکی
LEAD_AUTHOR
سید وحید
فرهنگی
seyedvahid.farhangi@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات کشاورزی قزوین
AUTHOR
مجید
عسگری
askarisey@gmail.com
3
مرکز تحقیقات کشاورزی هرمزگان
AUTHOR
1- Baniameri V., and Cheraghian A. 2012. The first report and control strategies of Tuta absoluta in Iran. European and Mediterranean Plant Protection Organization Bulletin 42: 322-324.
1
2- Caparros M.R., Haubruge E., and Verheggen F.J. 2012. First evidence of deuterotokous parthenogenesis in the tomato leafminer, Tuta absoluta (Meyrick) (Lepidoptera: gelechiidae). Journal of Pest Science 85: 409–412.
2
3- Cocco A., Deliperi S., and Delrio G. 2012. Potential of mass trapping for Tuta absoluta management in greenhouse tomato crops using light and pheromone traps. International Organization for Biological and Integrated Control, West Palaeartic Regional Section Bulletin 80: 319–324.
3
4- Desneux N., Luna M.G., Guillemaud T., and Urbaneja A. 2011. The invasive South American tomato pinworm, Tuta absoluta, continues to spread in Afro-Eurasia and beyond: the new threat to tomato world production. Journal of Pest Science 84: 403–408.
4
5- El-Rahman Salama H.S., Ismail I.A.K., Fouda M., Ebadah I., and Shehata I. 2015. Some ecological and behavioral aspects of the tomato leaf miner Tuta absoluta. Ecologia Balkanica 7(2): 35-44.
5
6- El-Sayed A.M., Suckling D.M., and Wearing C.H. 2006. Potential of mass trapping for long term pest management and eradication of invasive species. Journal of Economic Entomology 99: 1550–1564.
6
7- Kheirkhah T., Ardeh M.J., and Faridi B. 2015. Study of attractiveness of the tomato leaf miner Tuta absoluta (Lep: Gelechidae) toward artificial lights in laboratory conditions. M. Sc. Thesis in Entomology. University of Zanjan. 79pp. (In Persian with English abstract)
7
8- Mahmoud Y.A., Ebadah I.M.A., Abd-Elrazik A.S., TAbd-Elwahab E., and Deif S.H. 2014. Efficiency of different colored traps baited with pheromone in capturing tomato adult moth, Tuta absoluta (Meyrick) (Lepidoptera: Gelechiidae) during summer plantation. World Applied Sciences Journal 30(4): 406-412.
8
9- McLaughlin J.R., Brogdon J.E., Agee H.R., and Mitchell E.R. 1975. Effect of trap color on captures of male cabbage loopers and soybean loopers in double-cone pheromone traps. Journal of the Georgia Entomological Society 10: 174–179.
9
10- Shimoda M., and Honda K. 2013. Insect reactions to light and its applications to pest management. Applied Entomology and Zoology 48: 413–421.
10
11- Silva S.S. 2008. Fatores da biologia reprodutiva que influenciam o manejo comportamental de Tuta absoluta (Meyrick) (Lepidoptera: Gelechiidae). Dissertation, Universidade Federal Rural de Pernambuco. MSc. thesis: Universidade Federal Rural de Pernambuco 63p.
11
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر دورههای عاری از علف هرز و تراکم کشت بر صفات ظاهری، عملکرد و اجزای عملکرد کنجد (L. Sesamum indicum)
بهمنظور بررسی اثر طول دوره عاری از علفهرز و تراکم گیاهی بر صفات مورفولوژیکی، عملکرد و اجزای عملکرد کنجد (Sesamum indicum L.)، آزمایشی بهصورت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در مزرعه تحقیقاتی دانشگاه آزاد واحد بیرجند به اجرا درآمد. فاکتورهای آزمایش شامل دوره عاری از علفهرز در پنج سطح (عاری از علفهرز در کل دوره رشد، عاری از علفهرز تا 20، 40 و60 روز پس از سبز شدن و تداخل علفهرز در کل دوره رشد) و سه تراکم کنجد (7، 14 و 28 بوته در متر مربع) بود. نتایج تجزیه واریانس نشان داد که اثر دوره عاری از علفهرز بر ارتفاع بوته، قطر ساقه، تعداد انشعابات ساقه اصلی و طول کپسول، تعداد کپسول در متر مربع، تعداد دانه در کپسول، وزن هزار دانه، عملکرد دانه، عملکرد بیولوژیک، شاخص برداشت دانه در بوته کنجد، تعداد و وزن خشک علفهای هرز معنیدار شد و تراکم بوته نیز صفات ارتفاع بوته، تعداد کپسول در متر مربع، عملکرد دانه، عملکرد بیولوژیک، شاخص برداشت دانه در بوته کنجد، تعداد و وزن خشک علفهای هرز را به طور معنیداری تحت تاثیر قرار داد، اما اثر متقابل دوره عاری از علفهرز و تراکم بوته تنها بر عملکرد بیولوژیک کنجد معنیدار شد. مقایسه میانگینها نشان داد که افزایش دوره عاری از علفهرز باعث بهبود صفات مورفولوژیکی، اجزای عملکرد و عملکرد دانه و بیولوژیک کنجد و کاهش تعداد و بیوماس علفهای هرز گردید به طوری که تعداد کپسول در متر مربع در تیمار عاری از علفهرز در کل دوره رشد نسبت به تیمارهای تداخل علفهای هرز تا انتهای دوره رشد و عاری از علف هرز تا 20 و 40 روز پس از سبز شدن کنجد از برتری به ترتیب 98/3، 45/2 و 1/1 برابری، تعداد دانه در کپسول از برتری به ترتیب 155، 2/20 و 8/9 درصدی، وزن هزار دانه از برتری به ترتیب 3/20، 6/13 و 9/8 درصدی برخوردار بود. همچنین