ORIGINAL_ARTICLE
آنالیز بیان تعدادی از ژنهای دفاعی در ژنوتیپ حساس و متحمل ذرت در پاسخ به آلودگی ویروس موزاییک کوتولگی ذرت
ویروس موزاییک کوتولگی ذرت (Maize dwarf mosaic virus, MDMV) یکی از بیماریهای رایج و محدودکننده رشد در ذرت بشمار میرود. در این پژوهش به منظور بررسی نقش مقاومت ژنتیکی در القاء مقاومت دو ژنوتیپ حساس (SC705) و هیبرید متحمل (شماره 8) به MDMV، بیان تعدادی از ژنهای مرتبط با مقاومت شامل Germin like protein (GLP)، Peroxiredoxin (Prx), GF14-6 و S-adenosylmethionine synthase (SAMS) با استفاده از روش سنجش کمی در زمان واقعی مورد بررسی قرار گرفت. مایهزنی گیاهان با ویروس به روش مکانیکی و در سه تکرار انجام شد. نمونهبرداری در پنج بازه زمانی انجام شد. آنالیز بیان ژنها نشان داد که بیان همه ژنهای مورد بررسی در گیاه ذرت متحمل نسبت به حساس افزایش قابل ملاحظهای داشته است. اما بیشترین بیان در مورد دو ژن GLP و Peroxiredoxin در بازه زمانی یک ساعت بعد از مایهزنی مشاهده گردید و برای ژنهای SAMS و GF14-6 بیشترین میزان بیان ژن در بازه زمانی 24 ساعت بعد از مایهزنی ثبت شد. کمترین میزان بیان برای ژنهای بررسی شده 72 ساعت بعد از مایهزنی ویروس مشاهده گردید. با توجه به نتایج به دست آمده و الگوی متفاوت بیان ژنهای مورد بررسی در گیاهان حساس و متحمل میتوان از این ژنها به عنوان بیومارکرهای مولکولی در جهت انتخاب ارقام مقاوم به بیماری استفاده نمود.
https://jpp.um.ac.ir/article_37344_625f72d456dfe3a8b7dad7818de8861e.pdf
2019-02-20
449
461
10.22067/jpp.v32i4.66848
بیان ژن در زمان واقعی
مقاومت ژنتیکی
مهندسی ژنتیک
ویروس موزاییک کوتولگی ذرت
فروه السادات
مصطفوی
farveh_mostafavy@yahoo.com
1
دانشگاه زابل
AUTHOR
سید کاظم
صباغ
sksabbagh@uoz.ac.ir
2
یزد
LEAD_AUTHOR
احد
یامچی
yamchi@gau.ac.ir
3
گرگان
AUTHOR
سعید
نصرالله نژاد
s.nasrollahnejad@gau.ac.ir
4
دانشیار دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
ناصر
پنجه که
naserpanjehkeh@gmail.com
5
زابل
AUTHOR
1. Agrios G. 2005. Plant Pathology. 5th Edition. Academic press, USA.
1
2. Adhikari T.B., Balaji B., Breeden J., and Goodwin S.B. 2007. Resistance of wheat to Mycosphaerella graminicola involves early and late peaks of gene expression. Physiological and Molecular Plant Pathology, 71: 55-68.
2
3. Beaulieu A., Williams N., and Patience J. 2009. Response to dietary digestible energy concentration in growing pigs fed cereal grain-based diets. Journal of Animal Science, 87: 965-976.
3
4. Campo S., Peris-Peris C., Montesinos L., Penas G., Messeguer J., and San Segundo B. S. 2012. Expression of the maize ZmGF14-6 gene in rice confers tolerance to drought stress while enhancing susceptibility to pathogen infection. Journal of Experimental Botany, 63(2): 983-99.
4
5. Chen F., Li Q., Sun L., and He Z. 2006. The rice 14-3-3 gene family and its involvement in responses to biotic and abiotic stress. DNA Research, 13: 53–63.
5
6. Cheng J., Chen J., and Chen J. 2002. The complete sequence of a Sugarcane mosaic virus isolate causing Maize dwarf mosaic disease in China. Journal of Science in China, 45: 322-330.
6
7. Chevalier D., Morris E.R., and Walker J.C. 2009. 14-3-3 and FHA domains mediate phosphoprotein interactions. Annual Review of Plant Biology, 60: 67-91.
7
8. Converse R.H., and Martin R.R. 1990. ELISA methods for plant viruses. APS Press. pp. 179-196.
8
9. Denison F. C., Paul A. L., Zupanska A. K., and Ferl R. J. 2011. 14-3-3 proteins in plant physiology. Seminars in Cell and Developmental Biology, 22:720–727.
9
10. Dietz K. J. 2008. Redox signal integration: from stimulus to networks and genes. Plant Physiology, 133: 459-468.
10
11. Fomenko D.E., Koc A., Agisheva N., Jacobsen M., Kaya A., Malinouski M., Rutherford J.C., Siu K.C., Jin D.Y., Winqe D.R., and Gladyshev V.N. 2011. Thiol peroxidases mediate specific genome-wide regulation of gene expression in response to hydrogen peroxide. Proceedings of the National Academy of Sciences, 108: 2729-2734.
11
12. Garcia-Arenal F., Fraile A., and Malpica J.M. 2001. Variability and genetic structure of plant virus populations. Annual Review of Phytopathology, 39: 157-186.
12
13. Gomez-Gomez L., and Carrasco P. 1998. Differential Expression of the S-Adenosyl-L-Methionine Synthase Genes during Pea Development. Plant Physiology, 117: 397–405.
13
14. Gucciardo S., Wisniewski J., Brewin N., and Bornemann S. 2006. A germin-like protein with superoxide dismutase activity in pea nodules with high protein sequence identity to a putative rhicadhesin receptor. Journal of Experimental Botany, 1-11.
14
15. Godfray H.C.J., Beddington J.R., Crute I.R., Haddad L., Lawrence D., Muir J.F., Pretty J., Robinson S., Thomas S.M., and Toulmin C. 2010. Food security: the challenge of feeding 9 billion people. Science, 327: 812-818.
15
16. Cueto-Ginzo I., Serrano L., Sin E, Rodriguez R., Morales J., Lade S., Medina V., and Achon M. 2016. Exogenous salicylic acid treatment delays initial infection and counteracts alterations induced by Maize dwarf mosaic virus in the maize proteome. Physiological and Molecular Plant Pathology, 96: 47-59.
16
17. Hao Z., Wang L., and Tao R. 2010. Defense genes and antioxidant enzymes in stage-dependent resistance to rice neck blast. Journal of Plant Pathology, 92(3): 747-752
17
18. Hao Z., Wang L., Huang F., and Tao R. 2012. Expression of defense genes and antioxidant defense responses in rice resistance to neck blast at the preliminary heading stage and full heading stage. Plant Physiology and Biochemistry. 57: 222-230.
18
19. Haslekas C., Viken M.K., Grini P. E., Nygaard V., Nordgard S.H., Meza T.J., and Aalen R.B. 2003. Seed 1-Cysteine Peroxiredoxin Antioxidants Are Not Involved in Dormancy, but Contribute to Inhibition of Germination during Stress. Plant Physiology, 133: 1148–1157.
19
20. Huang Z., Yeakley J.M., Garcia E.W., Holdridge J.D., Fan J.B., and Whitham S.A. 2005. Salicylic acid-dependent expression of host genes in compatible Arabidopsis -virus interactions. Plant Physiology, 137: 1147–1159.
20
21. Konagaya K.I., Matsushita Y., Kasahara M., and Nyunoya H. 2004. Members of 14-3-3 protein isoforms interacting with the resistance gene product N and the elicitor of Tobacco mosaic virus. Journal of General Plant Pathology, 70: 221–231.
21
22. Lu G., DeLisle A. J., Vetten N.C., and Ferl R.J. 1992. Brain proteins in plants: An Arabidopsis homolog to neurotransmitter pathway activators is part of a DNA binding complex. Proceedings of the National Academy of Sciences, 89: 11490–11494.
22
23. Ludmerszki E., Almasi A., Racz I., Szigeti Z., Solti A., Olah C., and Rudnoy S. 2015. S-methylmethionine contributes to enhanced defense against Maize dwarf mosaic virus infection in maize. Brazilian Journal of Botany, 38(4):771–782.
23
24. Manosalva P.M., Davidson R.M., Xiaoyuan Zhu B.L., Hulbert S.H., Leung H., and Leach J. N. 2009. A Germin-Like Protein Gene Family Functions as a Complex Quantitative Trait Locus Conferring Broad-Spectrum Disease Resistance in Rice. Plant Physiology, 149: 286- 296.
24
25. Oh C.S., Pedley K.F., and Martin G.B. 2010. Tomato 14-3-3 protein 7 positively regulates immunity-associated programmed cell death by enhancing protein abundance and signaling ability of MAPKKK α. The Plant Cell, 22:260-272.
25
26. Park Ch.J., An J., Shin Y., Kim K., Lee L., and Paek K. 2004. Molecular characterization of pepper germin-like protein as the novel PR-16 family of pathogenesis-related proteins isolated during the resistance response to viral and bacterial infection. Planta, 219: 797–806.
26
27. Patnaik D., and Khurana P. 2001. Germin and Germin like protein: an overview. Indian Journal of Experimental Biology, 39:191-200.
27
28. Pfaffl M.W. 2001. A new mathematical model for relative quantification in real-time RT–PCR. Nucleic Acids Research, 29:2002–2007.
28
29. Ravanel S., Gakiere B., Job D., and Douce R. 1998. The specific features of methionine biosynthesis and metabolism in plants. Proceedings of the National Academy of Sciences, 95: 7805–7812
29
30. Rose R., Erdmann S., Bovens S., Wolf A., Rose M., Hennig S., Waldmann H., and Ottmann C. 2010. and Identification and structure of small molecule stabilizers of 14-3-3 protein interaction. Angewandte Chemie International Edition, 49: 4129-4132.
30
31. Shukla D.D., Jilka J., Tosic M., Ford R.E., Toler R.W., and Langham M.989. Taxonomy of potyviruses infecting maize, sorghum and sugarcane in Australia and the United States as determined by reactivities of polyclonal antibodies directed towards virus-specific N-termini of coat proteins. Phytopathology, 79: 223-229.
31
32. Takusagawa F., Kamitori Sh., Misaki Sh., and Markham G.D. 1996. Crystal Structure of S Adenosylmethionine Synthetase. The Journal of Biological Chemistry, 271(1): 136–140.
32
33. Tobias I., Bakardjieva N., and Palkovics L. 2007. Comparison of Hungarian and Bulgarian isolates of Maize dwarf mosaic virus. Journal of Cereal Research Communications, 35(4): 1643-1651.
33
34. Tripathi B.N., Bhatt I., and Dietz K.J. 2009. Peroxiredoxins: A less studied component of hydrogen peroxide detoxification in photosynthetic organisms. Protoplasma, 235: 3-15.
34
35. Trzmiel K., and Jezewska M. 2008. Identification of Maize dwarf mosaic virus in Maize in Poland. Plant Disease, 92(6): 981-992. Abstract.
35
36. Uzarowska A., Dionisio G., Sarholz B., Piepho H.P., Xu M., Ingvardsen C.R., Wenzel G., and Lubberstedt T. 2009. Validation of candidate genes putatively associated with resistance to SCMV and MDMV in maize (Zea mays L.) by expression profiling. BMC Plant Biology, 9: 1-15.
36
37. Wei T., Huang T.S., McNeil J.F., Laliberte J.F., Hong J., Nelson R.S., and Wang A. 2010. of the Sequential recruitment endoplasmic reticulum and chloroplasts for plant potyvirus replication. Journal of Virology, 84: 799–809.
37
38. Williams M.M., and Pataky J.K. 2012. Interactions between maize dwarf mosaic and weed interference on sweet corn. Field Crop Research, 128: 48–54.
38
39. Wu L., Wang S., Chen X., Wang X., and Wu L. 2013. Proteomic and Phytohormone Analysis of the Response of Maize (Zea mays L.) Seedlings to Sugarcane Mosaic Virus. PLoS ONE, 8(7): 1-17.
39
40. Zimmermann G., Baumlein H., Mock H., Himmelbach A., and Schweizer P. 2006. The multigene family encoding germin-like proteins of barley: regulation and function in basal host resistance. Plant Physiology, 142: 181–19.
40
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تولید آنزیم کیتیناز در چندین جدایهی قارچ فوزاریوم جدا شده از نماتد سیست طلایی سیبزمینی (Globodera rostochiensis)
کیتین ترکیب غالب دیواره تخم نماتدها از جمله نماتدهای سیستی میباشد و کیتینازها به عنوان آنزیمهای تجزیهکنندهی کیتین در دامنه وسیعی از موجودات از جمله قارچها وجود دارند. در این پژوهش میزان فعالیت کیتینازی 16 جدایهی قارچ فوزاریوم جدا شده از نماتد سیست طلایی سیبزمینی Globodera rostochiensis مورد بررسی قرار گرفت. بر اساس ویژگیهای ریختشناسی و تعیین توالی نواحی ITS از DNA ریبوزومی، 16 جدایهی مذکور شناسائی و سه گونهی Fusarium solani، F. oxysporum و F. equiseti را شامل شدند. از بین این جدایهها، جدایه F12 با فعالیت ویژه 02/1 واحد بر میلیگرم (U/mg) به عنوان فعالترین و جدایه F15 با فعالیت ویژه 4/0 واحد بر میلیگرم به عنوان ضعیفترین جدایه تعیین شدند. با توجه به نتایج به دست آمده میتوان از جدایههای فعال مورد بررسی در این مطالعه، در کنترل بیولوژیک نماتد سیست طلایی سیبزمینی استفاده نمود. همچنین شرایط بهینه جهت تولید آنزیم کیتیناز در جدایههای F12 و F15 مورد مطالعه قرار گرفت که عبارت بودند از: 6pH=، زمان 96 ساعت کشت قارچ در دمای °C25 و زمان مناسب برای انجام واکنش بین آنزیم و سوبسترا به مدت یک ساعت.
https://jpp.um.ac.ir/article_37351_3a8e6b3f507ab0c9961d2afda3060f29.pdf
2019-02-20
463
479
10.22067/jpp.v32i4.66605
واژه های کلیدی: ایزوزایم
سوبسترا
کنترل بیولوژیک
واکنش آنزیمی
خدیجه
عباسی
ma_sarine86@yahoo.com
1
بوعلی سینا
LEAD_AUTHOR
دوستمراد
ظفری
zafari_d@yahoo.com
2
بوعلی سینا
AUTHOR
1. Bradford M.M. 1976. A rapid and sensitive method for quantification of microgram. Analytical Biochemestry, 72: 248–254.
1
2. Brodie B.B. 1984. Nematode parasites of potato. In: Nickle W.R. (ed.): Plant and Insect Nematodes. Marcell Dekker, Inc, New York and Basel, Pp:169–181.
2
3. Chen S.Y., Dickson D.W., and Whitty E.B. 1996. Fungi associated with egg masses of Meloidogyne incognita and M. javanica in a Florida tobacco field. Nematropica, 26(2): 153–157.
3
4. Dackman C. 1990. Fungal parasites of the potato cyst nematode Globodera rostochiensis: isolation and reinfection. Journal of Nematology, 22(4): 594–597.
4
5. Dong J.Y., Zhao Z.X., Cai L., Liu S.Q., Zhang H.R., Duan M., and Zhang K.Q. 2004. Nematicidal effect of fresh water fungal cultures against the pine-nematode, Bursaphelenchus xylophilus. Fungal Diversity, 15: 125–135.
5
6. Ibrahim G.H., Al Rehiayani S.M., and Bellal M.M. 2009. Use of biocontrol fungi, Bacillus thuringiensis and organic soil amendment to control root-knot nematode (Meloidogyne incognita) in tomato and eggplant. Mansoura University Journal of Agricultural Sciences, 34 (11):10761–10770.
6
7. Kok C.J., Papert A., and Hok A Hin C.H. 2001. Microflora of Meloidogyne egg masses: species composition, population density and effect on the biocontrol agent Verticillium chlamydosporium. Nematology, 3(8): 729–734.
7
8. Liu T., Wang L., Duan Y. X., and Wang X. 2008. Nematicidal activity of culture filtrate of Beauveria bassiana against Meloidogyne hapla. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 24: 113–118.
8
9. Manzanilla Lopez R.H., Esteves I., Fintti Sialer M.M., Hirsch P.R., Ward E., Devonshire J., and Hidalgo Diaz L. 2013. Pochonia chlamydosporia: Advances and challenges to improve its performance as a biological control agent of sedentary endo-parasitic nematodes. Journal of Nematology, 45(1): 1–7.