بیشترین عملکرد دانه با میانگین 62/913 کیلوگرم در هکتار مربوط به تیمار عاری از علفهرز در کل دوره رشد بود که نسبت به تیمارهای تداخل علفهای هرز تا انتهای دوره رشد و عاری از علفهرز تا 20، 40 و 60 روز پس از سبز شدن کنجد از برتری معنیدار به ترتیب 5/15، 4، 8/1 و 3/1 برابری برخوردار بود. تعداد علفهای هرز در تیمار تداخل علفهرز در کل دوره رشد از برتری معنیدار 6/22، 7/3 و 4/2 برابری و وزن خشک علفهای هرز در تیمار تداخل علفهرز در کل دوره رشد از برتری معنیدار 40، 8 و 8/2 برابری به ترتیب نسبت به تیمارهای عاری از علفهرز تا 60، 40 و 20 روز پس از سبز شدن کنجد برخوردار بودند. همچنین مقایسه میانگینها نشان داد که با افزایش تراکم از 7 به 28 بوته در متر مربع، تعداد کپسول در متر مربع و عملکرد دانه به ترتیب 4/76 و 7/72 درصد افزایش و تعداد علفهایهرز و وزن خشک علفهای هرز به ترتیب 4/26 و 3/45 درصد کاهش پیدا کرد. به طور کلی در شرایط این تحقیق برای افزایش عملکرد اقتصادی در کنجد، تیمار عاری نگه داشتن مزرعه از علفهرز در کل دوره رشد و تراکم 28 بوته کنجد در متر مربع پیشنهاد میشود.
https://jpp.um.ac.ir/article_37524_e23dffb46f77f867350d7dc1fbf4563c.pdf
2019-08-23
193
211
10.22067/jpp.v33i2.68641
اجزای عملکرد
تداخل علف هرز
تراکم بوته
عملکرد
کنجد
مهسا
بهادر
hrramazani@gmail.com
1
دانشگاه آزاد اسلامی، بیرجند،
AUTHOR
سید غلامرضا
موسوی
s_reza1350@yahoo.com
2
آزاد اسلامی واحد بیرجند
LEAD_AUTHOR
سید حمیدرضا
رمضانی
3
دانشگاه بیرجند، سرایان
AUTHOR
1- Ahn J.K., Hahn S.J., Kim J.T., Khanh T.D., and Chung I.M. 2005. Evaluation of allelopathic potential among rice (Oryza sativa L.) germplasm for control of Echinochloa crus-galli in the field. Crop Protection 24:413-419.
1
2- Alavi S.M., and Saeid M.S.A. 2008. Effect plant densities on forage and seed yield of sorghum in Bam. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources 12(45a): 91-97. (In Persian with English abstract)
2
3- Amiri Z., Tavakoli A., and Rastgoo M. 2014. Responses of corn to plant density and weed interference period. Middle-East Journal of Scientific Research 21(10): 1746-1750.
3
4- Amiri Z., Tavakoli A., Rastgu M., Yousefi A., and Saba J. 2011. Effects of crop density and weed competition in corn yield and yield components. p. 501-509. 1th Congress of Scientific and New Technology in Agriculture 9-11 Sept. 2011. Zanjan, Iran. (In Persian with English abstract)
4
5- Aref W.M., AbdeL Raheem H.M., Anaam H.G., and Fakkar A.O. 2013. Estimation of critical period for weed control in sesame (Sesamum indicum L.). Assiut Journal of Agricultural Sciences 44(3): 32-45.
5
6- Asghari M., and Armin M. 2015. Effect of weed interference in different agronomic managements on grain yield and yield components of chickpea (Cicer arietinum L.). Journal of Crop Ecophysiology 8(4): 407-422. (In Persian with English abstract)
6
7- Auskarniene O., Psibisauskiene G., Auskalnis A., and Kadzys A.K. 2010. Cultivar and plant density influence on weediness in spring barely crops. Zemdirbyste Agriculture 97: 53- 60.
7
8- Bakhtiari Moghadam M., Vazan S., Esfini Farahani M., Aziz Khani S., and Rezaee K. 2012. Study of time and location management of weed control on yield and some agronomical traits of chickpea (Cicer arietinum L.). Journal of Agronomy and Plant Breeding 8(2): 87-96. (In Persian)
8
9- Bonyadi M., Yadavi A.R., Movahdi Dhnavi M., and Fallah M.H. 2012. Determine the critical period of weed control in winter safflower (Carthamus tinctorius L.) in Yasooj. Journal of Agroecology 3(4): 419-429. (In Persian with English abstract)
9
10- Carpenter J., and Gianessi L. 1999. Herbicide tolerant soybeans: Why growers are adopting roundup ready varieties. Journal of Agrobiotechnology Management and Economics 2(2): 65-72.
10
11- Daneshian J., and Jonoubi P. 2008. Evaluation of sunflower new hybrids tolerance to water deficit stress. Proceedings of the 5th International Crop Science Congress. Jejo, Korea.
11
12- Dehghanian H., and Nasrollahzadeh S. 2014. Effect of plant density and weed interference on morphological characteristics and yield of corn (Zea mays L.). International Journal of Advanced Biological and Biomedical Research 2(7): 2225-2229.
12
13- Farahmand N. 2015. Effect of planting date and plant density on morphological traits, yield and yield components of Cannabis. M.Sc. Thesis of Agronomy, Islamic Azad University of Birjand Branch, Birjand, Iran. (In Persian with English abstract)
13
14- Farnia A., and Mansouri M. 2014. Effect of plant density to yield and yield components of maize (Zea mays L.) cultivars. Bulletin of Environment, Pharmacology and Life Sciences 3(5): 123-127.