9
10. Monreal J., and Reese E.T. 1969. The chitinase of Sarratia marcescens. Canadian Journal Microbiology, 15:689–696.
10
11. Nicol J.M., Turner S.J., Coyne D.L., den Nijs L., Hockland S., and Tahna Maafi Z. 2011. Current nematode threats to world agriculture. In Jones, J., Gheysen, G., and Fenoll, C (Eds.), Genomics and molecular genetics of plant-nematode interactions. Springer Science + Business Media, Pp. 21–43.
11
12. Pereira L., Noronha E.F., Miller R.N. G., and Franco O.L. 2007. Novel insights in the use of hydrolytic enzymes secreted by fungi with biotechnological potential. Letters of Applied Microbiology, 44: 573–581.
12
13. Ruanpanun P., Tangchitsomkid N., Hyde KD., and Lumyong S. 2010. Actinomycetes and fungi isolated from plant-parasitic nematode infested soils: screening of the effective biocontrol potential, indole-3-acetic acid and siderophore production. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 26: 1569–1578.
13
14. Safari Motlagh M.R., and Samimi Z. 2013. Evaluation of Trichoderma spp.as biological agents in some of plant pathogens. Annals of Biological Research, 4(3): 173–179.
14
15. Saifullah and Thomas B.J. 1996. Studies on the parasitism of Globodera rostochiensis by Trichoderma harzianum using low temperature scaning electron microscopy. International Journal of Nematology, 6: 117–122.
15
16. Saifullah., and Naqibullah khan. 2014. Low temperature scanning electron microscopic studies on the interaction of Globodera rostochiensis woll and Trichoderma harzianum rifai. Pakistan Journal of Botany, 46(1): 357–361.
16
17. Sankaranarayanan C., Hussaini S. S., Kumar P. S., and Rangeswaran R. 2002. Parasitism of Meloidogyne incognita eggs by Fusarium oxysporum and other fungi. Indian Journal of Nematology, 32: 1 (Abstract).
17
18. Santos MC., Esteves I., Kerry B., and Abrantes I. 2013. Biology, growth parameters and enzymatic activity of Pochonia chlamydosporia isolates from potato cyst and root-knot nematodes. Nematology, 15: 493–504.
18
19. Seifert K. 1996. FusKey: Fusarium interactive key. Agriculture and Agri-Food Canada, Research Branch, Eastern Cereal & Oilseed Research Centre.
19
20. Seyedasli N., Zamani M., Motallebi M., and Harghighi M.J. 2004. The study of chitinase production in Trichoderma fungus. Iran Biology, 17(3): 227–246.
20
21. Sharon E., Bar Eyal M., Chet I., Herrera E., Strella A., Klelfeld O., and Splege, Y. 2001. Biological control of the root-knot nematode Meloidogyne javanica by Trichoderma harzianum. Phytopathology, 91: 687–693.
21
22. Sharon E., Chet I., and Spiegel Y. 2009. Improved attachment and parasitism of Trichoderma on Meloidogyne javanica in vitro. European Journal of Plant Pathology, 123: 291–299.
22
23. Szabo M., Csepregi K., Galber M., Viranyi F., and Fekete C. 2012. Control plant-parasitic nematodes with Trichoderma species and nematode-trapping fungi: the role of chi18-5 and chi18-12 genes in nematode egg-parasitism. Biological Control, 63: 121–128.
23
24. Tikhonov V.E., Lopez Llorca L.V., Salinas J., and Jansson H.B. 2002. Purification and characterization of chitinases from the nematophagous fungi Verticillium chlamydosporium and V. suchlasporium. Fungal Genetics and Biology, 35: 67–78.
24
25. Verdejo Lucas S., Ornat C., Sorribas F.J., and Stchiegel A. 2002. Species of root-knot nematodes and fungal egg parasites recovered from vegetables in Almeria and Barcelona, Spain. Journal of Nematology, 34 (4): 405–408.
25
26. White T.J., Bruns T.D., Lee S., and Taylor J. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: Innis MA., Gelfand D.H., Sninsky J.J., and White T. J (eds) PCR protocols, a guide to methods and applications. San Diego, California: Academic Press, 315–322.
26
27. Zeilinger S., Galhaup C., Payer K., Woo S.L., Mach R.L., Fekete C., Lorito M., and Kubicek C.P. 1999. Chitinase gene expression during mycoparasitic interaction of Trichoderma harzianum with its host. Fungal Genetics and Biology, 26: 131–140.
27
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین زمان مناسب استفاده از قارچکشها جهت مهار بیماری لکه خرمایی گندم بر اساس مراحل رشدی گیاه
بیماری لکه خرمایی (Pyrenophora tritici-repentis) یکی از بیماریهای برگی مخربی است که در شرایط اپیدمی خسارت قابل توجهی به گندم وارد میکند و استفاده از قارچکشها، روش سریع کنترل این بیماری در سالهای اپیدمی میباشد. بدین منظور آزمایشی در مزرعه در قالب طرح کرتهای خرد شده (با پایه بلوکهای کامل تصادفی) در چهار تکرار طراحی گردید. عامل اصلی آزمایش را ارقام (کوهدشت و کریم) و عامل فرعی را تیمارهای سمپاشی با قارچکشهای رایج منطقه شامل تیلت، فولیکور، فالکن و رکس دو به ترتیب در چهار زمان T0(مرحله اوایل ساقهروی تا تشکیل گره 1)، T1(مرحله تشکیل گره 3-2)، T2 (مرحله ظهور کامل برگ پرچم) و T3 (مرحله گلدهی) تشکیل دادند. در این بررسی، تیمارهای سمپاشی از مرحله ظهور کامل برگ پرچم تا گلدهی (تیمارهای Tr3، Tr5، Tr6، Tr8 و Tr9)، مقدار AUDPC-I را در رقم کوهدشت بین 5/80-1/42 درصد و در رقم کریم بین 6/76-3/33 درصد کاهش دادند در حالیکه مقدار AUDPC-S به ترتیب در رقمهای کوهدشت و کریم بین 47- 7/30 درصد و 58-33 درصد کاهش یافت. بیشترین درصد افزایش عملکرد نیز در تیمارهای مرحله ظهور کامل برگ کامل پرچم تا گلدهی وجود داشت که بهترتیب در رقمهای کوهدشت و کریم بیش 36 درصد (2/1071 تا 9/1298 کیلوگرم در هکتار) و 34 درصد (5/1054 تا 8/1313 کیلوگرم در هکتار) افزایش عملکرد مشاهده شد. بر اساس نتایج بدست آمده، تیمار Tr(یکبار سمپاشی در زمان T2)، مناسبترین تیمار از نظر زمان استفاده قارچکش جهت کاهش تعداد دفعات سمپاشی و فشار بیماری، افزایش عملکرد و سود اقتصادی بود.
https://jpp.um.ac.ir/article_37361_63b8ee65d3471369c0697d6c96b07101.pdf
2019-02-20
481
494
10.22067/jpp.v32i4.71983
تیمارهای سمپاشی
گندم
لکه خرمایی
مرحله رشدی
Pyrenophora tritici-repentis
مصطفی
عابدی تیزکی
m.abeditizaki@gmail.com
1
مرکز تحقیقات و نوآوری سازمان اتکا
LEAD_AUTHOR
کوروش
رضاپور
rezapour@gmail.com
2
سازمان اتکا
AUTHOR
محمد علی
اقاجانی
aghajani@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
فرداد
اسدی
f.asadi@yahoo.com
4
هلدینگ مزارع نوین ایرانیان، شرکت سهامی مزرعه نمونه
AUTHOR
سیاوش
سلیمیان
salimian.s@yahoo.com
5
هلدینگ مزارع نوین ایرانیان، شرکت سهامی مزرعه نمونه، گرگان
AUTHOR
1. Abbasi A. 2011. Chemical control of tan spot disease of wheat in Mazandaran province. Thesis of MS, Agriculture Faculty, Azad University of Damghan.
1
2. Abbasi A., Forutan M., and Pirnia M. 2010. Study of the effect of some fungicides recorded on control of wheat tan spot. Proceedings of the 19th Iranian plant Protection Congress, 31-3 Jul. – Aug. 2013, Tehran, Iran.
2
3. Aghajani M.A. 2013. Guide to identifying and managing wheat diseases in Golestan province. Norozi press. 124 p.
3
4. Aghajani M.A., Bagherani N., and Mottaki A. 2010. Chemical control of tan spot in golestan province. Proceedings of the 19th Iranian plant Protection Congress, 31-3 Jul. – Aug. 2013, Tehran, Iran.
4
5. Aghajani M.A., and Talie F. 2007. Technical Journal of Tan Spot of Wheat. Technical Publishing and Scientific Group of Research Center Agriculture and Natural Resources of Golestan Province. 20 pp.
5
6. Addaghi M., Abbasi A., and Pirnia M. 2016. Study of the effect of some fungicides recorded on control of Tan Spot of Wheat. Applied research in Plant Potection, 5(2):81-93. (In Persian with English abstract)
6
7. Bailey K.L., Gossen G.P., Watson P.R., and Derkson D. A. 2001. Effect of tillage and crop rotation on root and foliar diseases of wheat and pea in Saskatchewan from 1991 to 1998: univariate and multivariate analysis. Canadian Journal of Plant Science, 81: 789-803.
7
8. 8-CABI. 2013. Pyrenophora tritici-repentis (leaf spot ofwheat). CBI Crop Protection Compendium, 57 p.
8
9. Dehghan M.A. 2010. Investigation on the emergence and spread of wheat tan spot disease in Golestan province and evaluation of resistance of different wheat genotypes to it. Proceedings of the 19th Iranian plant Protection Congress, 31-3 Jul. – Aug. 2013, Tehran, Iran.
9
10. De Wolf E., Effertz R.J., Ali S., and Francl L.J. 1998. Vistas of tan spot research. Canadian Journal of Plant Pathology, 20: 349-370.
10
11. Duczek L.J., and Jones-Flory L.L. 1994. Effect of timing of propiconazole application on foliar disease and yield of irrigated spring wheat in Saskatchewan from 1990 to 1992. Canadian Journal of Plant Science, 74: 205–207.
11
12. Edwards J.T., Hunger R.M., and Payton M.E. 2012. Agronomic and economic response of
12
hard red winter wheat to foliar fungicide in the southern plains. Crop Management, 11(1): 1-10.
13
13. Forutan A., Dalili A., and Shayegan J. 1995. Isolation of Drechslera tritic –repentis from wheat leaf infected in Mazandaran Province. Proceedings of the 12th Iranian plant Protection Congress, 11-16 Sep. 1995, Karaj, Iran.
14
14. Harvey I.C, Craigie R.A., and McCloy B.L. 2015.The control of tan spot of wheat (caused by Pyrenophora tritici-repentis: a possible emerging disease in New Zealand. New Zealand Plant Protection, 68: 428-433.
15
15. Heger M., Oerke E.C., Dehne H.W., and Hindorf H. 2003. Evaluation of an action threshold-based IPM wheat model in Rheinland (Germany) in 1999/2001. OEPP/EPPO Bull, 33:
16
397–401.
17
16. Jørgensen L.N., and Thygesen K. 2006. Should strobilurins still be used in wheat? Danish andforeign experience. Proceedings of the 3th Danish Plant Congress, 10–11 Jan. 2006, Denmark.
18
17. Kelley K.W. 2001. Planting date and foliar fungicide effects on yield components and grain traits of winter wheat. Agronomy Journal, 93(2): 380-389.
19
18. MacLean D. 2016. Evaluating fungicide timing for leaf spot diseases of wheat and Fungicide Resistance in Pyrenophora tritici-repentis. Thesis of MS, University of Saskatchewan.
20
19. Lopez J.A., Rojas K., and Swart J. 2015. The economics of foliar fungicide applications in
21
winter wheat in Northeast Texas. Crop Protection, 67: 35–42.
22
20. Ransom J.K., and McMullen M.P. 2008. Yield and disease control on hard winter wheat
23
cultivars with foliar fungicides. Agronomy Journal, 100: 1130-1137.
24
21. Saari E., and Prescott J.M. 1975. A scale for appraising the foliar intensity of wheat diseases. Plant Disease, 59: 377–380.
25
22. Wegulo S.N., Breathnach J.A., and Baenziger P.S. 2009. Effect of growth stage on the
26
relationship between tan spot and spot blotch severity and yield in winter wheat. Crop Protection, 28: 696-702.
27
23. Wegulo S.N., Stevens J., Zwingman M.V., and Baenziger P.S. 2012. Yield response to foliar fungicide application in winter wheat. p. 227-244. In D. Dhanasekaran, N. Thajuddin, and A Paneerselvam (ed.) Fungicides for Plant and Animal Diseases. InTech press, Croatia.
28
24. Wiersma J.J., and Motteberg C.D. 2005. Evaluation of five fungicide application timings for
29
control of leaf-spot diseases and Fusarium head blight in hard red spring wheat. Canadian Journal of Plant Patholology, 27: 25-37.
30
25. Zadoks J.C., Chang T.T., and Konzak C.F. 1974. A decimal code for the growth stages of cereals. Weed Research, 14: 415-421.
31
ORIGINAL_ARTICLE
اثر عصاره استخراج شده با حلالهای مختلف در گیاه استبرق Calotropis procera (Willd) بر دموگرافی سفیدبالک پنبه Bemisia tabaci (Genn.)
در این پژوهش اثر حلالهای استون، اتانول، هگزان و متانول برای عصارهگیری گیاه استبرق بر دموگرافی سفیدبالک پنبهBemisia tabaci (Gennadius) (Hemiptera: Aleyrodidae) روی گوجه فرنگی بررسی شد. دادهها بر اساس جدول زندگی سن-مرحله دوجنسی تجزیه شدند. نتایج نشان داد که تیمار استبرق استونی بیشترین اثر را بر کاهش بقاء حشرات کامل سفیدبالک پنبه داشتند. اثر تیمارها بر نرخ ذاتی افزایش جمعیت (روز-1) ، نرخ متناهی افزایش جمعیت (روز-1) ، طول مدت زمان هر نسل (روز) و نرخ ناخالص و خالص تولید مثل (تخم/فرد) در سطح پنج درصد معنیدار بود. نرخ ذاتی افزایش جمعیت برای تیمارهای شاهد و عصارههای استونی، اتانولی، هگزانی و متانولی به ترتیب 081/0، 03/0، 045/0، 054/0 و 043/0 بر روز بود. در مورد فراسنجههای دوره تخمگذاری و تعداد کل تخم به ازای هر حشره ماده تیمار شاهد به ترتیب با مقادیر 45/2 و 131/15 در گروه بیشترین قرار گرفت و تیمار استبرق استونی با مقادیر 59/0و 093/3 در گروه کمترین قرار گرفت. در این پژوهش کلیه تیمارها در مقایسه با شاهد توانستند در کاهش دوره تخمگذاری و تعداد کل تخم به ازای هر ماده اثر داشته باشند. از بین حلالهای مختلف برای عصارهگیری، استون و متانول حلالهای بهتری برای استخراج عصارهی مؤثر بر سفیدبالک پنبه بودند و عصارهی استبرق میتواند به عنوان یک گزینهی مناسب در برنامه مدیریت تلفیقی سفیدبالک پنبه مطرح باشد.
https://jpp.um.ac.ir/article_37368_6a4139242d848789d8404f56728ea9fb.pdf
2019-02-20
495
508
10.22067/jpp.v32i4.45843
پارامترهای جمعیت
جدول زندگی
نرخ ذاتی افزایش جمعیت
نرخ متناهی افزایش جمعیت
محمد امین
سمیع
samia_aminir@yahoo.com
1
دانشگاه ولی عصر رفسنجان
LEAD_AUTHOR
مریم
نجاتی
ma_nejati1977@yahoo.com
2
دانشگاه ولی عصر
AUTHOR
مهدی
ضرابی
mzarabi@ut.ac.ir
3
دانشگاه تهران
AUTHOR
1. Abbott W.S. 1925. A method of comparing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economic Entomology, 18: 265–267.
1
2. Amjadian A.A., Arji A. and Kashi A.K. 2012. Determine the best solvent, polar and non-polar fenugreek extract with the highest concentration to the lowest since the bubble solution. First National Conference on Agriculture for Sustainable Development and Healthy Environment. (In Persian with English abstract)
2
3. Bayhan E., Ölmez-Bayhan S., Ulusoy M.R., and Brown J.K. 2005. Effect of temperature on the biology of Aphis punicae (Passerini) (Homoptera: Aphididae) on pomegranate. Enviromental Entomology, 34: 22-26.