14
15- Foroghi A., Ghrekhlo J., and Ghaderifar F. 2013. Planting row spacing effect and common cocklebur (Xanthium strumarium L.) interference on grain yield and its components of two sesame (Sesamum indicum L.) cultivars in Gorgan. Electronic Journal of Crop Production 6(2):101-116. (In Persian with English abstract)
15
16- Ghamari H., and Ahmadvand G. 2013. The effect of different interference and control weeds on height, yield and yield components of red bean. Journal of Crop Production and Processing 3(9): 71-79. (In Persian with English abstract)
16
17- Grichar W.J., Sestak D.C., Brewer K.D., Besler B.A., Stichler C.R., and Smith D.T. 2001. Sesame (Sesamum indicum L.) tolerance and weed control with soil-applied herbicides. Crop protection 20(5): 389-394.
17
18- Haghanian S., Yadavi A., Balouch H., and Moradi A. 2016. Grain, oil yield and nitrogen use efficiency in different varieties of sesame (Sesamum indicum L.) under nitrogen fertilizer and weed competition. Journal of Agricultural Science and Sustainable Production 26(1): 67-81.
18
19- Heshmatniya M., and Armin M. 2016. Effects of weed interference duration on yield and yield components of chickpea (Cicer arietinum L.) in two different production systems. Journal of Crop Production 9(1): 25-47. (In Persian with English abstract)
19
20- Islam M.K., Khanam M.S., Maniruzzaman M., Alam I., and Huh M.R. 2014. Effect of seed rate and manual weeding on weed infestation and subsequent crop performance of sesame (Sesamum indicum L.). Australian Journal of Crop Science 8(7): 1065-1072.
20
21- Khajehpour M.R. 2005. Industrial plants. University Jihad (Isfahan University of Technology). 582 P.
21
22- Khazaie M., Hadizadeh M.H., and Zeidali E. 2014. Determining the critical period of weed control in corn at Nahavand. Agricultural Crop Management (Journal of Agricultural) 16(4): 911-919. (In Persian with English abstract)
22
23- Koocheki A., Nassiri Mahallati M., Nourbakhsh F., and Nehbandani A. 2017. The effect of planting pattern and density on yield and yield components of sesame (Sesamum indicum L.). Iranian Journal of Field Crops Research 15(1): 31-45. (In Persian with English abstract)
23
24- Kyamarsii Z., and Kazemiani K.S.A. 2014. Effects of water deficit and redroot pigweed interference period at different growth stages on sunflower yield and oil percentage. Iranian Journal of Weed Science 10(1): 33-46. (In Persian with English abstract)
24
25- Lack S., Naderi A., Siadat S.A., Ayenehband A., Nourmohammadi G.H., and Moosavi S.H. 2008. The effects of different levels of irrigation, nitrogen and plant population on yield, yield components and dry matter remobilization of corn at climatically conditions of Khuzestan. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources 11(42): 1-14. (In Persian with English abstract)
25
26- Lotfi Mavi F., Daneshian J., Baghestani M., Framarzi A., and Shayesteh R. 2012. Effect of integrated weed management on yield and yield components of broomcorn (Sorghum vulgar L.). Iranian Journal of Crop Sciences, 13(4): 596-610. (In Persian with English abstract)
26
27- Makarian H., Banaian M., Rahimian H., and Isadi Darbandi E. 2003. Planting date and population density influence on competitiveness of corn (Zea mays L.) with redroot pigweed (Amaranthus retroflexus L.). Iranian Journal of Crop Research 2: 271-279. (In Persian with English abstract)
27
28- Mohammadi G.R., and Amiri F. 2011. Critical period or weed control in soybean (Glycine max) as influenced by starter fertilizer. Australian Journal of Crop Science 5(11): 1350-1355.
28
29- Mohammadi Gh.R., Rahimzade A., Mohammadi F., and Salmasi S. 2004. The effect of weed interference on shoot and root growth and harvest index in chickpea. Iranian Journal of Crop Sciences 6(3): 1-13. (In Persian with English abstract)
29
30- Mohmadali-Nejad R., and Moosavi S.G. 2015. Evaluation of weeds interference period on yield and some traits of new varieties of safflower in Birjand. Biological Forum–An International Journal 7(1): 1485-1489.
30
31- Moosavi S., Segatoleslami M.J., and Arefi R. 2016. Effect of different nitrogen rates and plant density on morphological traits and yield of grain sorghum. Journal of Applied Research of Plant Ecophysiology 3(2): 141-160. (In Persian with English abstract)
31
32- Niroomand Tomaj I., Jami Al-Ahmadi M., Zamani Gh., and Riasi A. 2012. Effects of sowing date and plant density on yield and yield components of grass pea (Lathyrus sativus L.) in Birjand region. Journal of Crop Production and Processing 2(3): 57-66. (In Persian with English abstract)
32
33- Raoofi M., and Alebrahim M.T. 2017. A comparison of weeds interference and non-interference at different planting densities, on yield, nutritional value and some morphological traits of alfalfa (Medicago sativa L.). Sarhad Journal of Agriculture 33(2): 220-231.
33
34- Rezvani Moghaddam P., and Seyyedi S.M. 2015. The study of critical period of weed control and yield of black seed (Nigella sativa L.) affected by weed free and infested periods. Journal of Plant Protection 29(2): 175-186. (In Persian with English abstract)
34
35- Sarani S., and Moosavi S.Gh. 2017. Effect of plant density and weeds interference on yield and yield components of sorghum. Journal of Plant Protection 31(3).
35
36- Seyed Sharifi R., Mohammadi Khanghah P., and Raey Y. 2014. Effect of plant density on yield, yield components and some physiological indices of chickpea cultivars three. Crop Physiology Journal 5(20): 25-38. (In Persian with English abstract)
36
37- Seyyedi S.M., Ghorbani R., Rezvani Moghaddam P., and Nassiri Mahallati M. 2013. Nitrogen use efficiency and harvest index in black seed (Nigella sativa L.) at different weed competition durations. Journal of Plant Production 20(1): 141-156. (In Persian with English abstract)
37
38- Shaalan A.M., Abou-zied K.A., and Elnass M.K. 2014. Productivity of sesame as influenced by weeds competition and determination of critical period of weed control. Alexandria Journal of Agricultural Research 59(3): 179‐187.
38
39- Smith D.L., and Hamel C. 1999. Crop yield physiology and processes. Springer press. 524 p.
39
40- Soleymani A., Almodares A., and Shahrajabian M.H. 2012. Changes in seed yield and yield components of two cultivars of sweet sorghum in different plant populations. International Journal of Agriculture and Crop Sciences 4(4): 175-178.
40
41- Svathi A., Rammohan J., Nadanassababady T., and Chellamuthu V. 2005. Influence of sowing methods and weed management on sesame (Sesamum indicum L.) yield under irrigated condition. Journal of Crop and Weed 1(2): 4-7.
41
42- Swanton C.J., Booth B.D., and Murphy S.D. 2003. Weed ecology in natural and agricultural system. CAB international Publishing.
42
43- Take-tsaba A.I., Yakubu A.I., Alhassan J., and Musa M. 2012. Yield and yield components of sesame (Sesamum indicum L.) as affected by weeding regime and cattle dung application in gusau, northern guinea savanna agro-ecological zone of Nigeria. Agricultural Society of Nigeria, p.864.
43
44- Yaghoubi S.R., and Agha Alikhani M. 2011. Effect of weeds natural population interference and control periods on yield and yield components of autumn canola (Brassica napus L.). Iranian Journal of Agricultural Research 9(4): 659-669. (In Persian with English abstract)
44
45- Zubair I., Asif T., Muhammad E.S., Ahsan A., Muhammad A., Naeem A., Farhan A.A., Asghar A., and Muhammad M.M. 2011. Effects of weed crop competition period on weeds and yield and yield components of sesame (Sesamum indicum L.). Pakistanian Journal of Weed Science Research 17(1): 53-61.
45
ORIGINAL_ARTICLE
پیشبینی ظهور گیاهچه علفهایهرز جودره (Hordeum spontaneum [C. Koch])) و هفتبند (Polygonum aviculare L.) با استفاده از مدلهای دمایی در شرایط کرج
جهت پیشبینی زمان ظهور گیاهچههای جودره و هفتبند با استفاده از مدلهای دمایی، آزمایشی در فصل زراعی 92-1391 در مزرعه تحقیقاتی پردیس کشاورزی دانشگاه تهران اجرا گردید. بر اساس نتایج رویش هفتبند در مزرعه زودتر اتفاق افتاد، به طوری که در حاشیه خارجی و مرکز مزرعه گیاهچهها با گذشت چهارده هفته بعد از کاشت و در 2/26 درجه- روز رشد در مزرعه ظاهر شدند. گیاهچههای جودره در حاشیه خارجی مزرعه در متوسط درجه- روز رشد بالاتری اتفاق افتاد و گیاهچهها با گذشت چهارده هفته بعد از کاشت و در 8/35 درجه- روز رشد ظاهر شدند. در غیاب تاج پوشش گندم (حاشیه خارجی مزرعه) سبز شدن تجمعی جودره پس از دریافت 50 واحد درجه- روز رشد به یک مرتبه افزایش یافت در حالیکه در مرکز و حاشیه داخلی مزرعه سبز شدن تجمعی گیاهچه به کندی افزایش یافت. از آنجاکه بیشترین سبز شدن هفتبند در حاشیه مزرعه در اوایل رشد و تا قبل از 100 درجه- روز رشد اتفاق میافتد لذا در مزارعی که این علفهرز غالب میباشد عملیات کنترل نظیر سمپاشی باید زودهنگام و در اوایل فصل رشد صورت گیرد.
https://jpp.um.ac.ir/article_37531_5a7808fcde6ddcfad6fa3a3df887f7f7.pdf
2019-08-23
213
220
10.22067/jpp.v33i2.70911
بانک بذر
روز درجه رشد
مدل لجستیک
سجاد
ایلانلو
sajad.ilanloo@gmail.com
1
دانشگاه ازاد اسلامی- واحد علوم و تحقیقات تهران
AUTHOR
مرجان
دیانت
ma_dyanat@yahoo.com
2
دانشگاه آزاد اسلامی-واحد علوم و تحقیقات
LEAD_AUTHOR
مصطفی
اویسی
moveisi@ut.ac.ir
3
تهران
AUTHOR
فریدون
قاسم خان قاجار
4
دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران
AUTHOR
1- Baghestani M.A., Zand E., Soufizadeh S., Jamali M., and Maighani M. 2007. Evaluation of sulfosulfuron for broadleaved and grass weed control in wheat (Triticum aestivum L.) in Iran. Crop Protection 26:1385–1389.
1
2- Blackshow R.E. 1991. Soil temperature and moisture effects on downy brome Vs. winter canola, wheat, and rye emergence. Crop Science 31: 1034-1040.
2
3- Buhler D.D., Liebman M., and Obrycki J.J. 2000. Theoretical and practice challenges to an IPM approach to weed management. Weed Science 48: 274-280.