3
4. Broadbent A.B., Foottit G.S., and Murphy G.D. 1989. Sweetpotato whitefly Bemisia tabaci (Genn.) (Homoptera: Aleyrodidae).a potential insect pest in Canada. Canadian Entomologist, 121: 1027-1028.
4
5. Calvitti M., and Remotti P.C. 1998. Host preference and performance of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) on weeds in central Italy. Enviromental Entomology, 27: 1350-1356.
5
6. Carey J.R. 1993. Applied Demography for Biologists with Special Emphasis on Insects. Oxford University Press, New York.
6
7. Chi H. 1990. Timing of control based on the stage structure of pest population: A simulation approach. Journal of Economic Entomology, 83: 1143-1150.
7
8. Chi H. 2013. TWOSEX-MSChart: A computer program for the age-stage, two-sex life table analysis. http://140.120.197.173/Ecology/Downlod/Twosex-MSChart.zip
8
9. Chi H. and Liu H., 1985. Two new methods for the study of insect population ecology. Bulletin of the Institute of Zoology, Academia Sinica, 24: 225-240.
9
10. Chi H. and Yang T.C. 2003. Two-sex life table and predation rate of Propylaea japonica Thunberg (Coleoptera: Coccinellidae) fed on Myzus persicae (Sulzer) (Homoptera: Aphididae). Enviromental Entomology, 32: 327-333.
10
11. Chi H. 1988. Life table analysis incorporating both sexes and variable development rates among individuals. Enviromental Entomology, 17: 26-34.
11
12. Cock A., Ishaya M.V., and Degheele D. 1995. Response of Buprefezin succeptible and resistant strains of Trialeurodes vaporariorum (Hom.: Aleyrodidae) to pyriproxifen and diafentiuron. Journal of Economic Entomology, 88: 763-767.
12
13. Esmaeily S., Samih M.A., Zarabi M., and Jafarbeigi F. 2014. Sublethal effects of some synthetic and botanical insecticides on Bemisia tabaci (Hem: Aleyrodidae). Journal of Plant Protection Research, 54: 171-178.
13
14. Fisher R.A. 1930. The Genetical Theory of Natural Selection. Clarendon. Press, Oxford, UK.
14
15. Forbes V.E., and Calow P. 1999. Is the per capita rate of increase a good measure of population-level effects in ecotoxicology? Environmental Toxicology and Chemistry, 18: 1544-1556.
15
16. Gerling D. 1990. Whiteflies: Their Bionomics, Pest Status and Managment. Wimborne, UK, Intercept.
16
17. Gharekhani M., Ghorbani M., Ebrahimzadeh M.A., Jafari S.M., and Sadeghi Mahoonak A.R. 2010. Compare different methods of phenolic and flavonoid compounds extraction from Urtica dioica L. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic plants, 26,3: 389-405. (In Persian with English abstract)
17
18. Gholami T., Samih M.A. and Nejati M. 2013. Effect of two extraction methods of Rubia tinctorum on mortality of cotton whitefly Bemisia tabaci (Genn.). 2nd National Congress on Medicinal Plants. Tehran- Iran, 15- 16 May, 1280
18
19. Goodman D. 1982. Optimal life histories, optimal notation, and the value of reproductive value. American Naturalist, 119:803-823.
19
20. Hajimehdipoor H., Khanavi M., Shekarchi M., Abedi Z. and Pirali Hamedani M. 2009. Investigation of the best method for extraction of phenolic compounds from Echinaceae purpurea L. (Moench). Journal of Medicinal Plants. 8:145-152. (In Persian with English abstract)
20
21. Headrick D.H., Bellows T.S., and Perring T.M. 1999. Development and reproduction of a population of Eretmocerus eremicus (Hymenoptera: Aphelinidae) on Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae). Enviromental Entomology, 28: 300-306.
21
22. Hu L.X., Chi H., Zhang J., Zhou Q., and Zhang R.J. 2010. Life table analysis of the performance of Nilaparvata lugens (Hemiptera: Delphacidae) on two wild rice species. Journal of Economic Entomology, 103:1628-1635.
22
23. Huang Y.B., and Chi H. 2012. Assessing the application of the jackknife and bootstrap techniques to the estimation of the variability of the net reproductive rate and gross reproductive rate: a case study in Bactrocera cucurbitae (Coquillett) (Diptera: Tephritidae). Journal of Agriculture and Forestry, 61: 37-45.
23
24. Irannejad M.K., Samih M.A., Talebi Jahromi K. and Alizadeh A. 2012a. The effect of some pesticides and plant extracts on functional response of Chrysoperla carnea (Stephens) to different densities of Agonoscena pistaciae . Journal of Plant Protection (Agricultural Science and Technology) 26(3): 316-326. (In Persian with English abstract)
24
25. Irannejad M.K., Samih M.A., Talebi Jahromi K., and Alizadeh A. 2012b. Investigation on the effects of some pesticides and plant extracts on life table of Chrysoperla carnea (Stephens) (Neu.: Chrysopidae). Plant protection Science 43(1): 33-46. (In Persian with English abstract)
25
26. Jafarbeigi F., Samih M. A., Zarabi M., Esmaiili S., and Izadi H. 2011. Study on susceptibility of Bemisia tabaci (Genn.) (Biotype A) to Caiotropis procera and Fumaria parviflora plant extracts in control conditions. Global Conference on Entomology-(GCE), March 5-9, Chiang Mai, Thailand, 471.
26
27. Jafarbeigi F., Samih M.A., Zarabi M., and Esmaeily S. 2014. Sublethal effects of some botanical and chemical insecticides on the cotton whitefly, Bemisia tabaci (Hem: Aleyrodidae). Arthropods, 3(3):127-137.
27
28. Jalali M., Abedi D., Asghari G. and Rezaie Z. 2007. A study of anti-microbial effect of Pycnocycla Spinosa's fruit extracts. Journal of Mazandaran University of Medical Sciences, 17(59): 76-86. (In Persian with English abstract)
28
29. Kesmati M., Raei H., and Zadkarami M. 2006. Comparison between sex hormones effects on locomotor activity behavior in presence of matricaria chamomilla hydroalcholic extract in gonadectomized male and female adult mice. Journal of Iran Biology, 19: 98-108. (In Persian with English abstract)
29
30. Koschier E.H., and Sedy K.A. 2003. Labiate essential oils affecting host selection and acceptance of Thrips tabaci lindeman. Crop Protection, 22: 929-934.
30
31. Lemos W.P., Ramalho F.S. and Zanuncio J.C. 2003. Age-dependent fecundity and life-fertility tables for Euborella annulipes (Lucas) (Dermaptera: Anisolabididae) a cotton boll weevil predator in laboratory studies with an artificial diet. Enviromental Entomology, 32: 592-601.
31
32. Liu T.X. and Stansly P.A. 1995. Life history of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) on Hibiscus rosasinensis (Malvaceae). Florida Entomologist, 81: 437-445.
32
33. Liu T.X., Stansly P.A., Hoelmer K.A. and Osborne L.S. 1997. Life history of Nephaspis oculatus (Coleoptera: Coccinellidae), a predator of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae. Annals of the Entomological Society of America, 90: 776-782.
33
34. Mahdavi Arab N., Ebadi R., Hatami B. and Talebi Jahromi Kh. 2008. Insecticidal effect of some plant extracts on Callosobrochus maculates F. in laboratory and Laphigma exigua H. in green house. Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources 11(42): 221-234. (In Persian with English abstract)
34
35. Marouf A., Sangari S. and Jabbari1 L. 2007. An investigation on fumigant effect of the extract of Origanum vulgare (Lamiales: Lamiaceae) for control of two stored-product beetles. 27:(2), 29-41. (In Persian with English abstract)
35
36. Matsumura F. 1985. Toxicology of Insecticides. Plenum Press, New York.
36
37. Nava-Camberus U., Riley D.G., and Harris M.K. 2001. Density-yield relationships and economic injury levels for Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) in cantaloupe in Texas. Journal of Economic Entomology, 94: 180-189.
37
38. Pirmohammadi M., Mahdian K., Samih M.A. and Shahidi S., 2013. Investigation on imidacloprid and plant extractions effects on stable population growth parameters of Chrysoperla carnea (Steph.). 2nd National Congress on Medicinal Plants.15, 16 May Tehran- Iran, 1196. (In Persian with English abstract)
38
39. Robertson J.L., and Preisller, H.K. 1992. Pesticide Biassays with Arthropods. CRC Press, USA.
39
40. Sae-Yun A., Ovatlarnporn C., Itharat A. and Wiwattanapatapee R. 2006. Extraction of rotenone from Derris elliptica and Derris malaccensis by pressurized liquid extraction compared with maceration. Journal of Chromatography A, 1125: 172-176.
40
41. Samareh Fekri M.S., Samih M.A., Imani S. and Zarabi M. 2013. Study of host preference and the comparison of some biological characteristcs of Bemisia tabaci (Genn) on tomato varieties. Journal of Plant Protection Research, 53: 137-142.
41
42. Samih M.A., Kamali K., Jalali-Javaran M. and Talebi A.A. 2006. Identification and disperasion of Bemisia tabaci (Genn.) and Bemisia argentifolii Bellows and Perring in cotton fields in Iran using RAPD-PCR technique. : Iranian Journal of Agricultural Sciences, 37(3): 13-25. (In Persian with English abstract)
42
43. Sanderson J.P. 1987. Sweetpotato Whitefly in New York Greenhouse. Long Island Horticultural News, Nov 1-2.
43
44. Shabani Z., Samih M.A., Irannezad M.K., and Mirzaii F. 2011. Insecticidal efficacy of acetamiprid, hexaflumuron and Calotropis procera extract on Agonoscena pistaciae Burckhardt and Lauterer under Laboratory Conditions. Global Conference on Entomology-(GCE), March 5-9,Chiang Mai, Thailand, 481.
44
45. Stark J.D. and Banks J.E. 2003. Population-level effects of pesticides and other toxicants on arthropods. Annual Review of Entomology, 48: 505-519.
45
46. Stark J.D., Sugayama R.L., and Kovaleski A. 2007. Why demographic and modeling approaches should be adopted for estimating the effects of pesticides on biocontrol agents. Biological Control, 52: 365-374.
46
47. Tsai J.H. and Wang K. 1996. Development and reproduction of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) on five host plants. Enviromental Entomology, 25: 810-816.
47
48. Viana Ramos M., Pavia Banderia G., Teixeria de Freitas C., Nogueira N., Alencar N., Sousa P. and Carvalho A. 2006. Latex constituents from Calotropis procera (R. Br.) display toxicity upon egg hatching and larvae of Aedes aegypti (Linn.). Mem Inst Oswaldo cruz, Rio de Janeiro, 101: 503-510.
48
49. Wang S.Q., Guo Y.L., Pang S.T., and Shi Z.H. 2008. Toxicities of different pesticides to B biotype Bemisia tabaci. Acta Agriculturae Zhejiangensis, 20: 367-371.
49
50. Yang T., and Chi H. 2006. Life table and development of Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) at different temperatures. Journal of Economic Entomology, 99: 691-698.
50
51. Yu J.Z., Chi H. and Chen B.H., 2005. Life table and predation of Lemnia biplagiata (Coleoptera: Coccinellidae) fed on Aphis gossypii (Homoptera: Aphididae) with a proof on relationship among gross reproduction rate, net reproduction rate and preadult survivorship. Annals of the Entomological Society of America, 98: 475-482.
51
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه روشهای مختلف کنترل کنه پیاز گلایول Rhizoglyphus echinopus (Fumouze & Robin) (Astigmata: Acaridae) در شرایط گلخانهای
یکی از مهمترین آفـات کـورم گلایـول، کنه پیاز (Astigmata: Acaridae) Rhizoglyphus echinopusمیباشد. ضدعفونی کورمها و رهاسازی کنه شکارگر از روشهای دارای پتانسیل بالقوه در کنترل این آفت محسوب میشوند. لـذا با توجه به اهمیت این آفت در کاهش کمی و کیفی محصول و همچنین اثر قابل توجه روشهای کنترل شیمیایی، فیزیکی، بیولوژیک و تلفیقی در کاهش خسارت آن، این مطالعه در قالب بلوکهای کاملاً تصادفی با 24 تیمار و سه تکرار به بررسی اثر ضدعفونی کورمها و رهاسازی کنهRaumilben (Acari: Laelapidae) aculeifer Hypoaspis (Geolaelaps) بر کنترل کنه R. echinopusروی کورم گلایول در شرایط گلخانهای پرداخته است. تیمارهای ضدعفونی شامل تیمارهای شماره ٢،١ و ٣- آبامکتین (4/0، 8/0 و 2/1 میلیلیتر بر لیتر)؛ 4، 5 و 6- اتیون (1، 5/1 و 2 میلیلیتر بر لیتر)؛ 7، 8 و 9- فنازاکوئین (5/0، 1 و 5/1 میلیلیتر بر لیتر) بودند که کورمها پیش از کاشت در هر محلول سـمی بـه مـدت ٢٥ دقیقـه غوطهور شدند. تیمارهای ١٠، 11 و 12 کورمها به مدت ٢٥، ٥٠ و ٧٥ دقیقه در آبگرم با حرارت 45 درجه سلسیوس ضدعفونی گردیدند. تیمارهای شماره 13-14 و 15 مربوط به رهاسازی کنه شکارگر aculeifer H. به تعداد 10، 20 30 کنه به ازای ١٠٠ کورم آلوده به کنه پیاز بـودند. تیمارهـای شـماره 16، 17 و 18 شـامل رهاسـازی 100، ٢٥٠ و ٥٠٠ کنه شکارگر در مترمربع پانزده روز بعد از کاشت؛ تیمارهای 19، 20 و 21- شاهد غوطهور نمودن کورمها در آب معمـولی٣٠ درجه سلسیوس بـه مـدت 25، ٥٠ و ٧٥ دقیقه؛ تیمار ٢٢ شامل آبگرم ٤٥ درجه سلسیوس به مدت ٢٥ دقیقه و سپس رهاسازی ١٠ کنه برای ١٠٠ پیاز؛ تیمار 23 شامل آبگرم ٤٥ درجه سلسیوس به مدت ٢٥ دقیقـه بـا رهاسـازی ١٠٠ کنـه شکارگر در متر مربع و تیمار 24 شامل آبگرم ٤٥ درجه سلسیوس در ٢٥ دقیقه سپس رهاسازی ١٠ کنه به ازای ١٠٠ پیاز بعلاوه رهاسازی ١٠٠ کنه شکارگر در مترمربع ١٥ روز بعد از کاشت بـود. در هر تیمار ١٥٠ کورم در نظر گرفته شد و آلودگی کورمها برآورد گردید. کرتها حاوی خاک ضدعفونی شده، پلاستیک مجزا و در هر کرت 3٠ کورم گلایول کاشته شد. نتـایج نشان داد که بیشترین شدت آلودگی در تیمارهای شاهد (شمارههای 19، 20 و 21)، کمترین شدت آلودگی در تیمارهای 22، 23 و 24؛ بیشترین تعداد تولیـد کـورم در تیمار ٢٤؛ بلندترین طول گل آذین در تیمارهای ١٣ و ٢٤؛ بلندترین میانگین ارتفاع شاخه گل در تیمارهای 24، 23 و 13؛ بیشترین قطر ساقه در تیمارهای 23، 12 و 7؛ طولانیترین طول عمر گل در تیمارهای 14، 17 و 23؛ و بیشترین درصد جوانهزنی در تیمارهای 24، 23، 22، 14، 15، 13 و 10 مشاهده شد. تعداد غنچه تحت تأثیر تیمارهای مختلف فاقد اختلاف معنیدار بود. با توجه به نتایج حاصل از این مطالعه و همچنین خصوصیات گیاه گلایول استفاده از عوامل کنترل بیولوژیک و استفاده همزمان از ضدعفونی کورمها به همراه رهاسازی کنه شکارگر جهت کاهش آلودگی و کنترل کنه R. echinopus در قالب کنترل تلفیقی آفت توصیه میگردد.
https://jpp.um.ac.ir/article_37375_46950699079b6e208f693226764774a9.pdf
2019-02-20
509
519
10.22067/jpp.v32i4.68661
گلایول
کنه پیاز
Hypoaspis aculeifer
ضد عفونی
کنترل تلفیقی
اصغر
حسینی نیا
asghar.hosseini.nia@gmail.com
1
مرکز تحقیقات کشاورزی ومنابع طبیعی استان مرکز ی
AUTHOR
سعید
جوادی خدری
javadis84@gmail.com
2
بوعلی سینا
LEAD_AUTHOR
محمد
خانجانی
alikhanjani77@gmail.com
3
بوعلی سینا
AUTHOR
احمد
حیدری
heidari419@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات گیاهپزشکی، تهران، ایران
AUTHOR
محمد کاظم
رمضانی
kazem.ramezani@gmail.com
5
موسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور
AUTHOR
هادی
مصلی نژاد
hmosalla@gmail.com
6
موسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور
AUTHOR
1. Ali W., George D.R., Shiel R.S. Sparagano O.A.E. and Guy J.H. 2012. Laboratory screening of potential predators of the poultry red mite Dermanyssus gallinae and assessment of Hypoaspis miles performance under varying biotic and abiotic conditions. Veterinary Parasitology, 187: 341-344.