3
4- Bulcke R., Willemijns P., Stryckers J., and Himme M. 1987. Weed competition in maize. Mededelingen van de Faculteit Landbouwwetenschappen, Rijksuniversiteit Gent 52: 1185–1194.
4
5- Catullo J.C., Sosa C.A., Rodriguez M.L., and Colombo I. 1983. Weed incidence in wheat in relation to fertilization. Malezas, 11: 179–203. )In Spanish with English abstract(
5
6- Chantre G.R., Blanco A.M., Forcella F., Van Acker R.C., Sabbatini M.R., and Gonzalez-Andujar J.L. 2013. A comparative study between non-linear regression and artificial neural network approaches for modeling wild oat (Avena fatua) field emergence. Journal of Agricultural Science 152: 1-9.
6
7- Donald W.W. 2000. A degree-day model of Cirsium arvense shoot emergence from adventitious root buds in spring. Weed Science 48: 333-341.
7
8- Dorado J., Sousa E., Calha I.M., Gonzalez-Andujar J.L., and Fernandez-Quintanilla C. 2009. Predicting weed emergence in maize crops under two contrasting climatic conditions. Weed Research 49: 251-260.
8
9- Forcella F. 1998. Real-time assessment of seed dormancy and seedling growth for weed management. Seed Science Research 8: 201–209.
9
10- Gan Y., Stobbe E.H., and Moes J. 1992. Relative date of wheat seedling emergence and its impact on grain yield. Crop Science 32: 1275-1281.
10
11- Hamidi R., Mazaheri D., and Rahimian mashhadi H. 2009. Wild Barley (Hordeum spontaneum Koch) Seed Germination as Affected by Dry Storage Periods, Temperature Regimes, and Glumellae Characteristics Iranian Journal of Weed Science 5: 1-12.
11
12- Harlan J.R., and Zohary D. 1966. Distribution of wild wheats and barley. Science 153: 1074–1080.
12
13- Keshtkar E., Kordbachehm F., Mesgaran M.B., Mashhadi H.R., and Alizadeh H.M. 2009. Effects of the sowing depth and temperature on the seedling emergence and early growth of wild barley (Hordeum spontaneum) and wheat. Weed Biology and Management 9: 10–19.
13
14- Kruk B., Insausti P., Razul A., and Benech-Arnold R. 2006. Light and thermal environments as modified by a wheat crop: effects on weed seed germination. Journal of Applied Ecolology 43: 227–236.
14
15- Leblanc M.L., Cloutier D.C., Stewart K.A., and Hamel C. 2003. The use of thermal time to model common lambsquarters (Chenopodium album) seedling emergence in corn. Weed Science 51:718–724.
15
16- Leguizamon E.S., Rodriguez N., Rainero H., Perez M., Perez L., Zorza E., and Fernandez-Quintanilla C. 2009. Modeling the emergence pattern of six summer annual weed grasses under no tillage systems in Argentina. Weed Research 49: 98-106.
16
17- Leguizamon E.S., Fernandez-Quintanilla C., Barros J., and Gonzalez-Andujar J.L. 2005. Using thermal and hydrothermal time to model seedling emergence of Avena sterilis ssp. ludoviciana in Spain. Weed Research 45: 149–156.
17
18- Lopez J.A., and Mattiacci M.R. 1983. Damage caused by prostrate knotweed (Polygonum aviculare L.) during the establishment of a sown pasture. Malezas 11: 246–251. (In Spanish with English abstract)
18
19- Mohler C.L., and Calloway M.B. 1992. Effects of tillage and mulch on the emergence and survival of weeds in corn. Journal of Applied Ecology 29: 21–34.
19
20- Myers M.W., Curran W.S., VanGessel M.J., Calvin D.D., Mortensen D.A., Majek B.A., Karsten H.D., and Roth G.W. 2004. Predicting weed emergence for eight annual species in the Northeastern United States. Weed Science 52: 913-919.
20
21- Norsworthy J.K., and Oliveira M.J. 2007. A model predicting common cocklebur (Xanthium strumarium) emergence in soybean. Weed Science 55: 341–345.
21
22- Oryokot J.O.E., Hunt L.A., Murphy S., and Swanton C.J. 1997. Simulation of pigweed (Amaranthus spp.) seedling emergence in different systems. Weed Science 45: 684–690.
22
23- Paolini R., Del Puglia S., Principi M., Barcellona O., and Riccardi E. 1998. Competition between safflower and weeds as influenced by crop genotype and sowing time. Weed Research 38: 247–255.
23
24- Roman E.S., Murphy S.D., and Swanton C.J. 2000. Simulation of Chenopodium album emergence. Weed Science 48: 217–224.
24
25- Roman E.S., Murphy S.D., and Swanton C.J. 1999. Effect of tillage and Zea mays on Chenopodium album seedling emergence and density. Weed Science 47: 551–556.
25
26- Smutny V., and Kren J. 2002. Improvement of an elutriation method for estimation of weed seed bank in the soil. Rostlinna Vyroba 48: 271–278.
26
27- Tardif M.C., and Francois J. 2005. The biology of Canadian weeds. 131. Polygonum aviculare L. Canadian Journal of Plant Science 85: 481-506.
27
28- Wright D., and Baloch M.K. 1999. Effects of seven common arable weeds on the yield of normal and semi-leafless pea varieties. Tests Agrochemical Culture 20: 54–55.
28
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات عمق دفن غده و نوع بافت خاک بر صفات بیولوژیکی اویارسلام ارغوانی (Cyperus rotundus L.)