1
2. Amin M.R., Khanjani M., and Zahiri B. 2014. Life table parameters of Hypoaspis aculeifer (Acari: aelapidae) in feeding on Rhizoglyphus echinopus (Acari: Acaridae). Agricultural Pest Management, 1(1): 10-22.
2
3. Amin M.R., Khanjani M. and Zahiri B. 2014. Preimaginal development and fecundity of Gaeolaelaps aculeifer (Acari: Laelapidae) feeding on Rhizoglyphus echinopus (Acari: Acaridae) at constant temperatures. Journal of Crop Protection, 3: 581-587.
3
4. Anonymous. 2009. New predator for the control of the bulb mite. http://Aculeifer-system-Biologicalsystem.htm. Received 2016, Accessed 12 March, 2012.
4
5. Baradaran P., Arbabi M., Hosseininia A., and Emami M.S. 2008. Study and importance of fauna mites of ornamental in open and close environment. Applied Entomology and Phytopathology, 21(3): 509-526. (In Farsi)
5
6. Chen J.S. and Lo K.C. 1989. Susceptibility of two bulb mites, Rhizoglyphus robini and Rhizoglyphus setosus (Acarina: Acaridae), to some acaricides and insecticides. Experimental and Applied Acarology, 6: 55-66.
6
7. Conijn C.G.M. 1992. Hot water treatment and cold storage to control the bulb mite R. robini on lily bulb, Acta Horticulture 325. Flower bulb Pp: 797-808.
7
8. Conijn C.G.M., Lesna I., and Altena K. 1997. Biological control of the bulb mite Rhizoglyphus robini by predatory mite Hypoaspis aculiefer on lilies, Implementation in practice. Proc. Int’ symp. On flower bulb, Eds. H. Lilies-Kipnis, a Borochov Acta. Hort, 430. ISHS Pp: 619-624.
8
9. Diaz A., Okabe K., Eckenrode C.J., Villani M.G., and Oconnor B.M. 2000. Biology, ecology and management of the bulb mites of the genus Rhizoglyphus echinopus (Acari: Acaridae). Experimental and Applied Acarology, 24: 85-113.
9
10. Fan Q.H., and Zhang Z.Q. 2003. Rhizoglyphua echinopus and Rhizoglyphus robini (Acari: Acaridae) from Australia and New Zealand: Identification, host plant and geographical distribution. Systematic and Applied Acarology, 16:1-16.
10
11. Gerson U. Yathom S. and Katan J. 1981. A demonstration of bulb mite control by solar heating of the soil. Publication of the Agricultural Research Organization, No.144-E. 1981series Pp. 153-155.
11
12. Hajizadeh J., Faraji F., and Rafati Fard M. 2010. Predatory mite of the family phytoseiidae of Iran. Gilan University No. 272, first Edition. 282 p. (In Persian)
12
13. Hosseininia A., and Baradaran P. 2005. Introduction of Gladiolus bulb mite Rhizoglyphus echinopus (Fumouze and Robini) as potential pest of Mahallat Gladiolus farms, Abstracts of first festival and national seminar of Iran cut flowers, 55-56 (Abst.). (In Persian).
13
14. Kasuga S., Kanno H., and Amano H. 2006. Development, oviposition, and predation of Hypoaspis aculeifer (Acari: Laelapidae) feeding on Tyrophagus similis (Acari: Acaridae). Acarological Society of Japan, 15:139-143.
14
15. Khanjani M. and Hadad Irani-Nejad K. 2009. Injurious mites of agricultural crops in Iran, 2nd edn. Bu-Ali Sina University Press Center, Hamadan.
15
16. Lesna I., Sabelis M.W., Bolland H.R. and Conijn C.G.M. 1995. Candidate natural enemies for control of Rhizoglyphus robini Claparede (Acari: Astigmata) in lily bulb exploration in the field and pre selection in the laboratory. Experimental and Applied Acarology, 19: 655-669.
16
17. Qing-Hai F., and Zhi-Qiang Z. 2003. Rhizoglyphus echinopus and Rhizoglyphus robini (Acari: Acaridae) from Australia and New Zealand, identification, host plants and geographical distribution, Systematic and Applied Acarology. Special Publication, ISSN 1461-0183 16:1-16.
17
18. Ragusa S. and Zedan M.A. 1988. Biology and predation of Hypoaspis aculeifer (Canestrini) (Parasitiformes, Dermanyssidae) on Rhizoglyphus echinopus (Fum. and Rob.) (Acariformes, Acaridae). Redia, 71: 213-225.
18
19. Rahimi H., and Arbabi M. 2006. Effectt of corm and soil acaricide treatement on the control of bulb mites (Rizoglyphus robini Claparede (Acari: Acaridae) in saffron fields of Khorasan, Iran, 2nd International Symposium on Soffron Biology and Technology, Ferdosi Unversity, 28th -30 October 2006, Mashhad, Iran, p 19.
19
20. Raymond Dr., and Cloyd A. 2013. Bulb Mites: The critters from the deep, Integrated Pest Management, 77(7).
20
21. SAS, State of the Art Statistical Institute. 2003. JMP: a guide to statistical and data analysis, Version 6. 12, Cary, Nc.
21
22. Tanaka M., and Inoue K. 2009. Studies on bionomics’ and control methods of the bulb mite, Rhizoglyphus echinopus (Fumouze and Robini) in Japanese. Japanese Society of Appled Entomolgy and Zoology, 6(1): 39-45.
22
23. Thoeming G. and Poehling H.M. 2006. Integrating soil-applied azadirachtin with Amblyseius cucumeris (Acari: Phytoseiidae) and Hypoaspis aculeifer (Acari: Laelapidae) for the management of Frankliniella occidentalis (Thysanoptera: Thripidae. Environmental Entomology, 35(3): 746-756.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع زیستی گونههای سختبالپوشان خانواده Carabidae در یک مزرعه برنج (آهنگرکلا: قایمشهر) در استان مازندران، شمال ایران
به منظور شناسایی گونههای سختبالپوشان خانواده کارابیده و تعیین فراوانی و تنوع گونهای آنها در طی یک سال زراعی (1393) چندین بار نمونه برداری با استفاده از تلههای گودالی در مراحل مختلف رشدی محصول برنج در یک مزرعه برنج (آهنگرکلا) واقع در شهرستان قائمشهر (استان مازندران) انجام گردید. نمونههای جمعآوری شده در قالب 16 گونه متعلق به 13 جنس، نه قبیله و شش زیرخانواده شناسایی گردیدند. گونههای Anisodactylus intermedius (Dejean, 1829)،Bembidion octomaculatum (Goeze, 1777)، Chlaenius amarae (Andrewes, 1920)، Elaphropus lucasi (Jacquelin da Val, 1852)، Pterostichus cursor (Dejean, 1828) و Scarites subcylindricus (Chaudoir, 1843) برای اولین بار برای فون مازندران گزارش میشوند. در بین گونههای شناساییشده، بیشترین فراوانی به ترتیب مربوط به گونههای Harpalus rufipes (DeGeer 1774) با %65/27 و Poecilus cupreus (Linnaeus 1758) با %88/25 بود که تقریباً در تمامی مراحل نمونهبرداری (رشدی گیاه برنج) در مزرعه حضور داشتند. در طول فصل رشد نا برداشت برنج بیشترین تعداد حشرات و گونههای کارابیده در هنگام رشد زایشی و خوشهدهی در مزرعه مشاهده شد هر چند که مقایسه شاخص تنوع گونهای شانون- وینر تفاوت معناداری برای تنوع گونهای نشان نداد. علاوه بر این جمعیت خانواده کارابیده یک ماه پس از برداشت برنج به شدت کاهش یافت و حداکثر فراوانی آنها دو ماه پس از برداشت برنج مشاهده شد. نتایج این تحقیق نشان میدهد که با توجه به حضور و تنوع گونهای مناسب سوسکهای کارابیده در مزرعه برنج و نیز فعالیت شکارگری این گونهها میتوان به بررسی نقش آنها در کنترل بیولوژیک آفات برنج بهویژه کرم ساقهخوار توجه نمود.
https://jpp.um.ac.ir/article_37384_2e4ce3ea4f9efc7d15ba98ff8a1b7459.pdf
2019-02-20
521
524
10.22067/jpp.v32i4.62473
برنج
سوسک
شکارگر
Carabidae
مازندران
معصومه
درویش متولی
motevalii@ymail.com
1
دانشگاه علوم کشاورزی ساری
AUTHOR
معصومه
شایان مهر
shayanm30@yahoo.com
2
دانشگاه علوم کشاورزی ساری
LEAD_AUTHOR
1. Azadbakhsh S., and Nozari. J. 2015. Checklist of the Iranian Ground Beetles (Coleoptera; Carabidae). Zootaxa, 4024(1): 1-108.
1
2. Demirsoy A. 1990. Foundation principles of life entomology. Volume II, Meteksan Company, Ankara, Turkey.
2
3. Ghahari H., and Tabari M. 2008. Predator beetles (Coleuptera) and their population fluctuation in rice fields of Mazandaran. Journal of agriculture, 10(2): 147-159. (In Persian with English abstract)
3
4. Ghahari H., Jedryczkowski W.B., Kesdek M., Ostovan H., and Tabari M. 2009. Ground beetles (Coleoptera: Carabidae) from rice fields and surrounding grasslands of Northern Iran. Journal of Biological Control, 23(2): 105-109.
4
5. Ghahari H., and Tabari M. 2010. Natural enemies in Iranian Rice fields. Ministry of Agriculture, Extension organizations, agricultural research and training, Research of Station Rice, Journal of Engineering – Science. 62pp. (In Persian with English abstract)
5
6. Lobl I., and Smetana A. 2003. Catalogue of Palaearctic Coleoptera. Volume I. Archostemata- Myxophaga- Adephaga. Apollo Books, 819 p.
6
7. Mirab-balou M., Pourian H.R., and Pishevar S. 2008. Entomology and pests management. Boundary knowledge, Iran. (In Persian)
7
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثر نوع سمپاش و دُز علفکش تری بنورون- متیل (گیاهستار) در کنترل علفهایهرز پهن برگ اراضی گندم آبی
بهمنظور ارزیابی سمپاشهای رایج و دُزهای مختلف علفکش تری بنورون- متیل در کنترل علفهایهرز پهنبرگ گندم آبی، تحقیقی در 75 کیلومتری شمال شرق مشهد واقع در مزارع روستای حکیمآباد در بهار 1393 به اجرا درآمد. قالب طرح اسپلیت پلات بر پایه بلوکهای کامل تصادفی با چهار تکرار بود. تیمارهای آزمایش شامل کاربرد 5 نوع سمپاش (الکترواستاتیک، تراکتوری لانسدار، میکرونر، پشتی اتومایزر و تراکتوری بومدار) بهعنوان عامل اصلی و کاربرد علفکش تری بنورون- متیل در مقادیر 15، 20 و 25 گرم در هکتار بهعنوان عامل فرعی بودند. نتایج آزمایش نشان داد که کاربرد سمپاش پشت تراکتوری بومدار بطور معنیداری منجر به کاهش تراکم و وزن خشک تمامی علفهایهرز شده درحالیکه سمپاش پشتی اتومایزر و تراکتوری لانسدار دارای کمترین کارایی بودند. نتایج اثر متقابل کاربرد نوع سمپاش و میزان مصرف علفکش تری بنورون- متیل نیز حاکی از برتری معنیدار سمپاش پشت تراکتوری بومدار بههمراه دُز مصرفی 25 گرم در هکتار علفکش تری بنورون- متیل در کنترل اغلب علفهایهرز پهنبرگ گندم در مقایسه با سایر تیمارها داشته و توانسته بود منجر به افزایش عملکرد گندم آبی به میزان 5050 کیلوگرم در هکتار شود. بیشترین میزان مصرف محلول سم مربوط به سمپاش تراکتوری لانسدار (8/732 لیتر در هکتار) و کمترین آن مربوط به سمپاش میکرونر (9/34 لیتر در هکتار) بود. بهترین ضریب یکنواختی پاشش متعلق به سمپاش بومدار پشتی تراکتوری (8/1 = VMD/NMD) و بعد از آن سمپاش میکرونر با ضریب پاشش (3 = VMD/NMD) تخمین زده شد. بعبارت دیگر، سمپاش پشت تراکتوری بومدار نسبت به سمپاش میکرونر دارای کیفیت پاشش یکنواختتری است. همچنین این دو سمپاش نسبت به سایر سمپاشهای مورد آزمایش دارای برتری بودند. بالاترین درصد لهیدگی محصول مربوط به سمپاش بومدار پشت تراکتوری (5/14 درصد) و کمترین آن مربوط به سمپاش میکرونر (8/2 درصد) بود. همچنین سمپاش پشت تراکتوری بومدار و میکرونر پشتی به ترتیب با 2/3 و 1/1 هکتار بر ساعت دارای بیشترین و کمترین ظرفیت مزرعه بودند.
https://jpp.um.ac.ir/article_37391_447eaf208e09c3dbf1a34ed396dc185a.pdf
2019-02-20
527
541
10.22067/jpp.v32i4.60326
پشت تراکتور بوم دار
ضریب یکنواختی پاشش
ظرفیت مزرعه
لهیدگی محصول
میکرونر
فرید
بدیع
f.badi@gmail.com
1
آزاد مشهد
AUTHOR
لیلا
علیمرادی
lealimoradi@yahoo.com
2
دانشگاه آزاد اسلامی واحد مشهد
AUTHOR
علی اصغر
چیت بند
a_a_chitband@yahoo.com
3
لرستان
LEAD_AUTHOR
سعید
جاهدی پور
s.jahedi@gmail.com
4
فردوسی مشهد
AUTHOR
1. Abasspoor M., Chitband A.A, Rajabzadeh M., and Tavakoli H. 2013. Non chemical weed control methods on pistachio (Pistachio vera) in Fezabad. Journal of Plant Protection. 27(2):222-230. (In Persian with English abstract)
1
2. Afshari M., and Bayatasadi H. 1989. Water sensitive paper and their application in sprayers calibration in Iran. Journal of Plant Pests and Diseases. 57(1): 71-75. (In Persian with English abstract)
2
3. Amirshaghaghi F. 1998. Study on the distribution of spraying in tractor boom sprayers. M.Sc. Thesis. Faculty of Agriculture. Tarbiat Modares University. Tehran. Iran. (In Persian with English abstract)
3
4. Baghestani M.A., Zand E., Soufizadeh S., Eskandari A., PourAzar R., Veysi M., and Nassirzadeh N. 2007. Efficacy evaluation of some dual purpose herbicides to control weeds in maize (Zea mays L.). Crop Protection. 26: 936-942.
4
5. Barjasteh A., and Baghestani M.A. 2008. The evaluation of some new herbicides efficiency on weeds control of wheat fields in Semnan province. P. 257-261. In Proceedings of the 8th Eighteenth Plant Protection Congress, 24-27 Agu. 2008. Bualisina University of Hamedan, Iran.
5
6. Bazoo M., Montazeri M., Fathi G.A., and Golabi M. 2005. Evaluation the effect of broadleaf herbicides and nozzle type on wild mustard (Sinapis arvensis) control in wheat. P. 393-397. In proceeding of the 2th National Congress of Weed Science Congress, 29-30 Jan. 2005. Ferdowsi University of Mashhad. (In Persian with English abstract)
6
7. Cayley G.R., Etheridge P., Griffiths D.C., Philips F.T., and Scott G.C. 1988. A review of the performance of electrostatic charged rotary atomizers on different crops. Journal of Crop Protection. 7:125-130.
7
8. Daneshjoo M. 2007. The design of software for density and particle size diameter solution with image processing. M.Sc. Thesis. Ferdowsi University Mashhad, Iran. (In Persian with English abstract)
8
9. Esehaghbeygi A., Tadayyon A., and Besharati Sh. 2010. Comparison of electrostatic and spinning-discs spray nozzles on wheat weeds control. Journal of American Science. 6(12):529-533.