شناخت و آگاهی از رفتار و خصوصیات بیولوژیکی علفهای هرز نقشی مهم در مدیریت آنها دارد. این آزمایش نیز بهمنظور بررسی اثر عمق دفن غده و بافت خاک بر خصوصیات رشدی علف هرز اویارسلام ارغوانی در سال 1396 در مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی جنوب کرمان بهصورت فاکتوریل بر پایه طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار انجام شد. تیمارهای آزمایش شامل سه نوع بافت خاک مختلف(لوم شنی، لوم سیلتی و لوم رسی) و پنج عمق دفن غده در پنج سطح (2، 12، 22، 32و 42 سانتیمتر) بود. نتایج نشان داد زمان سبز شدن، درصد سبز شدن، وزن خشک اندام زیرزمینی و تعداد غده تولیدی اویارسلام ارغوانی تحت تأثیر عمق دفن غده و نوع بافت خاک قرار گرفتند. با افزایش عمق دفن غده در هر سه نوع بافت خاک تمامی صفات بطور قابل ملاحظهای کاهش یافت اما بین بافتهای مختلف خاک تفاوتهایی وجود داشت، ولی ظهور علف هرز به تأخیر و نهایتاً متوقف شد. در رابطه با عمق دفن غده، بیش از 80 درصد توزیع و پراکنش اندام زیر زمینی در عمق دو تا 12 سانتیمتری خاک تشکیل شد. در عمقهای 32 و 42 سانتیمتری بافتهای لوم رسی و لوم سیلتی درصد جوانهزنی و ظهور 100 درصد کاهش یافت وگیاهچهای سبز نشد.. بنابراین به نظر میرسد استفاده از روشهای کنترل غیرشیمیایی مانند شخم عمیق در جهت به تأخیر انداختن ظهور، رشد و پراکنش این علف هرز مؤثر باشد.
https://jpp.um.ac.ir/article_37538_2e3c824a9e07a0bb193f440cefe8b96a.pdf
2019-08-23
221
230
10.22067/jpp.v33i2.76397
مدیریت غیرشیمیایی
درصد جوانه زنی
شخم عمیق
لوم رسی
گیاهچه
فرامرز
رفیعی سربیژن نسب
faramarz.rafiee@gmail.com
1
دانشگاه محقق اردبیلی
LEAD_AUTHOR
حمیدرضا
محمددوست چمن آباد
hr_chamanabad@yahoo.com
2
دانشگاه محقق اردبیلی
AUTHOR
احمد
آئین
a.aien@areeo.ac.ir
3
بخش تحقیقات اصلاح و تهیه نهال و بذر، مرکقز تحقیققات و آموزش کشاورزی جنوب کرمان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، جیرفت
AUTHOR
محمد تقی
آل ابراهیم
taghiw200@yahoo.com
4
اردبیل
AUTHOR
علی
اصغری
ali_asgharii@yahoo.com
5
دانشگاه محقق اردبیلی
AUTHOR
1- Abdessatar O., and Fethia H.S. 2009. Biological behavior of Cyperus rotundus L. in relation to Agro- Ecological condations and ImposedHuman factors. The African Journal of Plant Science and Biotechnology 63-69.
1
2- Akin D.S., and Shaw D.R. 2001. Purple nutsedge (Cyperus rotundus L.) and yellow nutsedge (Cyperus esculentus) control in glyphosate- tolerant soybean (Glycine max). Weed Technology 15: 564-570.
2
3- Andrews F. W. 1940. A study of nut grass (Cyperus rotundus L.) in the cotton soil of the Gezira. I. The maintenance of life in the tuber. Annals of Botany (London), 4:177-193.
3
4- Azizi Zahan A.A., A.A Kamgar Haghighi., and A Sepaskhah. 2006. Effect of method and duration of irrigation on production of corm and flowering on saffron. Journal of Science and Technology Agriculture and Natural Research 10: 45-53. (In Persian with English Summary)
4
5- Berti A., Sattin M., Baldoni G., Del Pino A.M., Ferrero A., Monterro P., Tel F., Viggiani P., and Zanin G. 2008. Relationships between crop yield and weed time of emergence⁄ removal: modelling and parameter stability across environments. Weed Research 48: 378–388.
5
6- Couses R., Btain P., Odonovan J.T., and Osulilvan P.A. 1987. The use of biologically realistic wquation to describe the effect of weed density and relative time of emergence on crop yield weed Science 35: 720-725.
6
7- Das T.K., and Yaduraju N.T. 2008. Effect of soil solarization and crop husbandry practices on weed species competition and dynamics in soybean-wheat cropping system. Indian Journal of. Weed Science 40(1&2): 1-5.
7
8- Gilreath J.P., and Santos B.M. 2004. Herbicide dose and incorporation depth in combination with 1, 3-dichloropropene plus chloropicrin for Cyperus rotundus control in tomato and pepper. Crop Protection 23:205–210.
8
9- Gresta F., Lombardo G.M., Siracusa L., and Ruberto G. 2008. Saffron, an alternative crop for sustainable agricultural systema. A review. Agronomy for sustainable Development 28: 95-112.
9
10- Gresta F., Lombardo G.M., and Avola G. 2009. Saffron, sigmas production as affected by soil texture. 3th international symposium on Saffronan: forthcoming challenges in cultivation, research and economics.
10
11- Holm L.G., Plucknett D.L., Pancho J.V., and P Herberger J. 1991. The World’s Worst Weeds. Distribution and Biology. Malabar, FL: Krieger Publishing 125–133.
11
12- Horowitz M .1972. Growth, tuber formation and spread of Cyperus rotundus L. Weed Research 11:88-93.
12
13- Horowitz M. 1965. Data on the biology and chemical control of the nutsedge (Cyperus rotundus) in Israel. Int. J. Pest Manag. Part C, 11:389–414.