9
10. Falahjedi R. 2005. Calibration of conventional sprayers in Iran. First Publish. Publications Office of Instructional Technology Services Branch. Pp. 139.
10
11. Farshad A. 1998. The use of water-sensitive cards to determine the dispersion spraying. Issue No. 42/78 Plant Protection Organization.
11
12. Gerami K., Zand E., Borgheie A., and Minaee S. 2005. Investigation of weed control using three kinds of sprayers in wheat (Triticum aestivum L.) fields. P. 531-533. In Proceeding of the 1th National Congress of Weed Science, 29-30 Jan. 2005. Tehran University of Mashhad. (In Persian with English abstract)
12
13. Ghaemmaghami A., Khademolhosaini N., and Lovaimi N. 2008. Evaluation of four mechanisms in wheat spraying. P. 423-427. In Proceedings of the 5th National Conference on Agriculture Machinary Engineering and Mehanization, 27-28 Agu. 2008. Ferdowsi University of Mashhad, Iran.
13
14. Gupta C.P., Alamban R.B., and Dante E.T. 1996. Development of knapsack electrostatic spinning-disc sprayer for herbicide application in rice. Agricultural Mechanization in Asia, Africa and Latin America 25(4): 31-34.
14
15. Hesami E., and Lorzade Sh. 2008. The Compare of electrostatic and microner sprayers in the application of apyrus herbicide in wheat. P. 368-372. In Proceedings of the 3th area congress of research findings in Agriculture and Natural Resources, 4-5 Mar. 2008. Iran.
15
16. Jalaee Sadeghyan A. 2004. Simulation of fuzzy control system for sprayers. M.Sc. Thesis. Publications Faculty of Agriculture, Euromeye, Iran. (In Persian with English abstract)
16
17. Matthews G.A. 1990. Changes in application technique used by the small scale cotton farmer in Africa. Tropical Pest Management. 36(2):166-172.
17
18. Montazeri M., Zand E., Poorazar R., Bargasteh A.R., Nourouzzadeh S., Vaici M., and Zand E. 2005. An evaluation of efficacy of four wheat selective herbicide in the control of annual dicotyledons weed. Iranian Journal of Weed Science. 1(2):155-162. (in Persian with English abstract)
18
19. Mosalaneghad H., Norian M., and Mohammadbigi A. 2002. Important of pests, diseases and weeds. Publication of Plant Protection Organization. Pp. 112.
19
20. Mousavi S.K., Zand E., and Saremi H. 2005. Physiological function and application of herbicides. Zanjan University Press P: 286. (In Persian).
20
21. Nabizade M., Abbaspoor M., and Chitband A.A. 2013. Evaluation of sweet corn cultivars to new sulfonylurea and mixtures herbicide. Cereal Research. 3(3):227-242. (In Persian with English abstract)
21
22. Najafi H., Bazoobandi M., and Bagherani N. 2008. The evaluation of the possibility of optimizing the use of sprayer equipment in wheat fields. The final report of research project number is 011-33-16-7901-79002. The Research Center of Agriculture and Natural Resources, Plant Pests and Diseases Research Institute of Khorasan Razavi P: 462. (In Persian)
22
23. Naseri M. 2008. The survey and evaluation of the factors affecting the performance of sprayer behind tractor farm turbines (Torbuliner). M.Sc. Thesis. Ferdowsi University Mashhad, Iran. (In Persian with English abstract)
23
24. Nezamabadi N., Zand E., Pourazar R., Bagherani N., and Baghestani M.A. 2007. Dose responses of some broadleaf weeds of wheat fields to different tribenuron methyl formulations. Pajouhsh & Sazandegi. 74:99-107. (In Persian with English abstract)
24
25. Parvin A., and Afshari M. 1995. The evaluation of the efficacy of pesticides based on plant density in the fight against cotton leaf honeydew. Research Institute of pests and plant diseases.
25
26. Rahimi A., Hossieni A., and Karampoor F. 2007. The evaluation of wheat herbicides. The final report of research project number is 017-48-163601-16002. The Research Center of Agriculture and Natural Resources, Plant Pests and Diseases Research Institute of Boshehr P: 48. (In Farsi). http://www.Agri dashtestan.blogfa.com.
26
27. Rashed Mohassel M.H., Najafi H., and Akbarzadeh M. 2009. Weed biology and control. Mashhad University of Jehad Press P: 404. (In Persian)
27
28. Safari M. 2008. Technical evaluation conventional and new sprayers in wheat farms in order to determination of methods and proper machine to use in different regions of country. P. 16-20. In Proceedings of the 5th National Congress of Agricultural Engineering and Mechanization, 27-28 Agu. 2008. Ferdowsi University of Mashhad, Iran.
28
29. Safari M., Amirshaghaghi F., Lovaimi N., and Chaji H. 2010. Evaluation of Conventional Sprayers in Wheat Far. Journal of Agricultural Engineering Research. 10(4):1-12.
29
30. Safari M., Hedayatipoor A., and Gerami K. 2011. Construction and evaluation of a boom atomizer sprayer to control of sunn pests in a wheat crop. Agronomy Engineering. 34(1):75-86.
30
31. Salyani M., and serdynski J. 1990. Development of a Spray sensor for deposition assessment. Transactions of the ASAE 33(5):1464-1468.
31
32. Sanei shariat-panahi M. 2005. The most important broad-leaved weeds and grasses in Iran. Agricultural Training Press P: 318. (In Persian)
32
33. Sohrabi M.H. 1991. Technical principle sprayer and spraying. Department of Agriculture Bakhtaran.
33
34. Zand E., Baghestani M.A., Nezamabadi N., Minbashi M., and Hadizade M.H. 2009. A review on the last list of herbicides and the most important weeds of Iran. Iranian Journal of Weed Research. 1(2):83-100.
34
35. Zand E., Mousavi S.K., and Heidari A. 2008. Herbicides and their application. Mashhad University of Jehad Press P: 567. (In Persian)
35
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر اسید جیبرلیک، پسرسی و حذف پوشینه بر جوانهزنی بذر علف پشمکی ژاپنی (Bromus japonicus Thunb.)
علفپشمکی ژاپنی مهمترین علف هرز در مزارع گندم استان سیستان و بلوچستان به شمار میرود و پیشبینی زمان رفع خفتگی و جوانهزنی بذور آن امری ضروری میباشد. به منظور تعیین بهترین شرایط جوانهزنی در بذور این علف هرز، آزمایشی در سال 1393 به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با دو فاکتور شامل مدت زمان پسرسی در شش سطح (بلافاصله پس از برداشت، 2، 4، 6، 9 و 12 ماه پس از برداشت) و پیش تیمار با جیبرلیک اسید به مدت 48 ساعت در چهار غلظت (0، 100، 200 و 300 میلیگرم در لیتر) انجام شد. تأثیر سطوح این دو فاکتور برای دو نوع بذر پوشینهدار و بدون پوشینه علف پشمکی ژاپنی بررسی شد. پتریدیشهای مربوط به همه تیمارها در انکوباتور در 20 درجه سانتیگراد و تاریکی کامل قرار داده شدند. پس از ثبت تعداد بذر جوانه زده در هر 24 ساعت، شاخصهای جوانهزنی شامل درصد جوانهزنی، سرعت جوانهزنی و میانگین زمان جوانهزنی محاسبه گردیدند. حذف پوشینه، غلظت جیبرلیک اسید بالاتر و نگهداری طولانیتر پس از برداشت بطور معنیداری درصد جوانیزنی را افزایش دادند. سرعت جوانهزنی از 7/1 در بذرهای پوشینهدار به 5/15 درصد در روز در بذرهای بدون پوشینه افزایش یافت. برای 3 زمان اول 0، 2 و 4 ماه پس از برداشت، بذرهای بدون پوشینه میانگین زمان جوانهزنی بیشتری نسبت به بذرهای پوشینهدار از خود نشان دادند.
https://jpp.um.ac.ir/article_37396_893f69aa9adb8b688131905bddb70e28.pdf
2019-02-20
543
552
10.22067/jpp.v32i4.66215
سرعت جوانه زنی
علف پشمکی
گندم
میانگین زمان جوانه زنی
منصور
سارانی
msarani@mail.um.ac.ir
1
دانشگاه فردوسی مشهد
AUTHOR
علی
قنبری
ghambari@um.ac.ir
2
دانشگاه فردوسی مشهد
LEAD_AUTHOR
محمد
گلوی
mgalavi@yahoo.com
3
دانشگاه زابل
AUTHOR
ابراهیم
ایزدی دربندی
eizadi2000@yahoo.com
4
فردوسی
AUTHOR
محمد علی
باغستانی میبدی
bagestani40@hotmail.com
5
موسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور
AUTHOR
1. Baskin J.M. and Baskin C.C. 1981. Ecology of germination and flowering in the weedy winter annual grass Bromus japonicus. Journal of Range Management, 34: 369-372.
1
2. Baskin, C.C., and Baskin, J.M. 2014. Seeds: ecology, biogeography, and evolution of dormancy and germination. 2nd Eds. Elsevier/Academic Press, San Diego.
2
3. Bahrani M.J., Ramazani M., Shekafandeh A., and Taghavi M. 2008. Seed germination of wild caper (Capparis spinose L. var parviflora) as affected by dormancy breaking treatment and salinity levels. Seed Science and Technology, 36: 779-780.
3
4. Balouchi H.R., and Modarres Sanavi S.M. 2006. Effect of gibberellic acid, prechiling, sulfuric acid and potassium nitrate on seed germination and dormancy of annual Medics. Pakistan Journal of Biological Science, 9: 2875-2880.
4
5. Basiri M. 2016. The reaction of grain yield and yield components of wheat (Triticum aestivum L.) varieties in competition with Japanese brome (Bromus japonicus Thunb.) in Sistan region. PhD Thesis. University of Zabol, Zabol, Iran. (In Persian with English abstract)
5
6. Bannayan M., and Najafi F. 2004. Final report study of germination in seeds of wild medicinal plants in Iran. Department of Agronomy, College of Agricultural,. Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, Iran. (In Persian with English abstract)
6
7. Chasemi Pirbalooti A., Golparvar A.R., Riahi Dehkordi M., and Navid A.R. 2006. The effect of different treatment on breaking dormancy and stimulat germination of five species of medicin and aromatic plants in Chaharmahal and Bakhtiari. Research and Development on Natural Resources, 74:185-192. (In Persian with English abstract)
7
8. Che J.D., Yuan Z.Q., Jin D.H., Wang Y.M., Zhang G.W., Hu X.G., Wu J.Z., and Tian Z.Y. 2010. Study report of Bromus japonicas Thunb. biological characteristics. Beijing Agric, 36: 41-43.
8
9. Eslami S.W., Afghani F., and Mahmoodi S. 2008. Effect of environmental factors on germination and longevity of downy brome (Bromus tectorum) seeds. Iranian Society of Seed Science, 2:47-57. (In Persian with English abstract)
9
10. Finch-Savage W.E., and Leubner-Metzger G. 2006. Seed dormancy and the control of germination. New phytologist, 171: 501-523.
10
11. Gasch C., and Bingham R. 2006. Variation in seed germination characteristics among population of Bromus tectorum in the Gunnison Basin. Bios, 77: 7-12.
11
12. Greipsson S. 2001. Effects of stratification and GA3 on seed germination of a sand stabilizing grass (Leymus arenarius L.) used in reclamation. Seed Science and Technology, 29: 1-10.
12
13. Koochaki A., and Azizi G. 2005. Effect of different treatments on seed germination dormancy in Teucrium polium. Iranian Journal of Field Crop Research, 3: 81-88. (In Persian with English abstract)
13
14. Koornneff M., Bentsink L., and Hilhorst H. 2002. Seed dormancy and germination. Current Opinion in Plant Biology, 5: 33-36.
14
15. Karl M.G., Heitschmidt R.K., and Haferkamp M.R. 1999. Vegetation biomass dynamics and patterns of sexual reproduction in a norther mixed-grass prairie. American Midland Naturalist, 141: 227-237.
15
16. Li Q., Tan J., Li W., Yuan G., Du L., Ma S., and Wang J. 2015. Effect of environmental factors on seed germination and emergence of Japanese Brome (Bromus japonicas). Weed Science, 63: 641-646.
16
17. Liu K., Baskin J.M., Baskin C.C., Bu H., Liu M., Liu W., and Du G. 2011. Effect of storage conditions on germination of seeds of 489 species from high elevation grasslands of the eastern Tibet Plateau and some implications for climate change. American Journal of Botany, 98: 12-19.
17
18. Littell R.C., Stroup W.W., Milliken G.A., Wolfinger R.D., and Schabenberger O. 2006. SAS for mixed models. SAS institute.
18
19. Macchia M.L., Angelini G., and Ceccarini L. 2001. Methods to overcome seed dormancy in Echinacea angustifolia. Scientia Horticulturae, 89: 317-324.
19
20. Meyer S.E., and Allen P.S. 1999. Ecological genetics of seed germination regulation in Bromus tectorum: I. Phenotypic variance among and within population. Oecologia, 19: 225-239.
20
21. Meyer S.E., and Allen P.S. 2009. Predicting seed dormancy loss and germination timing for Bromus tectorum in a semi-arid environment using hydrothermal time models. Seed Science Research, 19: 225-239.
21
22. Meyer S.E., Allen P.S., and Beckstead J. 1995. Patterns of seed after-ripening in Bromus tectorum L. Journal of Experimental Botany, 46: 1737-1744.
22
23. Makizadeh Tafti M., Farhoodi R., Rastifar M., and Sadat Asilan K. 2011. Seed dormancy breaking methods in Caparis spinosa. Iranian Journal of Range and Desert Research, 8:569-577. (In Persian with English abstract)
23
24. Naebi M., Roshandel P., and Mohammadkhani A. 2011. Study of methods in dormancy breaking and enhancing germination in Rhum ribes. Iranian Journal of Medicine and Aromatic Plants Research, 17: 212-223. (In Persian with English abstract)
24
25. Najafi M., Bannayan M., Tabrizi L., and Rastgoo M. 2006. Seed germination and dormancy breaking techniques for ferula gammusa and Teucrium polium. Journal of Arid Environments, 4:542-547.
25
26. Ranal M.A., and Santana D.G. 2006. How and why to measure the germination process? Revista Brasileira de Botanica, 29: 1-11.
26
27. Rhie Y.H., Lee S.Y., and Kim K.S. 2015. Seed dormancy and germination in Jeffersonia dubia (Berberidaceae) as affected by temperature and gibberellic acid. Plant Biology, 17: 327-334.
27
28. Sarani M. 2005. Evaluation of different wheat (Triticum aestivum L.) cultivars in competition with Japanese brome (Bromus japonicus Thunb.). MSc Thesis. Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, Iran. (In Persian with English abstract).
28
29. Tavili A., Safari B., and Saberi M. 2010.The effect of gibberellic acid and potassium nitrate on improving germination of (Salsola rigida). Journal of Range Research, 3: 272-285. (In Persian with English abstract)
29
30. Whisenant S.G., and Steven G. 1990. Post-fire population dynamic of Bromus japonicas American Midland Naturalist, 123: 301-308.
30
31. Wei M. 2010. Biological characteristics of Japanese brome observed in the wheat of Zhuangland country. Gansu Agricultural Science Technology, 8: 30-31.
31
32. Beckstead J., Meyer S.E., and Allen P.S. 1996. Bromus tectorum seed germination: between-population and between-year variation. Canadian Journal of Botany, 74: 875-882.
32
33. Salimi H., and Termeh F. 2000. A study on seed dormancy and germination in ten species of grass weeds. Rostaniha, 3:11-23.
33
34. Serrano C., Chueca M.C., and Garcia-Baudin J.M. 1992. A study of germination in Bromus spp. p. 217-221. In Proceedings of the 1992 Congress of the Spanish Weed Science Society.