13
14- Jerry A., and Ivan Y. 1997. Effect of Rhizome Depth in Soil on Emergence and Growth of Field Mint (Mentha arvensis). Weed Technology 11: 149-151.
14
15- Jordan-Molero J.E., and Stoller E.W. 1978. Seasonal development of yellow and purple nutsedges (Cyperus esculentus and C. rotundus) in Illinois. Weed Science 26:614-618.
15
16- Justice O.L., and Whitehead M.D. 1946. Seed production, viability and dormancy in the nutgrass, Cyperus rotundus and C. esculentus. Journal of Agricaltural Research 73:303–318.
16
17- Khalighi A., Y Hojjati., M Babalar., and R Naderi. 2006. Effects of cytocinin nutrient treatment and soil texture on quality and quantity charactristic of onion and scallion in Darwin hybrid tuplip, Apeldroorn figure. Agronomy Journal in Agriculture and Gardening 73:58-64. (In Persian with English summary).
17
18- Klimeš L., Klimešova J., and Osbornova J. 1993. Regeneration capacity and carbohydrate reserves in a clonal plant Rumex alpinus: effect of burial. Vegetatio 109:153–160
18
19- Nelson K.A., and Renner K.A. 2002. Yellow nutsedge (Cyperus esculentus) control and tuber production with glyphosate and ALS inhibiting herbicides. Weed Technol 16: 512-519.
19
20- Siriwardana G., and Nishimoto R.K. 1987. Propagules of purple nutsedge (Crperus rotundus) in soil. Weed Technology 1:217-220.
20
21- Wearingen J. 2004.WeedUS: Database of Invasive Plants of Natural Areas in the U.S. (In progress).http://www.nps.gov/plants/alien.
21
22- Webester R.D., and Benedixen L.E. 1987. Year- round management of yellow nutsedge (Cyperus esculentus) with or without polyethylene mulch. Weed Science 53:839-845.
22
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات دُزهای کاهش یافته بروموکسینیل+تو، فور-دی و کود نیتروژن بر عملکرد گندم (Triticum aestivum L.) در رقابت با پنیرک (Malva neglecta Wallr.)
درک ارتباط بین کود و علفکش در شرایط وجود رقابت میان محصول و علفهرز قادر است به عنوان ابزاری جهت پیشبینی عملکرد محصول و کمک به تصمیم گیری برای کاربرد بهینه کود نیتروژن و علفکش باشد. با این هدف آزمایشی به صورت کرتهای خرد شده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان در پاییز سال 1395 اجرا شد. فاکتورهای آزمایش شامل کود نیتروژن به عنوان کرتهای اصلی در 5 سطح 0، 75، 150، 225 و 300 کیلوگرم در هکتار از منبع کود اوره و دُز علفکش بروموکسنیل+ تو، فور-دی به عنوان کرتهای فرعی در پنج سطح 0، 25/0، 5/0، 75/0 و 1 برابر دز توصیه شده (5/1 لیتر در هکتار) بود. تراکم علفهرز پنیرک به تعداد 50 بوته در متر مربع در تمامی کرتها ثابت نگه داشته شد. همچنین، برای توصیف عملکرد گندم از مدل سیگموئیدی چهار پارامتری و برای توصیف تغییرات تعداد و وزن بذر علف هرز پنیرک در دزهای کاهش یافته علفکش و سطوح مختلف کود اوره از معادله توانی سه پارامتری استفاده شد. عملکرد دانه گندم در پاسخ به افزایش دُز علفکش و کاهش توان رقابتی پنیرک در سطوح مختلف مصرف کود اوره افزایش نشان داد. بر اساس پیشبینی مدل ترکیبی، با کاربرد 300 کیلوگرم کود اوره در هکتار به همراه 375/0، 60/0، 75/0، 05/1، 35/1 و 5/1 لیتر در هکتار علفکش، عملکرد دانه به ترتیب 202، 277، 329، 408، 443 و 450 گرم در متر مربع برآورد شد. تعداد بذر پنیرک در شرایط مصرف مقادیر بیشتر کود نیتروژن و دُزهای کمتر بروموکسینیل+ تو، فور-دی در حداکثر و در شرایط مصرف مقادیر کم کود نیتروژن و دُزهای بیشتر بروموکسینیل+ تو، فور-دی در حداقل بود. وزن بذر پنیرک در شرایط بدون مصرف علفکش برای هر یک از سطوح مختلف نیتروژن بین 78/4 تا 87/35 گرم در متر مربع و برای تعداد بذر پنیرک تولید شده در شرایط بدون مصرف علفکش برای هر یک از سطوح کود نیتروژن بین 95/1915 تا 76/16540 بذر پنیرک در متر مربع بود. بیشترین عملکرد دانه گندم (40/515 گرم در متر مربع) با مصرف 225 کیلوگرم اوره همراه با مصرف 1 لیتر علفکش بروموکسنیل+ تو، فور-دی در هکتار به دست آمد. همچنین سطوح بالاتر کود اوره باعث کاهش عملکرد دانه گندم شد؛ این درحالی است که سطوح بالاتر اوره باعث افزایش تعداد و وزن بذر پنیرک شد.
https://jpp.um.ac.ir/article_37543_da0e61d169205d77bdbc78705a8d79e3.pdf
2019-08-23
231
243
10.22067/jpp.v33i2.79663
توان رقابتی
دز توصیه شده علفکش
مدل ترکیبی
کاظم
بوعذار
boazar.kazem@yahoo.com
1
دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان
AUTHOR
الهام
الهی فرد
e.elahifard@gmail.com
2
فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
عبدالرضا
سیاهپوش
siahpooshabdolreza@gmail.com
3
استادیار گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان
AUTHOR
1- Askew S.D., and Wilcut J.W. 2002. Ladysthumb interference and seed production in cotton. Weed Science 50: 326-332.