34
ORIGINAL_ARTICLE
تغییرات فلور و تنوع گونهای جوامع علفهایهرز مزارع گندم (Triticum aestivum) استان گلستان پس از یک دهه
بهمنظور شناسایی فلور و بررسی تنوع گونهای، کارکردی و ساختار جوامع علفهایهرز و همچنین بررسی تغییر فلور مزارع گندم استان گلستان طی یک دهه، جمعیت علفهایهرز در شهرستانهای مختلف استان طی سال زراعی 94-1393 مورد مطالعه قرار گرفت و نتایج با بررسیهای انجام شده طی دهه گذشته مقایسه گردید. نمونهبرداریها بهصورت تصادفی، و در ادامه به روش سیستماتیک و طبق الگوی W انجام شد. در این مطالعه 51 گونه علفهرز متعلق به 20 خانوادهی گیاهی شناسایی گردید. بیشترین تعداد گونه به ترتیب در خانوادههای Poaceae (14 گونه)، Fabaceae (7 گونه) و Asteraceae (6 گونه) مشاهده شد. نتایج نشان داد که 43/78 درصد علفهایهرز یکساله، 60/19 درصد چندساله و 96/1 درصد نیز دوساله بودند. یولاف وحشی مهمترین علفهرز از باریکبرگان و خردلوحشی مهمترین علفهرز از پهنبرگان بود. مقایسه نتایج با گذشته نشان داد که تراکم علفهای هرز یولافوحشی، خردلوحشی، علفخونی، چچم، علف هفتبند، شاهتره و سیزاب ایرانی با گذشت زمان افزایش یافته در حالیکه تراکم علفهای هرز پیچکبند و یونجهوحشی به مرور زمان کاهش یافته است. بیشترین تعداد گونه در خانببین (26 گونه) و کمترین در کردکوی (8 گونه) مشاهده گردید. بیشترین شاخص تنوع شانون در گنبد (48/2) و خانببین (44/2) و کمترین آن در کردکوی (18/1) مشاهده شد. بیشترین شاخص تنوع سیمپسون متعلق به کلاله (43/0) و مینودشت (40/0) و کمترین آن متعلق به گنبد (11/0) و خانببین (11/0) بود. از نظر درصد یکنواختی و درصد فراوانی علفهایهرز، شهرستانهای مختلف در 7 خوشهی جداگانه قرار گرفتند.
https://jpp.um.ac.ir/article_37402_498bfd4226f6a3a21c85fbee14d189eb.pdf
2019-02-20
553
568
10.22067/jpp.v32i4.67754
تراکم
فراوانی نسبی
فرکانس
شاخص سیمپسون و شانون
یکنواختی
معصومه
یونس آبادی
myounesabadi8@gmail.com
1
مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان گلستان
LEAD_AUTHOR
مهدی
مین باش معینی
minbashii2@yahoo.com
2
دانشیار، بخش تحقیقات علفهای هرز، موسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
لیلا
حبیبیان
h_leyla9257@yahoo.com
3
مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان گلستان
AUTHOR
علیرضا
ساوری نژاد
savarialireza@gmail.com
4
مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان گلستان
AUTHOR
عبدالعزیز
حقیقی
azizhaghighi@yahoo.com
5
مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان گلستان
AUTHOR
1. Ahmadi K., Gholizadeh H., Ebadzadeh H., Hoseinpoor F., Hatami F., Fazli B., Kazemian A. and Rafiee M. Agriculture Statistics Book. 2013-2014. (1). Agricultural crops. (In Persian)
1
2. Bourdot G.W., Hurrell G.A. and Saville D.J. 1998. Weed flora of cereal crops in Canterbury, New Zealand. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science, 26: 233-247.
2
3. Bukun B. 2004. The Weed flora of winter wheat in sanilifura, Turkey. Pakistan Journal of Biological Science, 7: 1530-1534.
3
4. Dale M.R.T. and Thomas A.G. 1987. The structure of weed communities in Saskatchewan fields. Weed Science, 35: 348-355.
4
5. Dale, M.R.T., Thomas, A.G., and John E.A. 1992. Environmental factors including management practices as correlates of weed community composition in spring seeded crops. Canadian Journal of Botany, 70: 1931-1939.
5
6. Delafuente E.B., Suarez S.A., and Ghersa C.M. 2006. Soybean weeds community composition and richness between 1995 and 2003 in the Rolling Pampas (Argentina). Agriculture Ecosystem and Environment, 115: 229-236.
6
7. Dutoit T., Gerbaud E., Buisson E., and Roche P. 2003. Dynamics of a weed community in a cereal field created after ploughing a seminatural meadow: Roles of the permanent seed bank. Ecoscience, 10: 225-235.
7
8. Derksen D.A., Anderson R.L., Blackshaw R.E., and Maxwell B. 2002. Weed dynamics and management strategies for cropping systems in the northern Great Plains. Agronomy Journal, 94: 174-185.
8
9. Doucet C., Weaver S.E., Hamill A.S., and Zhang J. 1999. Separating the effects of crop rotation from weed management on weed density and diversity. Weed Science, 47: 729-735.
9
10. Edim H., Sarani M., and MinbashiMoeini M. 2010. Determining weed maps and population characteristics of irrigated wheat fields for Sistan and Baluchestan province. Weed Research Journal. 2 (1): 1-14. (In Persian)
10
11. Eiszner H., Salazar D., and Pohlan J. 1996. The effect of crop rotation and weed control on the weed seed bank in the soil. Tropenlandwirt, 97: 63-73.
11
12. Frick B., and Thomas A.G. 1992. Weed survey in different tillage systems in Southeastern Ontario field crops. Canadian Journal of Plant Science, 72: 1337-1347.
12
13. Hume L. 1987. Long-term effects of 2, 4-D application on weed community in wheat crop Canadian Journal of Botany, 65: 2530- 2536.
13
14. Koocheki A., NasiriMahalati M., Tabrizi L., Azizi G. and Jahan M. 2006. Evaluation of species, functional and structural diversity of weeds in wheat and sugar beet fields of various provinces in Iran. Journal of Agronomy Research of Iran, 1(1): 105-129.(In Persian with English abstract)
14
15. Koocheki A., Kamkar B., JamiAlahmadi M., Mahdavi Damghani A., Farsi M., Rezani P., and Barzegar A. 2006. Agriculture Biodiversity (Translation). Ferdosi Mashhad University Publications.(In Persian)
15
16. Kossali A. 2014. Evaluation of weeds distribution and diversity in wheat fields (Triticum aestivum) in Turkmen. M.Sc. thesis. Islamic Azad University, Gorgan Branch. (In Persian with English abstract)
16
17. Kooler M., and Lanini W.T. 2005. Site-specific herbicide applications based on weed maps provide effective control. California Agriculture, 59: 182-187.
17
18. Minbashi Moeini M., Baghestani M.A., and Mashhadi H.R. 2008. Introducing an abundance index for assessing weed flora in survey study, Weed Biology & Management, 8: 172-180.
18
19. Minbashi Moeini M. 2012. Producing of weed map for irrigated wheat fields of Iran using Geographic Information System (GIS). Agronomy Journal (Pajouhesh & Sazandegi), 95: 22-31. (In Persian with English abstract)
19
20. Montazeri M. 2007. Wheat and barley weeds and theire chimical control in Gorgan. Proceeding of Iranian Plant Protection Congress, pp 208. (In Persian with English abstract)
20
21. Narimani V., Minbashi Moeini M. and Mohamadi Poor M. 2006. Evaluation and determination weed dominance with guantitative index in wheat and barley fields in Eastern Azarbaeejan. The 9th Iranian Crop Sciences Congress, Abouryhan Campus, University of Tehran. (In Persian with English abstract)
21
22. Norozzadeh Sh., Rashed Mohasel M.H., Nassiri Mahallati M., Koocheki A., and Abbas Pour M. 2008. Evaluation of species, functional and structural diversity of weeds in wheat fields of Northern, Southern and Razavi Khorasan provinces. Journal of Agronomy Research of Iran, 6(2): 471-485. (In Persian with English abstract)
22
23. Poorazar R., and Minbashi Moeini M. 2007. Identification and evaluation density, abundance and uniformity of wheat and barley weeds in Khozestan province. Proceedings of 15th Iranian Plant Protection Congress, pp 13. (In Persian with English abstract)
23
24. Poggio S.L. 2005. Structure of weed communities occurring in monoculture and intercropping of field pea and barley. Agriculture Ecosystems and Environment, 109: 48-58.
24
25. Soodmand M.A. 1999. Identification main crop weeds of part of Gorgan and preparation seed and seedling key for them. M.Sc. thesis. Islamic Azad University, Science and Research Branch, Tehran. (In Persian with English abstract)
25
26. Tahbaz F. and Sanei Shariat Panahi M. 1985. Weed Biology. Tehran University Publications. pp. 297. (In Persian)
26
27. Thomas A.G. 1985. Weed survey system used in Saskathevan for cereal and oilseed crops. Weed Science, 33: 34-43.
27
28. Veisi M., Rahimian Mashhadi H., Alizadeh H., Minbashi Moeini M. and Oveisi M. 2014. Weed flora change in irrigated wheat fields of Kermanshah after a decade. Iranian Journal of weed science, (10).pp. 1-20. (In Persian with English abstract)
28
29. Waheed A., Qureshi R. and Jakhar G.S. 2009. Weed community dynamics in wheat crop of district Rahim Yar Khan, Pakistan. Pakistan Journal of Botany, 41: 247-254.
29
30. Yazdani M., Hematallah P. and Esmaeili M.A. 2009. Evaluation species diversity, density and dominant weeds in wheat and barley fields in sari. Proceedings of 18th Iranian Plant Protection Congress, pp 21. (In Persian with English abstract)
30
31. Younesabadi M. 2004. Annual report of identification and producing weed map for irrigated wheat and barley fields of Iran using Geographic Information System (GIS). Agricultural and Natural Resources Research and Education Center of Golestan Province, Gorgan. (In Persian)
31
32. Zand E., Baghestani M.A., and Mighani F. 2009. Sustainable weed management. Printed in new agriculture book (Kocheki, A & M, Khajehoseini). Publications of Jehade-daneshgahi Mashhad. (In Persian)
32
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین دماهای کاردینال جوانهزنی علفهرز گلرنگوحشی (Carthamus oxycantha) با استفاده از مدلهای رگرسیونی مختلف
به منظور بررسی تأثیر دما بر درصد و سرعت جوانهزنی و تعیین دماایکاردینال جوانهزنی علفهرز گلرنگ وحشی، آزمایشی در قالب طرح کاملاً تصادفی با چهار تکرار در دماهای ثابت 5، 10، 15، 20، 25، 30، و 35 درجهسانتیگراد انجام شد. به منظور ارزیابی تأثیر دما بر سرعتجوانهزنی بذور از سه مدل رگرسیونی خطوط متقاطع، چند جملهای درجه دوم و پنج پارامتری بتا استفاده شد. نتایج آزمایش نشان داد که دما تأثیر معنیداری بر درصد و سرعت جوانهزنی داشت. کمترین درصد جوانهزنی در دمای 30 درجه (23 درصد) مشاهده شد، در حالیکه کمترین سرعت جوانهزنی (62/0) در دمای 5 درجه اتفاق افتاد. بالاترین درصد و سرعت جوانهزنی در دامنهدمایی 20 -15 درجه سانتیگراد بدست آمد و در دمای 35 درجه سانتیگراد هیچ بذری جوانه نزد. بر اساس مدلهایرگرسیونمورد استفاده، درجه حرارتهای کاردینال جوانهزنی به ترتیب در دامنه (5 – 41/4)، (91/19–6/19) و (66/33 –40/28) بدست آمد. بهترین مدل برازش داده شده برای تعیین دمایکاردینال گلرنگ وحشی بر مبنای جذر میانگین مربعات خطای آزمایش، ضریب تبیین و مقادیر باقیمانده حاصل از برازش، مدل خطوط متقاطع تعیین شد.
https://jpp.um.ac.ir/article_37408_9c47d0b2476448568f68aeb37bbbfee4.pdf
2019-02-20
569
578
10.22067/jpp.v32i4.66879
.سرعت جوانه زنی
درجه حرارت بهینه
مدل خطوط متقاطع
فاطمه
فخرراد
fa_fakhr@yahoo.com
1
دانشگاه فردوسی
LEAD_AUTHOR
علی
قنبری
ghambari@um.ac.ir
2
فردوسی مشهد
AUTHOR
مهدی
راستگو
m.rastgoo@um.ac.ir
3
فردوسی
AUTHOR
1. Asgarpour R., Mijani S., and Ghorbani R. 2013. Effect of temperature on germination rate of two passion grasses (Salsola kali L.) based on regression models, Journal of Plant Protection (Agriculture Sciences and Technology), 7(4): 476-483. (In Persian with English abstract)
1
2. Alvarado V., and Bradford K.J. 2002. A hydrothermal time model explains the cardinal temperatures for seed germination. Journal of Plant, Cell and Environment, 25: 1061-1069.
2
3. Bassiri A., Rouhani I., and Ghorashy S.R. 1975. Effect of temperature and scarification on germination and emergence of wild safflower, Carthamus oxyacantha. Agricultural Science, 84: 239-243.
3
4. Behdani M.A., Koocheki A., Nassiri M., and Rezvani P. 2008. Models of predict flowering time in the main Saffron production regions of Khorasan province. Applied Sciences, 8: 907-909.
4
5. Bewley J.D., Bradford K.j., Hilhorst H.W.M., and Nonogaki H. 2012. Seeds: Physiology of Development, Germination and Dormancy, Third Edition. Press, Springer New York, Heidelberg Dordrecht London.
5
6. Bradford K.J. 2002. Applications of hydrothermal time to quantifying and modeling seed germination and dormancy. Weed Science, 50: 248–260.
6
7. Cave R.L, Birch C.J., Hammer G.L., Erwin J.E., and Johnston M.E. 2011. Cardinal temperature and thermal time for seed germination of Brunonia australis (Goodeniaceae) and Calandrinia sp. (Portulacaceae). HortScience, 46:753–758.
7
8. Dashti M., Kafi M., Tavakkoli H., and Mirza M. 2015. Cardinal temperatures for germination of Salvia leriifolia Benth. herba polonica, 60: 5-18.
8
9. Dittrich M., Petrak F., Rechinger K.H., and Wagenitz G. 1979. Compositae Cynareae. In: Rechinger, K.H. (ed.), Flora Iranica, Pp: 139-468. Journal of Echology, 18:1216–1220.
9
10. Ebrahimi E., and Eslami S.V. 2012. Effect of environmental factors on seed germination and emergence of invasive Ceratocarpus arenarius. Weed Research, 52: 50–59.
10
11. Forcella F., Benech-Arnold R.L., Sanchez R., and Ghersa C.M. 2000. Modelling seedling emergence. Field Crops Research, 67: 123-139.
11
12. Ghaderi–Far F., Soltani A., and Sadeghi-pour H.R. 2009. Evaluation of nonlinear regression models in quantifying germination rate of medicinal pumpkin (Cucurbita pepo L.) Journal of Plant Protection (Agriculture Sciences and Technology), 16(4): 1 - 19. (In Persian with English abstract)
12
13. Ghaderi-Far F., Gherekhloo J., and Alimagham M. 2010. Influence of environmental factors on seed germination and seedling emergence of yellow sweet clover (Melilotus officinalis). Planta Daninha, 28: 463–469.
13
14. Ghersa C.M., Benech-Arnold R.L., Sattore E.H., and Martınez-Ghersa M.A. 2000. Advances in weed management strategies. Field Crop Research, 67: 95–104.
14
15. Hakansson I., Myrbeck A., and Erarso A. 2002. A review of research on seedbed preparation for small grains in Sweden. Soil Tillage Research, 64: 23–40.
15
16. Hashemi A., Baruti S.H., and Tavakolafshari R. 2017. Determine the cardinal temperatures of Marguerite seed (Chrysanthemum maximum Ramond). Iranian Journal of Seed Science and Technology, 5: 77-84. (In Persian)
16
17. Hosseini M., Mojab M., and Zamani G.H. 2017. Cardinal temperatures for seed germination of wild barley, barley grass and hoary cress. Archives of Agronomy and Soil Science, 63: 352-361.
17
18. Khalaj H., Allahdadi I., Iranejad H., Akbari G.A., MinBashi M., Baghestani M.A., Labbafi M., and Mehrafarin A. 2015. Using nonlinear regression model for estimation of cardinal temperatures in three medicinal plants. Journal of Kasetsart -Natural Science, 49: 165 – 173.
18
19. Maguire J.D. 1962. Speed of germination aid in selection and evaluation for seedling emergence and vigor. Crop Science, 2: 176-177.
19
20. Masin R., Zuin M.C., Archer D.W., Forcella F., and Zanin G. 2005. A predictive model to aid control of annual summer weeds in turf. Weed Science, 53:193–201.
20
21. Meyer S.E., and Pendleton R.L. 2000. Genetic regulation of seed dormancy in Purshia tridentata (Rosaceae). Annuals of Botany, 85: 521-529.
21
22. Parmoona G.H., Hamed Akbarib S.A., and Ebadia A. 2015. Quantifying cardinal temperatures and thermal time required for germination of Silybum marianum. Journal of Seed and Crop, 3: 145-151.
22
23. Pourreza J., and Bahrani S.A. 2012. Estimating Cardinal Temperatures of Milk Thistle (Silybum marianum) Seed Germination. Agriculture and Environment Science, 12: 1030-1034.
23
24. Rashed Mohsen M., Najafi H., and Akbarzadeh M. 2001. Biology and Weed Control. Ferdowsi University Press, Mashhad. (In Persian)
24
25. Rowse H.R., and Finch-Savage W.E. 2003. Hydrothermal threshold models can describe the germination response of carrot (Daucus carota) and onion (Allium cepa) seed populations across both sub-and supra-optimal temperatures. New Phytologist, 158: 101–108.
25
26. Shafii B., and PriceSource W.J. 2001. Estimation of cardinal temperatures in germination data analysis. Journals of Agriculture Biology and Environments Statistics, 6: 356–366.
26
27. Saeidnejad A. H., Kafi M., and Pessarakli M. 2012 Evaluation of cardinal temperatures and germination responses of four ecotypes of Bunium persicum under different thermal conditions. Agriculture and Crop Science, 4: 1266-1271.
27
28. Soltani A., Robertson M.J., Torabi B., Yousefi-Daz M., and Sarparast R. 2006. Modeling seedling emergence in chickpea as affected by temperature and sowing depth. Agricultural and Forest Meteorology, 138: 156-167.
28
29. Soltani A., and Sinclair T.R. 2012. Modeling physiology of crop development, growth and yield. Oxford shire: CABI Press; p.322.
29
30. Steckel L.E., Sprague C.L., Stoller E.W., and Wax L.M. 2004. Temperature effects on germination of nine Amaranthus species. Weed Science, 52: 217–221.
30
31. SitiAishah H., Saberi A.R., Halim R.A., and Zaharah A.R 2010. Salinity effects on germination of 585 forage sorghumes. Journal of Agronomy, 9: 169-174
31
32. Taherabadi S.H., Goldani M., Taherabadi S.H., and Fazeli Kakhki S.F. 2015. Determination of cardinal temperatures of germination of weed seeds of Hyoscyamus niger, Aconitum napellus and Cannabis sativa. Journal of plant protection, 29: 16-22. (In Persian)
32
33. Tanveer A., Muhammad Zeshan Farid M., Tahir M., Mansoor Javaid M., and Khaliq A. 2012. Environmental factors affecting the germination and seedling emergence of Carthamus oxyacantha M. Bieb. (Wild Safflower). Pakistan Journal of Weed Science and Research, 18: 221-235.
33
34. Wang R., Bai Y., and Tanino K. 2004. Effect of seed size and sub-zero imbibitions-temperature on the thermal time model of winterfat (Eurotia lanata (Pursh) Moq.). Journal of Environmental and Experimental Botany, 51: 183-187.
34
35. Wang R. 2006. Seedling emergence of winterfat (Krascheninnikovia lanata (Pursh) A.D.J. Meeuse & Smit) in the field and its prediction using the hydrothermal time model. Journal of Arid Environments, 64: 37-53.
35
36. Wang L., Jin S., Wu L., Zhou X., Liu X., and Bai L. 2016. Influence of Environmental Factors on Seed Germination and Emergence of Asia Minor Bluegrass (Polypogon fugax). Weed Technology, 30: 533-538.
36
37. Zarif-ketabi H., Kazaei H.R., and A Nezami A. 2016. Estimation of the cardinal temperatures for germination of four Satureja species growing in Iran. Herba Polonica, 62: 7-21.
37
38. Zhou J., Deckard E.L., and Ahrens W.H. 2005. Factors affecting germination of hairy nightshade (Solanum sarrachoides) seeds. Weed Science, 53: 41-45
38
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی قابلیت رقابت سویا در شرایط تداخل با تراکمهای مختلف کنجد شیطانی (Cleome viscosa L.): علف هرز مهاجم در استان گلستان
بهمنظور بررسی قدرت رقابتی سویا (رقم دیپیایکس) در شرایط تداخل با تراکمهای مختلف علفهرز کنجد شیطانی (صفر، 3، 5، 10، 15، 20، 30 و 45 بوته در متر مربع) آزمایشی در سال زراعی 95-1394 در شهرستان کلاله بهصورت طرح بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار انجام شد. نتایج نشان داد در مراحل اولیه رشد ارتفاع کنجدشیطانی کمتر از سویا بود؛ اما به تدریج ارتفاع آن افزایش و در انتهای فصل رشد، بیش از سویا بود. حداکثر تجمع ماده خشک سویا در رقابت با کنجد شیطانی کاهش یافت. با توجه به مدل برازش یافته، حداکثر تجمع ماده خشک کنجد شیطانی به طور متوسط در 83 روز بعد از کاشت حاصل شد؛ این در حالی بود که حداکثر تجمع ماده خشک سـویا بسته به تیمار تداخلی بین 53 تا 60 روز تغییر نمود. با افزایـش تراکم علف هرز، حداکثر تجمع ماده خشک سویا در زمان کوتاهتری حاصل شد. حداکثر شاخص سطح برگ سویا در شرایط عدم تداخل 41/6 بود که در 63 روز بعد از کاشت حاصل شد. اما حداکثر شاخص سطح برگ کنجدشیطـانی 96/0 بــود که در 53 روز بعد از کاشت حاصل گردید. همچنین بیشترین درصد شاخص سطح برگ سویا و کنجد شیطانی بهترتیب در لایههای 20 – 0 و 40 – 20 سانتیمتر متمرکز بود که نشاندهنده موفقتر بودن کنجد شیطانی در دریافت نور است. مقدار کاهش عملکرد دانه و بیولوژیک سویا در شرایط ورود اولین بوته علف هرز به ترتیب 39/8 و 94/7 درصد تعیین شد و با افزایش تراکم این علف هرز، عملکرد دانه و بیولوژیک سویا بهترتیب به میزان 42/60 و 52/54 درصد کاهش یافت.
https://jpp.um.ac.ir/article_37414_0205ce96d14b7e774833dc6434493c62.pdf
2019-02-20
579
592
10.22067/jpp.v32i4.68919
توزیع سطح برگ
خصوصیات مورفولوژیکی
رقابت
کاهش عملکرد دانه
مدل کوزنس
دورسن
امامی کنگر
dorsan.emami70@gmail.com
1
دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
آسیه
سیاهمرگویی
siahmargue@yahoo.com
2
دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
LEAD_AUTHOR
بهنام
کامکار
behnam.kamkar@gmail.com
3
دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
محبوبه
بصیری
mahboobehbasiri62@gmail.com
4
دانشگاه زابل
AUTHOR
1. Blackshaw R.E. 1993. Downy brome (Bromus tectotrum) density and relative time of emergence affects interference in winter wheat (Triticum aestivum). Weed Sciences, 41: 551-556. 37.
1
2. Cousens R. 1985. A simple model relating yield loss to weed density. Annals of Applied Biology, 107(25): 239-252.
2
3. Cousens R.D., Weaver S.E., Martin T.D., Blair A.M., and Wilson J. 1991. Dynamics of competition between wild oat (Avena fatua L.) and winter cereals. Weed Research, 37: 203-210.
3
4. Foroughi A., Gerekhloo J., and Ghaderifar F. 2005. Evaluation of competitive ability in two sesame (Sesamum indicum L.) cultivars with cocklebur (Xanthium strumarium L.) in different crop row spacing. Electronic Journal of Crop Protection, 8(3):19-40. (In Persian with English abstract)
4
5. Kropff M., and Van laar H.H. 1993. Modeling Crop-Weed Interactions. CAB international. Wallingford. UK.
5
6. Hosseini P., Rahimian Mashhadi H., and Alizadeh H. 2011. Competition of Red Root Pigweed (Amaranthus retroflexus) with Two Soybean (Glysine max) Cultivars under Sole and Intercropping Systems Soybean Yield and Redroot Pigweed Growth Analysis Iranian Journal of Weed Science, 7(3):13-24. (In Persian with English abstract)
6
7. Locke M.A., Reddy K.N., and Zablotowicz R.M. 2002. Weed management in conservation crop production systems. Weed Biology and Management 2: 123–132.
7
8. Norouzi N., Niakan M., and Siahmarguee A. 2017. Study of the allelopathic effect of Cleome viscosa on the level of antioxidant enzymes in canola and wheat. 7th Iranian Weed Science Congress, 27-29 August. Gorgan, Iran. (In Persian with English abstract)
8
9. Oliver L.R. 1979. Influence of soybean (Glycine max) planting date on velvetleaf (Abutilon theophrasti) competition. Weed Sciences, 24: 43-46.
9
10. Rajcan I., and Swanton C.J. 2001. Understanding maize-weed competition: resource competition, light quality and the whole plant. Field Crops Research, 71:139-150.
10
11. Rezvani H., Asghari J., Ehteshami S.M.R., and Kamkar B. 2013. Study the response of yield and component yield of wheat cultivars in competition with wild mustard in Gorgan. Electronic Journal of Crop Protection, 6(4): 187-214. (In Persian with English abstract)
11
12. Roush M.L., and Radosevich S.R. 1985. Relationships between growth and competitiveness of four annual weeds. Journal Applied Ecology, 22: 895-905.
12
13. Saadatian B., Ahmadvand G., and Soleymani F. 2011. The study of canopy structure and growth characteristics of two variety of wheat in competition condition on economic damage threshold and yield of rye (Secale cereale L.) and wild mustard (Sinapis arvensis L.). Iranian Journal of Field Crops Research, 9(3): 494-504. (In Persian with English abstract)
13
14. Saadatian B., Kafi M., Soleimani F., and Ahmadwand G. 2013. Evaluating empirical models to predict yield loss of winter wheat (Triticum aestivum L.) cultivars in interference with feral rye (Secale cereale) Cereal Research, 3(1): 69-82. (In Persian with English abstract)
14
15. Saadatian B., Kafi M., and Soleimani F. 2014. Evaluation of canopy characteristic role on tolerance index of wheat cultivars in interference with feral rye (Secale cereale). Journal of Plant Production Research, 21(19): 10- 24. (In Persian with English abstract)
15
16. Safahani Langerodi A.R., Ayenehband A., Zand E., Nourmohammadi Gh., Baghestani Meybodi M.A., and Kamkar B. 2008. Evaluation of Competitive Power of Different Varieties of Canola (Brasica napus) with wild mustard (Sinapis arvensis) and its relationship with the extent and distribution of leaf area in the canopy. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources, 15(2): 68-98. (In Persian with English abstract)
16
17. Safahani A., Kamkar B., Zand E., Bagherani N., and Bagheri M. 2008. The effect of growth indices in competitive ability of some canola (Brasica napus) cultivars against wild mustard (Sinapis arvensis). Iranian Journal of Field Crops Research, 9 (4): 356-370. )In Persian with English abstract(
17
18. Samaey M,. Akbary G.R., and Zand E. 2006. The Study of density and competition of Red root Pigweed (Amaranthus retroflexus) on morphological characteristics, Yield and Yield Components of Soybean (Glycine max) Cultivars. Agricultural Sciences, 12(1): 41-55.)In Persian with English abstract (
18
19. Shirdel M., Siahmarguee A., and Yones Abadi, M. 2016. Effect of temperature and water potential on seed germination of Asian spider flower (Cleome viscosa L.): an invasive weed in Golestan province. Journal of Plant Protection, 30(2): 292-303.
19
20. Yadavi A.R., Agha Alikhani M., Ghalavand A., and Zand E. 2006. Effect of plant density and planting arrangement on grain yield and growth indices of corn under redroot pigweed (Amaranthus retoflexus L.) competition. Agricultural Research Water, Soil and Plant in Agriculture, 6(3): 31-46. (In Persian with English abstract)
20
21. Zand E., Rahimian Mashhadi H., Koochaci A., Kharaghani J., Mosavi K., and Ramezani K. 2004. Weed Ecology (Management applications). Jahad Daneshgahi of Mashhad Press, 558p. (In Persian with English abstract)
21
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر تراکم کاشت شاهدانه (Cannabis sativa L.) بر دوره بحرانی کنترل علفهای هرز
به منظور بررسی اثر تراکم کاشت شاهدانه (Cannabis sativa L.) بر دوره بحرانی کنترل علفهای هرز در منطقه بیرجند، آزمایشی به صورت فاکتوریل دو عاملی و در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 24 تیمار و 3 تکرار در سال 1395 در مزرعه تحقیقاتی دانشگاه بیرجند انجام شد. عامل اول تراکم در دو سطح 8 و 16 بوته در متر مربع شاهدانه و عامل دوم تداخل علفهای هرز، که در دو گروه دورهی رقابت علفهای هرز و دورهی فقدان علفهای هرز بود انجام شد. نتایج نشان داد که با افزایش دوره تداخل گیاه زراعی و علفهای هرز عملکردهای دانه و بیولوژیک کاهش پیدا میکند. همچنین، با افزایش تراکم بوته شاهدانه عملکرد دانه در هکتار بیشتر شده و عملکرد بیولوژیک در تک بوته کاهش پیدا میکند. طبق نتایج آزمایش دوره بحرانی کنترل علفهای هرز، با افزایش درصد افت عملکرد گیاه زراعی و افزایش تراکم کاهش پیدا کرد. به طوری که دوره بحرانی کنترل علفهای هرز با 5 و 10 درصد افت عملکرد در تراکم 8 بوته شاهدانه در متر مربع به ترتیب بین روزهای 18 تا 56 و 21 تا 50 روز پس از سبز شدن و در تراکم 16 بوته شاهدانه در متر مربع بین روزهای 20 تا 51 و 23 تا 42 روز پس از سبز شدن بدست آمد.
https://jpp.um.ac.ir/article_37420_cd1727143a0a5c8cbbba6921399b0a20.pdf
2019-02-20
593
605
10.22067/jpp.v32i4.70982
تداخل
خسارت علفهای هرز
رقابت
گیاه دارویی
جمشید
سامانیپور
jamshidsamanipour@gmail.com
1
دانشگاه بیرجند
AUTHOR
سهراب
محمودی
smahmoodi@birjand.ac.ir
2
دانشگاه بیرجند
AUTHOR
علی رضا
صمد زاده
asamadzadeh@birjand.ac.ir
3
دانشگاه بیرجند
AUTHOR
حسین
حمامی
homamihossein@gmail.com
4
دانشگاه بیرجند
LEAD_AUTHOR
1. Agostinho F.H., Gravena R.P., Alves L.C.A, Salgado T.P., and Mattos E.D. 2006. The effect of cultivar on critical periods of weed control in peanuts. Peanut Science, 33: 29-35.
1
2. Akramghaderi F., Ghajari A., Younessabadi M., and Sohrabi B. 2005. Determination of critical period of weed control in cotton (Gossypium hirsutum) in Gorgan. Iranian Journal Agriculture Science, 12: 85-96.
2
3. Asghari J., and Cheraghi G.H.R. 2003. The critical period of weed control in two late and medium maturity grain maize (Zea mays) cultivars. Iranian Journal of Agriculture, 5:285-302. (In Persian with English abstract).
3
4. Bosnic A.C., and Swanton C.J. 1997. Influence of barnyardgrass (Echinochloa crus-galli) time of emergence and density on corn (Zea mays). Weed Science, 45: 276-282
4
5. Erman M., Tepe I., Bükün B., Yergin R., and Taşkesen M. 2008. Critical period of weed control in winter lentil under non-irrigated conditions in Turkey. African Journal of Agriculture Research, 3: 523-530.
5
6. Everman W.J., Burke I.C., Clewis S.B., Thomas W.E., and Wilcut J.W. 2008. Critical period of weed interference in peanut. Weed Technology, 22: 63-67.
6
7. FloResearch-Sanchez I.J., and Verpoorte R. 2008. Secondary metabolism in cannabis, phytochem review, 7: 615-639.
7
8. Hamzei J., Mohammady Nasab A.D., Khoie F.R., Javanshir A., and Moghaddam M. 2007. Critical period of weed control in three winter oilseed rape (Brassica napus L.) cultivars. Turkish Journal of Agricultural and Forestry, 31: 83-90.
8
9. Hazekamp A., Bastola K., Rashidi H., Bender J., and Verpoorte R. 2007. Cannabis tea revisited: A systematic evaluation of the cannabinoid composition of cannabis tea. Journal of Ethno pharmacology, 1139: 85-90.