1
2- Blackshaw R.B., Semach G., and Janzen H.H. 2002. Fertilizer application method affects nitrogen uptake in weeds and wheat. Weed Science 50: 634- 641.
2
3- Derakhshan A., Siadat S.A., and Bakhshandeh A. 2018. Modeling the interaction of herbicide doses and nitrogen fertilizer on crop and weed biomass production in multiple weed species-wheat interference. Journal of Crop Production 11:169-184. (In Persian with English abstract)
3
4- Evans S.P., Knezevic S.Z., Lindquist J.L., and Shapiro C.A. 2003a. Influence of nitrogen and duration of weed interference on corn growth and development. Weed Science 51: 546-556.
4
5- Evans S.P., Knezevic S.Z., Lindquist J.L., Shapiro C.A., and Blankenship E.E. 2003b. Nitrogen application influences the critical period for weed control in corn. Weed Science 51: 408- 417.
5
6- Ghorbanpour E., Ghaderifar F., and Gherekhloo J. 2014. Effect of row spacing on competition of velvetleaf (Abutilon theophrasti Medic.) with cotton (Gossypium hirsutum L.). Journal of Crop Production and Processing 12: 285-294. (In Persian with English abstract)
6
7- Kim D.S., Marshall E.J.P., Brain P., and Caseley J.C. 2006a. Modelling the effects of sub-lethal doses of herbicide and nitrogen fertilizer on crop–weed competition. Weed Research 46: 492–502.
7
8- Kim D.S., Marshall E.J.P., Caseley J.C., and Brain P. 2006b. Modelling interactions between herbicide and nitrogen in terms of weed response. Weed Research 46: 480-491.
8
9- Kim D.S., Marshall E.J.P., Caseley J.C., and Brain P. 2006c. Modelling interactions between herbicide dose and multiple weed species interference in crop–weed competition. Weed Research 46: 175–184.
9
10- Liphadzi K.B., and Dille J.A. 2006. Annual weed competitiveness as affected by preemergence herbicide in corn. Weed Science 54: 156-165.
10
11- Moosavi K., Nassiri Mahalati M., Rahimiyan H., Ghanbari A., Banayan M., and Rashed Mohasel M.H. 2004. Seed rate and nitrogen fertilizer effects on wild mustard (Sinapis arvensis L.) and winter wheat (Triticum aestivum L.) competition. Iranian Journal of Crop Science 2: 107-120. (In Persian with English abstract)
11
12- Ngouajio M., McGiffen Jr. M.E., and Hembree K.J. 2001. Tolerance of tomato cultivar to velvetleaf interference. Weed Science 49: 91-98.
12
13- O’Donovan J.T., and Blackshaw R.E. 1997. Effect of volunteer barly (Hordeum vulgare L.) interference on field pea (Pisum sativum L.) yield and profitability. Weed Science 45: 249-255.
13
14- O’Donovan J.T., Blackshaw R.E., Haker K.N., Clayton G.W., Moyer J.R., Dosdall L.M., Maurice D.C., and Turkington T.K. 2007. Integrated approaches to managing weeds in spring sown crops in western Canada. Crop Protection 26: 390-398.
14
15- Roberts J.R., Peeper T.F., and Solie J.B. 2001. Wheat (Triticum aestivum) row spacing, seeding rate and cultivar affect interference from rye (Secale cereale). Weed Technology 15: 19-25.
15
16- Saadatian B., Kafi M., Soleymani F., and Ahmadvand G. 2013. Evaluating empirical models to predict yield loss of winter wheat (Triticum aestivum L.) cultivars in interference with feral rye (Secale cereale). Cereal Research 3: 69-82. (In Persian with English abstract)
16
17- Werner E.L., Curran W.S., Harper J.k., RoTh G.W., and Knieevel D.P. 2004. Velvetleaf (Abutilon theophrasti) interference and seed production in corn silage and grain. Weed Technology 18: 779-783.
17
18- Willenborg C.J., May W.E., Gulden R.H., Lafond G.P., and Shirtliffe S.J. 2005. Influence of wild oat (Avena fatua) relative time of emergence and density on cultivated oat yield, wild oat seed production, and wild oat contamination. Weed Science 53: 342-352.
18
19- Yaghoobi S.R., Ghalavand A., Aghaalikhani M., and Zand E. 2011. Investigation of herbicide-nitrogen interaction on wheat yield and yield components in competition with Lepyrodiclis holosteoides Fenzl. Iranian Journal of Weed Science 7: 1-18. (In Persian with English abstract)
19
20- Yenish J.P., and Young F.L. 2004. Winter wheat competition against jointed goatgrass (Aegilops cylindrica) as influenced by wheat plant height, seeding rate, and seed size. Weed Science 52: 996- 1001.
20
21- Yin X., Goudriaan J., Latinga E.A., Vos J., and Spietrz H.J. 2003. A flexible sigmoid function of determinate growth. Annals of Botany 91: 361-371.
21
22- Zand E., Baghestani M.A., Nezam Abadi N., Shimi P., and Mousavi S.K. 2017. A Guide to Chemical Control of Weeds in Iran. Jahad-e Daneshgahi Mashhad Publication. (In Persian)
22
23- Zarinjoub H., Gharineh M.H., Gherekhloo J., and Elahifard E. 2018. Quatifying the effects of herbicide dose and wild mustard (Sinapis arvensis L.) density on wheat and weed biomass production. Journal of Plant Protection 31: 628-638. (In Persian with English abstract)
23