9
10. Ivanek-Martincic M., Ostojic Z., Baric K., and Gorsic M. 2010. Importance of critical period of weed competition for crop growing. Poljoprivreda/Agriculture, 16: 57-61
10
11. Kenzevic S.Z., Evans S.P., Blankenship E., Evan Aker R.C., and Lindquist J.L. 2002. Critical period for weed control: The concept and data analysis. Weed Science, 50: 773-786.
11
12. Keramati S., Pirdashti H., Esmaili M.A., Abbasian A., and Habibi M. 2008. The critical period of weed control in soybean (Glycine max L.) In north of Iran conditions. Pakistan Journal of Biological Science, 11: 463-467.
12
13. Khan M.S.A., Hossain M.A., Nural-Islam M., Mahfuza S.N., and Uddin M.K. 2008. Effect of duration of weed competition and weed control on the yield of Indian spinach. Bangladesh Journal of Agricultural Research, 33: 623-629.
13
14. Khoshnam M. 2007. Effect of row spacing on critical period of weed control in canola. M.Sc. Thesis.University of Guilan, Iran.
14
15. Lambert D.M. 2009. Cannabinoids in nature and medicine. Zurich: Verlag Helvetica Chimica Acta, 15: 141-155.
15
16. Lisson S.N., Mendham N.J., and Carberry P.S. 2000. Development of a hemp (Cannabis sativa L.) simulation model. 1. General introduction and the effect of temperature on the pre-emergent development of hemp. Australian journal of experiment agriculture, 40: 405-411.
16
17. Mahmodi S., Hejazi A., and Rahimian Mashhadi H. 1999. Determination of Critical Period of Weed Control in Cotton (Gossypium hirsuum L.) in Varamin Area. Journal of Agricultural Sciences and Technology, 13:2 (In Persian)
17
18. Mahmoodi S., and Rahimi A. 2009. The critical period of weed control in corn in Birjand region, Iran. International Journal of Plant Production, 3: 91-96.
18
19. Makarian H., Banaian M., Rahimian H., and Izadi Darbandi E. 2003. Planting date and population density influence on competitiveness of corn (Zea mays L.) with redroot pigweed (Amaranthus retroflexus L.). Iran Journal of Crop Research, 2: 271-279.
19
20. Martin M., and Williams M. 2006. Planting date influences critical period of weed control in sweet corn. Weed Science, 54: 928-933.
20
21. Martin S.G., Van Acker R.C., and Friesen L.F. 2001. Critical period of weed control in spring canola. Weed Science, 49: 326-333.
21
22. McPartland J.M., Clarke R.C., and Watson D.P. 2000. Hemp diseases and pests: management and biological control. CABI Publishing, Wallingford, UK.
22
23. Mirzaei A., and Madhj A. 2004. Effect of different planting arrangements on grain yield and yield components of Vigna radiata Gohar cultivar in environmental conditions of Ilam province. Summary of Articles of the First Iranian National Cereals Congress. Ferdowsi University of Mashhad Institute of Plant Sciences, 78-80. (In Persian)
23
24. Mousavi S.K., Zand E., and Baghestani M.A. 2005. Effects of crop density on interference of common bean (Phaseolus vulgaris L.) and weeds. Applied Entomology Phytopathology, 73: 79-92.
24
25. Ngouajio M., Tursun N., Bükün B., Karacan S.C., and Mennan H. 2007. Critical period for weed control in leek (Allium porrum L.). Hort Science, 42: 106-109.
25
26. Nurse E.R., and Ditommaso A. 2005. Corn competition alters the germin ability of velvetleaf (Abutilon theophrasti) seeds. Weed Science, 53: 479-488.
26
27. Rajabian M., Asghari J., Ehteshami M. R., and Rabiei M. 2007. Effect of plant density on critical period of weed control in canola (Brassica napus L.) in Rasht area. Iranian Journal of Weed Journal, 5: 13-30 (In Persian)
27
28. Van Acer R.C., Weise C.F., and Swanton C.J. 1993. Influence of interference from a mixed weed species stand on soybean (Glycine max L.) growth. Plant Science, 73: 1293-1304.
28
29. Vines G. 2004. Herbal harvests with a future: towards sustainable sources for medicinal plants. Plant life International.
29
30. Yoshimatsu K., Iicla O., and Kitazawa T. 2004. Growth characteristics of Cannabis sativa cultivated in a phytotron and in the field. Bulletin on Natural Instruction of Health Science, 122: 16-20.
30
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر مدیریت بقایای گیاهی و نیتروژن بر پویایی و رشد جمعیت علفهایهرز مزرعه پنبه (Gossypium hirsutum L.)
اجرای سیستمهای کشاورزی حفاظتی که دربردارندۀ استفاده مؤثر از بقایای محصول قبلی و روشهای کمخاکورزی است در مناطق خشکی چون خراسان جنوبی که مقدار ماده آلی خاک بسیار پایین است از ضروریات انکارناپذیر است. طبیعی است در حرکت به سوی چنین سیستمهایی، ارکان مختلف بوم نظامهای زراعی از جمله وضعیت رشدی علفهای هرز تغییر خواهد نمود. با توجه به این مهم، جهت بررسی مدیریت بقایای گیاهی و نیتروژن بر پویایی و رشد جمعیت علفهای هرز مزرعه پنبه، تحقیقی مزرعهای به صورت اسپلیت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار انجام شد. عامل اصلی نوع شخم شامل خاکورزی معمول (شخم برگرداندار) و کم خاکورزی (شخم با دیسک) و عامل فرعی شامل دو سطح نیتروژن (50 و 150 کیلوگرم در هکتار) و پنج سطح میزان بقایای جو (صفر، 25، 50، 75 و 100 درصد بترتیب معادل صفر، 77، 154، 231، 308 گرم بقایای جو در متر مربع) بود که بهصورت فاکتوریل در کرتهای فرعی بهصورت تصادفی توزیع گردید. برآیند نتایج تحقیق حاضر نشان داد شخم برگرداندار به همراه مصرف نیتروژن کمتر، موجب کاهش معنیداری در وزن خشک (45%)، تراکم (50%) و شاخص سطح برگ (70%) علفهای هرز در مقایسه با شخم با دیسک و مصرف نیتروژن زیاد شد. همچنین استفاده از مقدار بالای بقایای گیاهی جو موجب کاهش معنیدار شاخصهای رشدی و تراکم علفهای هرز در طول فصل شد. به نظر میرسد برگرداندن کامل بقایای گیاهی جو همراه با مصرف مقدار کم نیتروژن در سیستم شخم برگردان راهکار مناسبی جهت کاهش فشار علفهای هرز در مزرعه پنبه خواهد بود.
https://jpp.um.ac.ir/article_37428_8354351b9e84a453b82d3003cd1f4bde.pdf
2019-02-20
607
621
10.22067/jpp.v32i4.72484
شخم برگردان
شخم کاهشی
کشاورزی پایدار
کشاورزی حفاظتی
سید وحید
اسلامی
s_v_eslami@yahoo.com
1
دانشگاه بیرجند
LEAD_AUTHOR
مجید
جامی الاحمدی
mjamialahmadi@birjand.ac.ir
2
دانشگاه بیرجند
AUTHOR
موسی
فرهمند
mousa2570@yahoo.com
3
دانشگاه بیرجند
AUTHOR
1. Ahmadi M., and Aghaalikhani M. 2012. Energy use analysis of cotton (Gossypium hirsutum L.) production in Golestan Province and a few strategies for increasing resources productivity. Journal of Agroecology, 4: 151-158. (In Persian with English abstract)
1
2. Anderson R.L., Tanaka D.L., Black A.L., and Schweizer E.E. 1998. Weed community and species response to crop rotation, tillage and nitrogen fertility. Weed Technology, 12: 531-536.
2
3. Arooji K., Rashed Mohassel M.H., Ghorbani R., and Azizi M. 2008. Studying the allelopathic effects of sunflower on germination and growth of redroot pigweed (Amaranthus retroflexus) and common lambsquarters (Chenopodium album). Journal of Plant Protection, 22: 121-128. (In Persian with English abstract).
3
4. Batlla D., and Benech – Arnold R.L. 2007. Predicting changes in dormancy level in weed seed soil banks: Implications for weed management. Crop Protection, 26: 189-197.
4
5. Blackshaw R.E. 2005. Nitrogen fertilizer, manure and compost effects on weed and competition with spring wheat. Agronomy Journal, 97: 1672-1621.
5
6. Blackshaw R.E., Brandt R.N., Janzen H.H., Ents T., Grant C.A., and Derksen D.A. 2003. Differential response of weed species to added nitrogen. Weed Science, 51: 532-539.
6
7. Blum U., King L., Gerig T., Lehman M., and Wosham A.D. 1997. Effects of clover and small grain cover crops and tillage techniques on seedling emergence of some dicotyledonous weed species. American Journal of Alternative Agriculture, 12: 146-161.
7
8. Bond W., and Grundy C. 2001. Non- chemical weed management in organic farming systems. Weed Research, 41: 383-405.
8
9. Booth B.D., Murphy S.D., and Swanton C.J. 2003. From seed to seedling. p. 81–99. In B. D. Booth, S. D. Murphy, and C. J. Swanton, (eds.) Weed Ecology in Natural and Agricultural Ecosystems. Cambridge, MA: CABI.
9
10. Boquet D.J., Hutchinson R.L., and Breitenbeck G.A. 2004. Long-term tillage, cover crop, and nitrogen rate effects on cotton: plant growth and yield components. Agronomy Journal, 96: 1443–1452.
10
11. Cardina J., Sparrow D.H., and Mccoy E.L. 1996. Spatial relation-Ships between seed bank seedling population of command lambs quarters (Chenopodium album) and annual grasses. Weed Science, 44: 208-398.
11
12. Chauhan B.S., Gill G., and Preston C. 2006. Tillage systems affect trifluralin bioavailability in soil. Weed Science, 54: 941-947.
12
13. Clements D.R., Benoit D.L., Murphy S.D., and Swanton C.J. 1996. Tillage effects on weed seed return and seed bank composition. Weed Science, 44: 314-322.
13
14. Cousens R., and Moss S.R. 1990. A model of the effects of cultivations on the vertical distribution of weed seeds within the soil.Weed Research, 30: 61–70.
14
15. Davis A.S. 2007. Nitrogen fertilizer and crop residue effects on seed mortality and germination of eight annual weed species. Weed Science, 55: 123-128.
15
16. Dhima K., and Eleftherohorinos I. 2003. Nitrogen effect on competition between winter cereals and littleseed canarygrass. Phytoparasitica, 31(3): 252-264.
16
17. Dhima K.V., Vasilakoglou I.B., Eleftherohorinos I.G., and Lithourgidis A.S. 2006. Allelopathic potential of winter cereals and their cover crop mulch effect on grass weed suppression and corn development. Crop Science, 46: 345-352.
17
18. Duppong L.M., Delate K., Liebmen M., Horton R., Kraus G., Petrich J., and Chowdbury P.K. 2004. The effect of natural mulches on crop performance, weed suppression and biochemical constituents of catnip and St. Johns Wort. Crop Science, 44: 861-869.
18
19. Hejazi A., Kazemeini S.A., and Bahrani M.J. 2010. Effects of nitrogen rates and plant residue on biomass of rapeseed crop in two tillage system. In Proceedings of 3rd Iranian Weed Science Congress, Babolsar, Iran. (In Persian with English abstract)
19
20. Hemmat A., and Eskandari A. 2004. Tillage system effects upon productivity of dryland winter wheat-chickpea rotation in the northwest region of Iran. Soil and Tillage Research, 78(1): 37-52.
20
21. Hulme P. E. 1994. Post-dispersal seed predation in grassland: its magnitude and sources of variation. Journal of Ecology, 81: 652-654.
21
22. Judice W.E., Griffin J.L., Etheredge L.M., and Jones C.A. 2007. Effects of crop residue management and tillage on weed control and sugarcane production. Weed Technology, 21: 606-611.
22
23. Lindquist J.L., Barker D.C., Knezevic S.Z., Martin A.R., and Walters D. T. 2007. Comparative nitrogen uptake and distribution in corn and velvetleaf (Abutilon theophrasti). Weed Science, 55: 102-110.
23
24. Maldonado J.A., Osornio J.J., Barragan A.T., and Anaya A.L. 2001. The use of allelopathic legume cover and mulch species for weed control in cropping systems. Agronomy Journal, 93: 27-36.
24
25. Marwat K., Arif B. M., and Azim Khan M. 2007. Effect of tillage and zinc application methods on weeds and yield of maize. Pakistan Journal of Botany, 39(5): 1583-1591.
25
26. Menan H., Ngouajio M., Isik D., and Kaya E. 2006. Effect of alternative management systems on weed populations in hazelnut (Corylus avellana L.). Crop Protection, 25: 835-841.
26
27. Mirshekari B. 2006. Weeds and Their Management. Azad University of Tabriz Publications. (In Persian)
27
28. Mohammaddoost Chamanabad H. 2011. Weed Control. Jahad Daneshgahi Publications. (In Persian)
28
29. Najafi H., and Zand E. 2008. Weed management approaches in conservation agriculture systems. In Proceedings of 12th Iranian Congress of Agronomy and Plant Breeding, Tehran, Iran. (In Persian with English abstract)
29
30. Price A.J., Reeves D.W., and Patterson M.G. 2006. Evaluation of weed control provided by three winter cereals in conservation-tillage soybean. Renewable Agriculture and Food Systems, 21: 159-164.
30
31. Rabiee M., and Rajabian M. 2012. Effect of tillage systems and rice residue management on morphological traits and yield of winter rapeseed (Brassica napus L.) as second crop after rice in Rasht. Journal of Agricultural Science and Sustainable Production, 21: 105-121. (In Persian with English abstract)
31
32. Rashed Mohassel M. H., Najafi H., and Akbarzadeh M. 2009. Weed Biology and Control. University of Mashhad Publication. (In Persian)
32
33. Rastgoo M., Ghanbari A., Banayan M., and Rahimian H. 2005. Effect of nitrogen rate and time of application and weed density on wild mustard (Sinapis arvensis) seed production in winter wheat. Iranian Journal of Field Crops Research, 3: 45-56. (In Persian with English abstract)
33
34. Sadeghi H. 2005. Effect of different rates of residues and nitrogen levels on yield and yield components of two dryland farming wheat cultivars. PhD dissertation, Faculty of Agriculture, Shiraz University.
34
35. Saini M., Price A.J. and van Santen E. 2006. Cover crop residue effects on early-season weed establishment in a conservation-tillage corn-cotton rotation. p. 175-178. In Proceedings of 28th Southern Conservation Tillage Conference, USA.
35
36. Samadani B., and Montazeri M. 2009. Using Cover Crops in Sutsainable Agriculture. Published by Iranian Crop Protection Institute. (In Persian)
36
37. Sardar M., Behdani M.A., Eslami S.V., and Mahmoudi S. 2015. The effect of different soil disturbance methods and weed control on cotton yield after wheat. Iranian Journal of Field Crops Research, 4: 784-792. (In Persian with English abstract)
37
38. Showler A.T., and Greenberg M.S. 2003. Effect of weed on selected arthropod herbivore and natural enemy population and yield. Environmental Entomology, 32: 39-50.
38
39. Swanton C.J., Clements D.R., and Derksen D.A. 1993. Weed Succession under Conservation Tillage: A Hierarchical Framework for Research and Management. Weed Technology, 2: 286-297.
39
40. Swanton C.J., Sherestha A., Knezewic S.Z., Roy R.C., and Ball-Coelho B.R. 2000. Influence of tillage type on vertical weed seed bank distribution in a sandy soil. Canadian Journal of Plant Science, 80:455-457.
40
41. Sweeney A.E., Renner K.A., Laboski C., and Davis A. 2008. Effect of fertilizer nitrogen on weed emergence and growth. Weed Science, 56: 714– 721.
41
42. Waddell J.T., and Weil R.R. 2006. Effects of fertilizer placement on solute leaching under ridge tillage and no tillage. Soil and Tillage Research, 90: 194-204.
42
43. Wilcut J.W., York A.C., and Jordan D.L. 1995. Weed management systems from oil seed crops. p. 343-400. In: A.E. Smith,(ed.) Handbook of Weed Management Systems. New York: Marcel bokker.
43
44. Yenish J.P., Worsham A.D., and York A.C. 1996. Cover crops for herbicide replacement in notillage corn (Zea mays). Weed Technology, 10: 815- 821.
44
45. Zewdie K., and Suwanketnikom R. 2005. Relative Influence of tillage, fertilizer, and weed management on weed associations in wheat cropping systems of Ethiopian Highlands. Kasetsart Journal (Natural Science), 39 : 569–575.
45